Artykuł metodologiczny

In vitro Ocena wpływu laserów Er,Cr:YSGG i diodowych stosowanych na cylindrze tytanowym

DOI:

10.3791/67955

⸱

6 czerwca 2025

 ,  , 
1Faculty of Dentistry, Department of Periodontology, Akdeniz University

W tym artykule

Podsumowanie

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

W tym badaniu lasery Er,Cr:YSGG i diodowe zostały zastosowane oddzielnie na płaską powierzchnię łącznie 96 specjalnie zaprojektowanych cylindrów tytanowych. Termoparę umieszczono na drugiej powierzchni i zmierzono temperaturę. Chropowatość powierzchni analizowana za pomocą profilometru, SEM i AFM.

Streszczenie

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Choroby okołoimplantacyjne są istotnymi problemami związanymi z implantami zębowymi. Celem pracy była ocena chropowatości powierzchni i zmian temperatury podczas stosowania laserów diodowych i erbowych, itru-skandowo-galowo-granatowych (Er,Cr:YSGG) domieszkowanych chromem na cylindrach tytanowych w leczeniu niechirurgicznych chorób okołoimplantacyjnych. W sumie utworzono 13 grup, w tym grupę kontrolną, z diodami 940 nm (0,8 W-1,3 W-1,8 W) i laserami Er,Cr:YSGG (1,5 W-2,5 W-3,5 W) w 6 różnych trybach mocy, 20 s/W i 40 s/W, a w każdej grupie podano osiem tytanowych cylindrów. Podczas tego procesu rejestrowano temperaturę początkową i końcową za pomocą termopary umieszczonej w szczelinie wierzchołkowej cylindra. Po aplikacji zmierzono chropowatość (Ra) wszystkich tarcz za pomocą profilometru. Powierzchnie skanowano za pomocą skaningowego mikroskopu elektronowego (SEM) i mikroskopu sił atomowych (AFM) do dwu- i trójwymiarowego badania powierzchni. Gdy oceniono zmiany temperatury butli tytanowych podczas napromieniania, okazało się, że butle naświetlane laserem diodowym przez 40 s były znacznie wyższe niż te naświetlane przez 20 s. W butlach poddanych działaniu Er,Cr:YSGG temperatura spadła w niektórych próbkach i minimalnie wzrosła w niektórych próbkach. Wartości profilometru (Ra) nie były istotne statystycznie pod względem chropowatości dla wszystkich grup. Jednak obrazy SEM wykazały topnienie i wzrost liczby mikroporów na obrabianych powierzchniach. Biorąc pod uwagę ograniczenia tego badania in vitro , zastosowanie Er, Cr: YSGG i diody można uznać za bezpieczne podejście do leczenia peri-implantitis, szczególnie pod względem bezpieczeństwa termicznego. Podczas gdy chropowatość powierzchni pozostaje niezmieniona, zastosowanie tych laserów spowodowało zmiany topnienia i mikropory w topografii cylindra Ti. Aby określić, w jaki sposób te ustawienia lasera wpływają na zmniejszanie się liczby bakterii i osteointegrację, potrzebne są dodatkowe badania.

Wprowadzenie

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Implanty zębowe są powszechnie akceptowaną opcją leczenia w celu zastąpienia utraconych zębów 1,2. Zapalenie błony śluzowej wokół implantu i zapalenie okołoimplantowe są klasyfikowane jako choroby okołoimplantacyjne. Zapalenie błony śluzowej wokół implantu jest ograniczone do tkanek miękkich i nie ma dowodów na utratę kości, z wyjątkiem fizjologicznej przebudowy kości. Peri-implantitis to stan patologiczny, który jest związany z płytką nazębną i wpływa na tkanki otaczające implanty dentystyczne. Wyróżnia się stanem zapalnym błony śluzowej wokół implantu i wynikającym z niego narastającym ubytkiem kości podporowej3. Podstawowym czynnikiem etiologicznym inicjacji i progresji zaburzenia jest przerwanie biofilmu płytki wokół implantu4. Liczne badania nad chorobami okołoimplantacyjnymi wskazują, że częstość występowania zapalenia błony śluzowej wokół implantu (PIM) waha się od 9,7% do 64,6%, podczas gdy częstość występowania peri-implantitis (P) waha się od 4,7% do 45%5.

