$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Protokół badawczy został zatwierdzony przez Komitet Etyki Drugiego Szpitala Afiliowanego, Wydział Medyczny Uniwersytetu Zhejiang (nr 2025-0581). Wszystkie eksperymenty i procedury były przeprowadzane zgodnie z Deklaracją Helsińską (zrewidowaną w 2013 roku). To badanie retrospektywne objęło 47 pacjentów hospitalizowanych z powodu LETM w Drugim Szpitalu Afiliowanym, Zhejiang University School of Medicine. Badanie uzyskało świadomą zgodę wszystkich uczestników. To retrospektywne badanie kohortowe objęło wszystkich kwalifikujących się pacjentów. Przeprowadzono analizę mocy po hoc, aby ocenić adekwatność wielkości próby. Wyniki wykazały, że przy obecnej wielkości próby zaobserwowany rozmiar efektu wynosił 1,213515, a osiągnięta moc (1-β err prawdopodobieństwo) wyniosła 0,9659161, co przekracza konwencjonalny próg 0,8. W ten sposób wielkość próby spełnia wymagania statystyczne.
Rekrutacja pacjentów
Kryteria włączenia: Uwzględnić pacjentów cierpiących na ostre ataki, posiadających pełne dane kliniczne, których surowica wykazała MOG, przeciwciała AQP4 i GFAP oraz których dotknięte segmenty były większe lub równe trzem18. Kryteria wykluczenia: Wyklucz pacjentów, którzy doświadczyli innych chorób mogących powodować niepełnosprawność oraz pacjentów, którzy przyjęli efgartigimod na ostrym początku18. Zbieranie informacji o pacjencie: Rejestrowano dane demograficzne, w tym wiek, płeć, czas trwania choroby oraz długość zaangażowanych segmentów kręgosłupa.
Leczenie i ocena kliniczna
Grupuj pacjentów według odpowiednich schematów leczenia. Pacjentów podzielono na dwie grupy: grupę leczenia efgartigimodem (n = 11) oraz grupę konwencjonalną (n = 36). W grupie z efgartigimodem pacjenci byli leczeni podawaniem 400 mg efgartigimodu przez 2 tygodnie, wraz z dożylnym wlewem 1000 mg metyloprednizolonu zmieszanego z 500 ml roztworu glukozy 10% w ciągu 2 tygodni16 tygodni. W tradycyjnej grupie leczenia pacjenci byli leczeni dożylną infuzją 1000 mg metyloprednizolonu zmieszanego z 500 ml roztworu glukozy 10% podawanego przez 2-tygodniowy okres leczenia19.
Parametry oceny klinicznej pacjentów
Niepełnosprawność pacjentów oceniano za pomocą szeregu wskaźników, w tym rozszerzonej skali statusu niepełnosprawności (EDSS) oraz skali klinicznej słabości (CFS)20,21. Jakość życia pacjentów oceniano za pomocą formularza Short Survey Health Survey-36 (SF-36), obejmującego funkcjonowanie fizyczne (PF), zdrowie psychiczne (MH), ból (PA), zdrowie ogólne (GH), witalność (VT), funkcjonowanie społeczne (SF), role-emocjonalne (RE) oraz role-fizyczne (RP)22.
Pomiar interleukiny-6 (IL-6), IL-10 i IL-41
Rano pobrano próbki krwi na czczo. Serum zostało wyizolowane z krwi przez 10-minutową wirówkę w stężeniu 1000 x g i przechowywane w temperaturze -80 °C do dalszej analizy. Czas przechowywania wszystkich próbek wynosił od 6 do 48 miesięcy.
Poziomy IL-6, IL-10 i IL-41 w surowicy mierzono za pomocą zestawów ELISA do testów immunosorbentnych powiązanych z enzymami, zgodnie z instrukcjami producenta (Tabela materiałów). Wyrównaj wszystkie odczynniki z zestawu ELISA do temperatury pokojowej na 20 minut przed testem. Stosowano studnie standardowe, próbkowe i puste. Do standardowych dołków dodano 50 μL roztworu standardowego w różnych stężeniach (0-100 pg/mL), do dołków 50 μL próbki surowicy oraz 50 μL rozcieńczalnika próbek do dołków pustych. Bufor płukania przygotowywano przez rozcieńczenie skoncentrowanego roztworu płukania podwójnie destylowaną wodą w proporcji 1:24. Przygotowany bufor był używany tego samego dnia, aby zapewnić optymalną efektywność mycia.