Podczas gdy nagromadzenie płytki nazębnej jest głównym czynnikiem etiologicznym powodującym peri-implantitis, jego leczenie jest skomplikowane ze względu na zróżnicowane cechy topograficzne implantów. Podstawą niechirurgicznego leczenia peri-implantitis jest leczenie infekcji poprzez oczyszczenie powierzchni implantu i eliminację przylegającego biofilmu w celu zmniejszenia obciążenia bakteryjnego poniżej progu chorobotwórczego 6,7. Złożona mikro i makrotopografia granic faz tytanowych oraz anatomia ubytków kostnych ograniczają dekontaminację powierzchni. Skuteczność różnych technik odkażania mechanicznego (kirety, urządzenia ultradźwiękowe, ścieranie proszkiem powietrznym, szczotki tytanowe), chemicznego (kwas cytrynowy, chlorheksydyna, środki przeciwdrobnoustrojowe) i fizycznego (laser, terapia fotodynamiczna) techniki odkażania została oceniona w połączeniu8. Obecne badania sugerują, że łączne stosowanie niechirurgicznych technik interwencji w przypadku zapalenia okołoimplantologicznego jest skuteczniejsze niż samo oczyszczenie9. Włączenie chemicznych środków przeciwdrobnoustrojowych lub miejscowych/ogólnoustrojowych antybiotyków do terapii mechanicznej wykazało znaczną skuteczność; Niemniej jednak interwencje te mogą mieć potencjalne negatywne konsekwencje10. Wraz z postępem technologii laserowej lasery dentystyczne stają się coraz bardziej popularne ze względu na ich działanie przeciwinfekcyjne, detoksykujące i przyjazne dla użytkownika na powierzchniach implantów10,11.

Pik absorpcji, tryb pracy urządzenia i właściwości tkanek wpływają na wzrost ciepła podczas naświetlania laserowego. Kluczowe badanie przedkliniczne wykazało, że podniesienie temperatury do 50 °C przez 1 minutę powodowało uszkodzenie naczyń krwionośnych, podczas gdy wzrost do 60 °C prowadził do ustania przepływu krwi, a następnie martwicy kości12. Badanie in vitro wykazało, że już po 10 sekundach naświetlania laserem diodowym powierzchnie implantów mogą osiągnąć temperaturę wyższą niż próg bezpieczeństwa kości (10 °C). Żywotność kości może być zagrożona przez wzrost temperatury o zaledwie 10 °C13.

Liczne ostatnie badania koncentrowały się na zbadaniu korzystnego wpływu laserów w tej dziedzinie 14,15,16,17,18. Różne długości fal lasera wykazują znaczące działanie antybakteryjne i bezpieczeństwo na powierzchniach implantów przy zastosowaniu odpowiednich parametrów. Szereg zmiennych, w tym intensywność, częstotliwość i długość fali, wpływa na skuteczność zabiegów laserowych. Kilka badań wykazało bakteriobójcze działanie różnych długości fal laserowych, w tym CO2, Er:YAG, Er,Cr:YSGG i różnych laserów diodowych, co pozwala nam zidentyfikować korzystne działanie różnych laserów w leczeniu peri-implantitis. Aoki i wsp. 19,20,21. Z ich przeglądu wynika, że zastosowanie lasera ułatwia czyszczenie powierzchni zarówno w niechirurgicznych, jak i chirurgicznych zabiegach okołoimplantacyjnych, w tym terapii regeneracyjnej, oraz wspomaga gojenie poprzez aktywację otaczających komórek tkankowych22.

Lasery diodowe mają zdolność wywierania działania bakteriobójczego na powierzchnie implantów bez wpływu na wzór powierzchni implantu. Jeśli chodzi o leczenie peri-implantitis, laser diodowy może być dobrym rozwiązaniem, ponieważ wspomaga gojenie się tkanek przyzębia 23,24,25.

Lasery erbowe, domieszkowane chromem: itrem, skandem, galem, granatem (Er,Cr:YSGG) wykazują skuteczne właściwości w zakresie eliminacji biofilmu i odkażania powierzchni implantów11. Silne działanie bakteriobójcze i właściwości regenerujące kości wykazano za pomocą laserów erbowych bez powodowania uszkodzeń mechanicznych dzięki właściwościom wodnym 11,14.

Brakuje danych dotyczących zmian spowodowanych napromieniowaniem laserowym na implantach tytanowych. Co więcej, nie opracowano jeszcze ostatecznej metodologii napromieniania powierzchni tytanowych, obejmującej parametry lasera, takie jak moc i czas aplikacji. Wcześniejsze badania wykazały, że zastosowanie lasera Er,Cr:YSGG16 nie miało wpływu na zmianę temperatury, jednak badania laserem diodowym przekroczyły13 i nie przekroczyły16,26 wartości krytycznej. Różne wyniki wpływu obróbki laserowej na wartość Ra powierzchni tytanu są dostępne w literaturze18,27. Hipoteza zerowa badania jest taka, że nie będzie różnicy między laserami Er,Cr:YSGG a laserami diodowymi pod względem zmiany temperatury i chropowatości powierzchni tytanowych przy użyciu. Badanie to miało na celu określenie bezpiecznych parametrów pracy poprzez monitorowanie chropowatości powierzchni i zmian temperatury materiału tytanowego za pomocą laserów Er, Cr:YSGG i diodowych przy różnych ustawieniach czasu i mocy. Ocenę zmiany temperatury przeprowadzono za pomocą termopary, chropowatość powierzchni oceniono za pomocą profilometru, a zmiany powierzchni przeanalizowano za pomocą technik SEM i AFM.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Protokół

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

UWAGA: Cylindry tytanowe, wykonane z tego samego materiału co konwencjonalne implanty i zaprojektowane do odwzorowywania powierzchni implantu za pomocą technologii SLA, mają wysokość 10 mm i średnicę 5 mm. W środku cylindrów znajduje się wnęka o głębokości 7 mm i szerokości 3 mm (rys. 2). Szerokość 3 mm zmniejsza się do 1 mm w najgłębszym miejscu. Pomiar chropowatości powierzchni standardowych implantów za pomocą profilometru nie jest możliwy. Udało się ocenić skuteczność lasera zastosowanego na płaskiej powierzchni o średnicy 5 mm w górnej części tytanowego cylindra zaprojektowanego przez producenta, przy użyciu tego samego materiału, który symuluje powierzchnię implantu. Dodatkowo, w celu pomiaru zmian temperatury od środka cylindra, od środka dolnej powierzchni cylindra tytanowego w kierunku głębokości cylindra zostanie utworzony rowek o głębokości 7 mm i szerokości 3 mm. Rowek ten pozwala na ocenę zmiany temperatury obrabianej powierzchni z wnętrza cylindra, a nie w zależności od powierzchni zewnętrznej. Trójwymiarowe wizualizacje uzyskano poprzez analizę płaskich powierzchni specjalnie wyprodukowanych cylindrów tytanowych za pomocą mikroskopu sił atomowych (AFM). Zastosowano lasery diodowe 940 nm (0,8 W28, 1,3 W29, 1,8 W30) i 2,780 nm Er,Cr:YSGG (1,5 W31, 2,5 W31, 3,5 W32) o trzech różnych mocach zgodnie z zaleceniami firmy, a także utworzono 12 grup o czasie aplikacji 20 s i 40 s każda. Po aplikacji dodano grupę kontrolną do oceny chropowatości. Stojak z podpórką na palec został wydrukowany z drukarki trójwymiarowej, aby utrzymać stabilny cylinder Ti podczas aplikacji (Tabela materiałów).

1. Wielkość próby

  1. Oblicz wielkość próby, korzystając z analizy mocy programu G*Power. Minimalna liczba próbek dla każdej grupy została określona jako n=8 próbek dla zmiany temperatury o wielkości efektu d: 0,6906, odchyleniu standardowym 16,8, mocy: 0,80 i α: 0,05.
    UWAGA: W tym badaniu jako system laserowy zastosowano laser Er,Cr:YSGG wyposażony w laser diodowy 940 nm z końcówką o średnicy 300 μm (końcówka e3) oraz elastyczną końcówką RFPT5-14 o średnicy 360° (średnica 580 μm i długość 14 mm) (rysunek 1).

figure-protocol-1
Rysunek 1: Używane instrumenty i sprzęt. (A) Laser diodowy, (B) laser Er,Cr:YSGG, (C) końcówka E3, (D) końcówka RPTF5-14. Kliknij tutaj, aby zobaczyć większą wersję tego rysunku.

2. Wyznaczanie grup roboczych

  1. Jako idealny warunek użytkowania należy przyjąć zalecaną moc laserów do stosowania w kieszeni w zapaleniu błony śluzowej wokół implantu. Dodatkowo uwzględnij jedną niższą wartość i jedną wyższą wartość w badanych grupach w stosunku do zalecanego wata. Stosowane tutaj wartości to 1,5 W i 3,5 W dla Er,Cr:YSGG oraz 0,8 W i 1,8 W dla lasera diodowego.
  2. Określ czas aplikacji jako 20 s i 40 s, aby ocenić wpływ czasu pracy na zmianę temperatury. Grupy badawcze przedstawiono w tabeli 1.
Nazwa grupyTyp laseraLiczba próbek (n)Wat (W)Czas (s)
Klasa E1Er,Cr:YSGG81,5 W20
Klasa E282,5 W20
Targi E383,5 W20
E481,5 W40
E582,5 W40
E683,5 W40
Klasa D1Dioda80,8 W20
Zobacz materiał D281,3 W20
Zobacz materiał D381,8 W20
Klasa D480,8 W40
Zobacz materiał D581,3 W40
Zobacz materiał D681,8 W40
CKontrola8

Tabela 1: Informacje o grupach badawczych.