Obliczono objętość roztworu roboczego na podstawie wymagań eksperymentalnych (100 μL na odwiert). Na 15 minut przed użyciem odwirowano 100x skoncentrowane przeciwciało biotynilowane w stężeniu 7 150 x g przez 1 minutę i rozcieńczono buforem rozcieńczającym przeciwciała biotynowo w proporcji 1:99, aby uzyskać stężenie robocze 1x raz. Natychmiast użyłem przygotowanego roztworu roboczego, aby utrzymać jego aktywność. Sprzężony HRP składał się z streptawidyny sprzężonej z HRP. Obliczono wymaganą objętość na podstawie wymagań eksperymentalnych (100 μL na odwiert), z dodatkowymi 100-200 μL przygotowanym, aby zapewnić wystarczającą ilość. Na 15 minut przed użyciem wirowano 100x skoncentrowany sprzężony HRP w stężeniu 11 173 x g przez 1 minutę, a następnie rozcieńczono sprzężonym buforem rozcieńczającym HRP w stosunku 1:99, aby uzyskać stężenie robocze 1x. Natychmiast użyłem przygotowanego roztworu roboczego, aby zachować jego aktywność.
Odpowiednio przygotowano studnie standardowe (100 μL rozcieńczonego standardu), puste doły (100 μL buforu rozcieńczenia standardowego i próbki) oraz studnie próbek (100 μL rozcieńczonej próbki testowej). Po dodaniu roztworów uszczelnij płytkę membraną i inkubuj w temperaturze pokojowej przez 1,5 godziny. Po inkubacji usuń płyn z dołków bez mycia. Następnie do każdego dołku dodawano 100 μL biotinylowanego roztworu roboczego przeciwciał. Zamknąć płytkę i inkubować w 37 °C przez 1 godzinę, aby ułatwić wiązanie biotinylowanego przeciwciała z kompleksami antygen-przeciwciało. Po inkubacji usuń płyn z dołków i wysusz płytkę na czystym, chłonnym papierze. Napełnij każdą dołek 350 μL bufora do płukania i pozwól mu stać przez 1 minutę. Po usunięciu płynu ponownie wysusz płytkę na chłonnym papierze. Powtarzałem tę procedurę mycia 4 razy.
Po umyciu dodaj 100 μL enzymatycznego sprzężonego roztworu roboczego do każdego dołku. Zamknąć płytkę i inkubować w temperaturze 37 °C przez 30 minut, aby umożliwić dokładne wiązanie między sprzężonym HRP a biotynowo związanym przeciwciałem. Po inkubacji całkowicie usuń płyn z dołków i wysusz płytkę na czystym, chłonnym papierze. Powtórz opisaną powyżej procedurę mycia 5 razy, aby dokładnie usunąć niezwiązane enzymy sprzężone i zminimalizować reakcje niespecyficzne. Po przemyciu dodaj 90 μL roztworu substratowego do każdego dołku. Zamknąć płytkę i inkubować w 37 °C w ciemności przez około 15 minut. Podgrzewał czytnik mikropłyt przez 15 minut, aby zapewnić dokładność wykrywania. Po inkubacji do każdego dołku dodawano 50 μL roztworu stopowego, aby zakończyć rozwój koloru i reakcję enzymatyczną. Po zakończeniu reakcji natychmiast mierzono gęstość optyczną (OD) przy 450 nm każdej studni, a wyniki rejestrowano za pomocą czytnika mikropłyt do dalszej analizy i obliczeń danych.
Analiza statystyczna
Analiza statystyczna została przeprowadzona na SPSS 27.0 oraz GraphPad Prism 8.4.3. Do porównania danych bazowych między obiema grupami użyto niezależnych prób t-test i χ2. Do porównania wyników klinicznych i jakości życia przed i po leczeniu użyto testu T-test próby pary lub test Wilcoxona. Dodatkowo poziomy surowicy IL-6, IL-10 i IL-41 porównano przed i po leczeniu za pomocą testu t w parze. Porównanie obu grup przeprowadzono za pomocą niezależnego testu t-testu próbek. Współczynnik korelacji Pearsona został użyty do pomiaru korelacji między poziomami czynników zapalnych a EDSS. Różnice uznano za statystycznie istotne przy p < 0,05.