3. Przygotowanie zestawu eksperymentalnego

  1. Za pomocą programu Rhinoceros (grafika i projektowanie 3D) zaprojektuj stojak cylindryczny w 3D z lekko wklęsłym wgłębieniem o średnicy 10 mm i grubości 5 mm.
    1. Otwórz aplikację. Narysuj okrąg o średnicy 10 mm. Zmniejsz okrąg o 50% od jednej osi, aby utworzyć elipsę. Naciśnij Extuder i podnieś elipsę w trzecim wymiarze.
    2. Ponownie narysuj okrąg, aby podeprzeć palce. Podnieś drugi okrąg w trzecim wymiarze za pomocą klucza ekstrudera. Ustaw wysokość mniejszą niż pierwszy okrąg.
    3. Wywierć otwór o średnicy 10 mm w rysunku eliptycznym za pomocą polecenia logicznego. Aby uzyskać podparcie termopary, utwórz linię w kształcie litery L za pomocą polecenia Przeciągnij 1 i utwórz 3. wymiar.
    4. Narysuj kwadrat, powiększ go w 3. wymiarze za pomocą polecenia ekstrudera i utwórz podstawę. Po wydrukowaniu wzoru nałóż silikon wokół otworu, do którego wejdzie cylinder Ti i wysusz go. Spowoduje to utrzymanie cylindra na miejscu podczas nakładania lasera.
  2. Doprowadź zamknięte pomieszczenie z klimatyzacją do temperatury 27 °C. Zamocuj stojak, na którym zostaną zamocowane cylindry, na środku plastikowej wanny za pomocą taśmy dwustronnej.
    UWAGA: Włóż cylinder Ti, wyciśnij powietrze na powierzchnię.
  3. Umieść termoparę termometru w wydrążonej części cylindra Ti umieszczonej w jego gnieździe na stojaku.
  4. Przygotuj chronometr, aby śledzić czas aplikacji. Zapisuj stopnie przez 3. obserwatora i śledź czas za pomocą stopera.

4. Procedura doświadczalna

  1. Podczas aplikacji lasera należy nosić okulary ochronne dla bezpieczeństwa lekarza. Włóż końcówkę RPTF5-14 do lasera Er, Cr: YSGG. Włóż końcówkę E3 do lasera diodowego.
  2. Włącz laser Er,Cr:YSGG. Wybierz tryb zamknięty Perio. Stosować lasery o mocy 1,5 W, 2,5 W i 3,5 W przez 20 s i 40 s każdy. Dostępnych jest 96 cylindrów Ti z nakładanym laserem. Naświetlaj cylinder Ti tylko jednym typem lasera, jednym watem i jednym razem.
  3. Włącz laser diodowy. Wybierz tryb kieszonkowy Perio. Zastosuj laser o mocy 0,8 W, 1,3 W i 1,8 W przez 20 s i 40 s każdy.
  4. Niech trzeci obserwator uruchomi stoper, gdy laser się uruchomi. Ostrzeż go, gdy czas się skończy.
  5. Przyłóż końcówkę lasera pod kątem 15° do powierzchni, kontaktując, zygzakiem po całej powierzchni przez zaplanowany czas.
  6. Zwróć uwagę na początkowe i końcowe wartości temperatury podczas aplikacji. Odejmij wartość temperatury początkowej od wartości temperatury końcowej. Oblicz zmianę temperatury.
    UWAGA: Zwróć uwagę na wartości zmian temperatury dla łącznie 12 grup, 6 grup Er, Cr: YSGG i 6 grup laserów diodowych.
  7. Próbki należy przechowywać w przezroczystych torebkach z zapisanymi numerami grup.

5. Dwu- i trójwymiarowe obrazowanie materiałów

  1. Wykonaj analizy za pomocą skaningowego mikroskopu elektronowego (SEM) i mikroskopu sił atomowych (AFM) w celu oceny i zademonstrowania zmian w morfologii powierzchni cylindra Ti.
    UWAGA: Użyto instrumentu FEI Quanta FEG 250.
  2. Nie należy pokrywać próbek przed umieszczeniem ich w SEM. Istnieje 13 grup, w tym 1 grupa kontrolna, 6 grup laserów diodowych i 6 grup laserów Er,Cr: YSGG. W przypadku grupy kontrolnej nie wykonuj żadnego zabiegu, wykonuj tylko obrazy powierzchni za pomocą AFM i SEM.
  3. Losowo wybierz jeden cylinder z każdej z 13 badanych grup. Włóż je do urządzenia SEM. Zanotuj lokalizację na platformie i przykładowy kod, aby uniknąć mieszania próbek.
  4. Umieść butlę Ti w urządzeniu SEM płaską powierzchnią do góry. Wykonuj analizy w trybie niskiej próżni. Ustaw ciśnienie w komorze na 60 Pa podczas analizy.
  5. Gdy urządzenie będzie w pełni gotowe, nagrywaj obrazy w powiększeniu 250x, 1000x i 5000x z losowego punktu na płaskiej powierzchni. Powtórzyć tę procedurę dla wszystkich próbek.
    UWAGA: Gdy urządzenie SEM zakończy odkurzanie, jest gotowe do zbierania obrazów.
  6. Do pomiaru AFM losowo wybierz jedną butlę Ti z każdej grupy badawczej. Wykonaj pomiar w trybie stukania.
    1. Umieść cylinder Ti w przyrządzie AFM. Umieść górną pokrywę tak, aby końcówka przyrządu znajdowała się nad próbką. Sprawdź, czy czerwone światło z okienka na instrumencie znajduje się na powierzchni, która ma być obrazowana.
    2. Ustaw napięcie na 2. Przesuń końcówkę bliżej próbki za pomocą przycisku Auto land. Rozpocznij skanowanie, naciskając przycisk Rozpocznij skanowanie .
  7. Wykonaj obraz cyfrowy o wymiarach 5 μm x 5 μm dla każdej próbki i zapisz go z niską szybkością skanowania (1 Hz). Rejestruj obrazy wykonane za pomocą instrumentu AFM z płaskich powierzchni cylindrów Ti. Przyrząd AFM wizualizuje obszar 25μm2 .

6. Pomiar chropowatości powierzchni

UWAGA: Użyto tutaj urządzenia Surftest SJ 201, Mitutoyo, Tokio, Japonia.

  1. Ustaw rozdzielczość profilometru na 0,01 mm, długość poprzeczną na 3,0 mm, a średnicę diamentowej końcówki kołka rejestrującego na 5 μm. Ustaw prędkość pomiaru na 0.5 mm/s, aby określić wartość Ra.
  2. Zamocuj cylinder Ti za pomocą uchwytu, użyj preselu i zamocuj cylinder Ti, trzymając go od bocznej powierzchni. Umieścić igłę profilometru w kontakcie z powierzchnią Ti.
  3. Naciśnij przycisk Start. Zapisz znalezioną wartość Ra. Powtórz pomiar 5 razy w różnych kierunkach na płaskiej powierzchni każdego cylindra (Rysunek 2). Aby osiągnąć różne kierunki, przesuwaj cylinder Ti wokół siebie za pomocą przedsprzedaży. Powtórz tę czynność na całej długości cylindra Ti.

figure-protocol-2
Rysunek 2: Schemat blokowy grup badawczych. (1A) Widok z boku cylindra Ti, (1B) widok z góry, (1C) widok z dołu Kliknij tutaj, aby wyświetlić większą wersję tego rysunku.

7. Analiza statystyczna

  1. Wykonaj analizę statystyczną za pomocą pakietu statystycznego SPSS-Windows i zastosuj testy Kruskala-Wallisa i Manna-Whitneya. Ustaw statystyczny poziom ufności na 95% (α = 0,05).

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Wyniki

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Po ocenie na podstawie czasu aplikacji wynoszącego 20 sekund i 40 sekund zaobserwowano statystycznie istotną różnicę. Zaobserwowano, że zmiana temperatury na 40-sekundowych powierzchniach cylindrów Ti nakładanych laserowo była większa niż na 20-sekundowym laserze (p = 0,037; Rysunek 3).

figure-results-1
Rysune...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Dyskusja

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Trwa poważna dyskusja na temat optymalnej metody odkażania powierzchni implantów w leczeniu peri-implantitis. W poprzedniej publikacji proponowano stosowanie leków miejscowych lub ogólnoustrojowych, stosowanie lasera, czyszczenie mechaniczne i/lub chemiczne oraz implantoplastykę. Wyniki naszych badań wykazały, że wszystkie zmierzone temperatury rosną poniżej krytycznego progu bezpieczeństwa wynoszącego 10 °C13. Mając jednak na uwadze, że jest to badanie in vitro i nie zawsze może odtworzy...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Autorzy nie mają do ujawnienia żadnych konfliktów interesów.

Podziękowania

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Tytanowe cylindry użyte w badaniu zostały wyprodukowane przez firmę Naxis Implant.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
Mikroskopia sił atomowychezAFM powiedział:Kompaktowy model AFM
DiodaBiolazaEpicka długość fali 10, 940 nm
Wskazówka E3Średnica włókna: 300 i mikro; m, Długość włókna: 9 mm
Er, Cr: Laser YSGGIplusDługość fali 2780 nm
ProfilometrMitutoyo powiedział:Surftest SJ-201 Model
Końcówka RFPT-14Średnica zewnętrzna końcówki: 580 i mikro; m, Długość końcówki: 14 mm
Skaningowy mikroskop elektronowyFEIQuanta FEG 250 Model
StaćNiestandardowy projektAplikacja Nosorożec, filament Flamix PLA, urządzenie Bambulab X1C
TermometrKeithleya KeithleyaModel serii 2000, końcówka K termokulp
Tytanowy cylinderNaxis (Oś)Wysokość 10 mm, średnica 5 mm, powierzchnia SLA, tytan

Bibliografia

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Guillaume, B. Dental implants: A review. Morphologie. 100 (331), 189-198 (2016).
  2. Henry, P. J. Tooth loss and implant replacement. Aust Dent J. 45 (3), 150-172 (2000).
  3. Berglundh, T., Armitage, G., Araujo, M. G., et al. Peri-implant diseases and conditions: Consensus report of workgroup 4 World Workshop on the Classification of Periodontal and Peri-Implant Diseases and Conditions. J Periodontol. 89 (1), S313-S318 (2018).
  4. Herrera, D., Berglundh, T., Schwarz, F., et al. Prevention and treatment of peri-implant diseases—The EFP S3 level clinical practice guideline. J Clin Periodontol. 50 (S26), 4-76 (2023).
  5. Guarnieri, R., Reda, R., Di Nardo, D., Pagnoni, F., Zanza, A., Testarelli, L. Prevalence of Peri-Implant Mucositis, Peri-Implantitis and Associated Risk Indicators of Implants with and without Laser-Microgrooved Collar Surface: A Long-Term (≥20 Years) Retrospective Study. J Pers Med. 14 (4), (2024).
  6. Figuero, E., Graziani, F., Sanz, I., Herrera, D., Sanz, M. Management of peri‐implant mucositis and peri‐implantitis. Periodontology 2000. 66 (1), 255-273 (2014).
  7. Tomasi, C., Wennström, J. L. Full-mouth treatment vs. the conventional staged approach for periodontal infection control. Periodontology 2000. 51 (1), 45-62 (2009).
  8. Baima, G., Citterio, F., Romandini, M., et al. Surface decontamination protocols for surgical treatment of peri‐implantitis: A systematic review with meta‐analysis. Clin Oral Implants Res. 33 (11), 1069-1086 (2022).
  9. Subramani, K., Wismeijer, D. Decontamination of titanium implant surface and re-osseointegration to treat peri-implantitis: a literature review. Int J Oral Maxillofac Implants. , Accessed August 4, 2024 (2012).
  10. Świder, K., Dominiak, M., Grzech-Leśniak, K., Matys, J. Effect of different laser wavelengths on periodontopathogens in peri-implantitis: A review of in vivo studies. Microorganisms. 7 (7), 189(2019).
  11. Mizutani, K., Aoki, A., Coluzzi, D., Yukna, R., Wang, C. Y., Pavlic, V., Izumi, Y. Lasers in minimally invasive periodontal and peri‐implant therapy. Periodontology 2000. 71 (1), 185-212 (2016).
  12. Eriksson, R. A., Albrektsson, T. The effect of heat on bone regeneration: An experimental study in the rabbit using the bone growth chamber. J Oral Maxillofac Surg. 42 (11), 705-711 (1984).
  13. Geminiani, A., Caton, J. G., Romanos, G. E. Temperature change during non-contact diode laser irradiation of implant surfaces. Lasers Med Sci. 27 (2), 339-342 (2012).
  14. Alpaslan Yayli, N. Z., Talmac, A. C., Keskin Tunc, S., Akbal, D., Altindal, D., Ertugrul, A. S. Erbium, chromium-doped: yttrium, scandium, gallium, garnet and diode lasers in the treatment of peri‐implantitis: Clinical and biochemical outcomes in a randomized-controlled clinical trial. Lasers Med Sci. 37 (1), 665-674 (2022).
  15. Peters, N., Tawse-Smith, A., Leichter, J., Tompkins, G. Laser therapy: The future of peri-implantitis management. J Periodontol. 22 (1), 1(2012).
  16. Alhaidary, D., Franzen, R., Hilgers, R. D., Gutknecht, N. First investigation of dual-wavelength lasers (2780 nm Er,Cr:YSGG and 940 nm diode) on implants in a simulating peri-implantitis situation regarding temperature changes in an in vitro pocket model. Photobiomodul Photomed Laser Surg. 37 (8), 508-514 (2019).
  17. Rezeka, M. A., Metwally, N. A., Abd El Rehim, S. S., Khamis, M. M. Evaluation of the effect of diode laser application on the hydrophilicity, surface topography, and chemical composition of titanium dental implant surface. J Prosthodont. 2024, 1-8 (2025).
  18. Khalil, M. I., Sakr, H. Implant surface topography following different laser treatments: An in vitro study. Cureus. 15 (5), e38731(2023).
  19. Tosun, E., Tasar, F., Strauss, R., Kivanc, D. G., Ungor, C. Comparative evaluation of antimicrobial effects of Er:YAG, diode, and CO2 on titanium discs: An experimental study. J Oral Maxillofac Surg. 70 (5), 1064-1069 (2012).
  20. Stübinger, S., Homann, F., Etter, C., Miskiewicz, M., Wieland, M., Sader, R. Effect of Er:YAG, CO and diode laser irradiation on surface properties of zirconia endosseous dental implants. Lasers Surg Med. 40 (3), 223-228 (2008).
  21. Park, J., Heo, S., Koak, J., Kim, S. K., Han, C. H., Lee, J. H. Effects of laser irradiation on machined and anodized titanium disks. Int J Oral Maxillofac Implants. 27 (6), Accessed September 22, 2024 1215-1221 (2012).
  22. Aoki, A., Mizutani, K., Schwarz, F., et al. Periodontal and peri-implant wound healing following laser therapy. Periodontol 2000. 68 (1), 217-269 (2015).
  23. Roncati, M., Lucchese, A., Carinci, F. Non-surgical treatment of peri-implantitis with the adjunctive use of an 810-nm diode laser. J Indian Soc Periodontol. 17 (6), 812-817 (2013).
  24. Romanos, G. E., Gutknecht, N., Dieter, S., Schwarz, F., Crespi, R., Sculean, A. Laser wavelengths and oral implantology. Lasers Med Sci. 24 (6), 961-970 (2009).
  25. Hauser-Gerspach, I., Stübinger, S., Meyer, J. Bactericidal effects of different laser systems on bacteria adhered to dental implant surfaces: An in vitro study comparing zirconia with titanium. Clin Oral Implants Res. 21 (3), 277-283 (2010).
  26. Hafeez, M., Calce, L., Hong, H., Hou, W., Romanos, G. E. Thermal effects of diode laser-irradiation on titanium implants in different room temperatures in vitro. Photobiomodul Photomed Laser Surg. 40 (8), 554-558 (2022).
  27. Koopaie, M., Kia Darbandsari, A., Hakimiha, N., Kolahdooz, S. Er,Cr:YSGG laser surface treatment of gamma titanium aluminide: Scanning electron microscopy-energy-dispersive X-ray spectrometer analysis, wettability and Eikenella corrodens and Aggregatibacter actinomycetemcomitans bacteria count - in vitro study. Proc Inst Mech Eng H. 234 (8), 769-783 (2020).
  28. Kayar, N. A., Hatipoǧlu, M. Could we set a convenient irradiation time to reduce the possibility of thermal pulp damage during diode laser as an adjunct to periodontal treatment? An in vitro analysis. Photobiomodul Photomed Laser Surg. 39 (7), 480-485 (2021).
  29. Barrak, H., Mahdi, S. S., Alkurtas, S. A., Size, P. Clinical applications of a 940 nm diode laser for laser troughing versus conventional method: A preliminary study. Iraqi J Laser. 23 (2), (2024).
  30. Beer, F., Körpert, W., Passow, H., et al. Reduction of collateral thermal impact of diode laser irradiation on soft tissue due to modified application parameters. Lasers Med Sci. 27 (5), 917-921 (2012).
  31. Schwarz, F., Nuesry, E., Bieling, K., Herten, M., Becker, J. Influence of an erbium, chromium-doped yttrium, scandium, gallium, and garnet (Er,Cr:YSGG) laser on the reestablishment of the biocompatibility of contaminated titanium implant surfaces. J Periodontol. 77 (11), 1820-1827 (2006).
  32. Al-Omari, W. M., Palamara, J. E. The effect of Nd:YAG and Er,Cr:YSGG lasers on the microhardness of human dentin. Lasers Med Sci. 28 (1), 151-156 (2013).
  33. Kreisler, M., Götz, H., Duschner, H., d’Hoedt, B. Effect of Nd:YAG, Ho:YAG, Er:YAG, CO2, and GaAlAs laser irradiation on surface properties of endosseous dental implants. Int J Oral Maxillofac Implants. 17 (5), 202-209 (2002).
  34. Kottmann, L., Franzen, R., Conrads, G., Wolfart, S., Marotti, J. Effect of Er,Cr:YSGG laser with a side-firing tip on decontamination of titanium disc surface: An in vitro and in vivo study. Int J Implant Dent. 9 (1), 7(2023).
  35. Yao, W. L., Lin, J. C. Y., Salamanca, E., et al. Er,Cr:YSGG laser performance improves biological response on titanium surfaces. Materials. 13 (3), 756(2020).
  36. Smeo, K., Nasher, R., Gutknecht, N. Antibacterial effect of Er,Cr:YSGG laser in the treatment of peri-implantitis and their effect on implant surfaces: A literature review. Lasers Dent Sci. 2 (2), 63-71 (2018).
  37. Fletcher, P., Linden, E., Cobb, C., Zhao, D., Rubin, J., Planzos, P. Efficacy of removal of residual dental cement by laser, ultrasonic scalers, and titanium curette: An in vitro study. Compend Contin Educ Dent. , (2025).
  38. Lollobrigida, M., Fortunato, L., Serafini, G., et al. The prevention of implant surface alterations in the treatment of peri-implantitis: Comparison of three different mechanical and physical treatments. Int J Environ Res Public Health. 17 (8), 2624(2020).
  39. Arora, S., Lamba, A. K., Faraz, F., Tandon, S., Ahad, A. Evaluation of the effects of Er,Cr:YSGG laser, ultrasonic scaler and curette on root surface profile using surface analyser and scanning electron microscope: An in vitro study. J Lasers Med Sci. 7 (4), 243-249 (2016).
  40. Jin, S. H., Lee, E. M., Park, J. B., Kim, K. K., Ko, Y. Decontamination methods to restore the biocompatibility of contaminated titanium surfaces. J Periodontal Implant Sci. 49 (3), 193-204 (2019).
  41. Kayar, N. A., Hatipoǧlu, M. Can we determine an appropriate timing to avoid thermal pulp hazard during gingivectomy procedure? An in vitro study with diode laser. Photobiomodul Photomed Laser Surg. 39 (2), 94-99 (2021).
  42. Monzavi, A., Fekrazad, R., Chinipardaz, Z., Shahabi, S., Behruzi, R., Chiniforush, N. Effect of various laser wavelengths on temperature changes during peri-implantitis treatment: An in vitro study. Implant Dent. 27 (3), 311-316 (2018).
  43. Valente, N. A., Calascibetta, A., Patianna, G., Mang, T., Hatton, M., Andreana, S. Thermodynamic effects of 3 different diode lasers on an implant-bone interface: An ex-vivo study with review of the literature. J Oral Implantol. 43 (2), 94-99 (2017).
  44. Leja, C., Geminiani, A., Caton, J., Romanos, G. E. Thermodynamic effects of laser irradiation of implants placed in bone: An in vitro study. Lasers Med Sci. 28 (6), 1435-1440 (2013).
  45. Strever, J. M., Lee, J., Ealick, W., et al. Erbium, chromium:yttrium-scandium-gallium-garnet laser effectively ablates single-species biofilms on titanium disks without detectable surface damage. J Periodontol. 88 (5), 484-492 (2017).
  46. Bourauel, C., Fries, T., Drescher, D., Plietsch, R. Surface roughness of orthodontic wires via atomic force microscope, laser specular reflectance, and profilometry. Eur J Orthod. 20 (1), Accessed February 13, 2025 79-92 (1998).
  47. Choi, S., Kim, J. H., Kim, N. J., et al. Morphological investigation of various orthodontic lingual bracket slots using scanning electron microscopy and atomic force microscopy. Microsc Res Tech. 79 (12), 1193-1199 (2016).
  48. Huang, H. H., Chuang, Y. C., Chen, Z. H., Lee, T. L., Chen, C. C. Improving the initial biocompatibility of a titanium surface using an Er,Cr:YSGG laser-powered hydrokinetic system. Dent Mater. 23 (4), 410-414 (2007).
  49. Furtsev, T. V., Koshmanova, A. A., Zeer, G. M., et al. Laser cleaning improves stem cell adhesion on the dental implant surface during peri-implantitis treatment. Dent J. 11 (2), 30(2023).
  50. Stübinger, S., Homann, F., Etter, C., Miskiewicz, M., Wieland, M., Sader, R. Effect of Er:YAG, CO and diode laser irradiation on surface properties of zirconia endosseous dental implants. Lasers Surg Med. 40 (3), 223-228 (2008).
  51. Kim, H. K., Park, S. Y., Son, K., et al. Alterations in surface roughness and chemical characteristics of sandblasted and acid-etched titanium implants after irradiation with different diode lasers. Appl Sci. 10 (12), 4167(2020).

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Przedruki i uprawnienia

Poproś o pozwolenie na ponowne wykorzystanie tekstu lub ilustracji tego artykułu JoVE

Poproś o pozwolenie

Tagi

Choroby oko ozawadkowelaser Cr YSGGlaser diodowychropowato powierzchnizmiana temperaturyskaningowy mikroskop elektronowymikroskopia si atomowychzastosowanie laseratopnienie powierzchni

Powiązane artykuły