Artykuł metodologiczny

Terapia elektroakupunkturą w leczeniu upośledzeń poznawczych po urazie rdzenia kręgowego

514 wyświetleń

DOI:

10.3791/69346

21 listopada 2025

* These authors contributed equally

W tym artykule

Podsumowanie

Badanie to ustanowiło standaryzowaną procedurę elektroakupunktury mającą na celu leczenie zaburzeń poznawczych po urazie rdzenia kręgowego. Ponadto szczegółowo opisano protokół przeprowadzania eksperymentów z labiryntem Y oraz nowych eksperymentów rozpoznawania obiektów w celu oceny skuteczności elektroakupunktury w łagodzeniu deficytów poznawczych.

Streszczenie

Uszkodzenie rdzenia kręgowego (SCI) to wysoce uniewalająca i destrukcyjna choroba ośrodkowego układu nerwowego (OUN), która nie tylko prowadzi do zaburzeń ruchowych kończyn i czuciowych, ale także zakłóca strukturę i funkcjonowanie hipokampa oraz kory mózgowej, prowadząc do zaburzeń poznawczych, które poważnie wpływają na jakość życia pacjentów. Dlatego konieczne jest poznanie skutecznych metod leczenia i metod oceny. Elektroakupunktura (EA) to nowatorska terapia łącząca tradycyjną akupunkturę z nowoczesną technologią elektroterapii, oferująca zalety wysokiego bezpieczeństwa i niewiele skutków ubocznych, a także jest szeroko stosowana w leczeniu rdzenia rdzeniowego. Według teorii tradycyjnej medycyny chińskiej (TCM), Naczynie Gubernatorskie łączy mózg i rdzeń kręgowy. Dlatego EA w punktach akupunkturowych na statku Governor może skutecznie przywrócić funkcje mózgu i rdzenia kręgowego. W tym protokole zastosowaliśmy metodę Allena do skonstruowania modelu SCI. Wprowadziliśmy procedurę EA mającą na celu leczenie zaburzeń poznawczych u szczurów z rdzeniem rdzeniowym. Ponadto szczegółowo opisaliśmy proces działania labiryntu Y oraz eksperymentu z rozpoznawaniem nowych obiektów (NOR), aby ocenić skuteczność EA w łagodzeniu deficytów poznawczych u szczurów. Badania te nie tylko dostarczają protokołu leczenia, który służy jako odniesienie dla zaburzeń poznawczych po SCI, ale także stanowią wstępne wsparcie eksperymentalne dla weryfikacji strategii terapeutycznych w tym schorzeniu oraz dalszych badań naukowych.

Wprowadzenie

Uszkodzenie rdzenia kręgowego (SCI) to powszechne zaburzenie ośrodkowego układu nerwowego (OUN), zazwyczaj wynikające z uszkodzenia rdzenia kręgowego lub jego otaczających struktur spowodowanych siłami zewnętrznymi. Stan ten może prowadzić do zaburzeń czuciowych, motorycznych i autonomicznych układów nerwowych poniżej poziomu1. Co ważniejsze, SCI może również powodować powikłania wtórne, takie jak lęk, depresja i zaburzenia poznawcze 2,3, które szkodzą rehabilitacji pacjentów i znacząco obniżają jakość ich życia. Wiele badań epidemiologicznych wykazało, że ryzyko choroby Alzheimera (AD) u pacjentów z rdzeniem rdzeniowym jest znacznie wyższe niż w populacji ogólnej 4,5,6. Inne badanie potwierdziło, że częstość występowania zaburzeń poznawczych u pacjentów z rdzeniem rdzeniowym może sięgać nawet 60%5,7. SCI nie tylko prowadzi do zaniku kory ruchowej, ale także zmniejsza aktywność nerwową w obszarach mózgu powiązanych z funkcjami poznawczymi8. Zwiększone stany zapalne w hipokampie, wzgórzu i korze mózgowej po zrębieniu rdzenia rdzeniowego uważane jest za istotny czynnik przyczyniający się do zaburzeń poznawczych 9,10,11. Poprawa powikłań związanych z rdzeniem rdzeniowym, takich jak zaburzenia poznawcze, jest kluczowa dla poprawy rehabilitacji pacjentów i ułatwienia ich reintegracji ze społeczeństwem.

Akupunktura jest istotnym elementem tradycyjnej medycyny chińskiej (TCM), znaną ze swojej niezwykłej skuteczności klinicznej. Elektroakupunktura (EA) to innowacyjna terapia, która integruje tradycyjną akupunkturę z nowoczesnymi technikami elektroterapii12. Stymuluje nerwy i mięśnie poprzez zastosowanie niskonapięciowego prądu do konkretnych punktów punktowych (akupunktur), oferując terapeutyczne korzyści dla funkcjonalnej regeneracji po przewlekłym bólu i urazach układu nerwowego 13,14,15. Liczne badania wykazały, że EA może wspierać neurologiczną regenerację funkcjonalną po SCI oraz łagodzić powikłania, takie jak ból neuropatyczny, pęcherz neurogenny oraz spastyczność 16,17,18,19. Według teorii TCM, naczynie gubernatorskie jest połączone z mózgiem i rdzeniem kręgowym, wpływając na ich funkcje20. Stwierdziliśmy, że EA zastosowane na punktach akupunkturowych Dazhui (GV14) i Mingmen (GV4) na naczyniu gubernatorowym może łagodzić neurozapalenie i hamować powstawanie blizn glejowych, co ułatwia regenerację funkcji motorycznych po SCI21. Ponadto nasze badania wykazały, że akupunktury EA w Baihui (GV20) i Yintang (GV29) na statku Governor Vessel mogą poprawiać zdolności poznawcze u myszy modelu AD22,23. Niemniej jednak potencjał EA w leczeniu zaburzeń poznawczych po SCI pozostaje niewystarczająco zbadany.

W niniejszym badaniu opisujemy metody operacyjne EA w leczeniu zaburzeń poznawczych u szczurów z rdzeniem rdzeniowym, obejmujące wybór punktu akupunkturowego, kąt akupunktury, czas leczenia oraz inne szczegóły. Dodatkowo zastosowaliśmy testy Y-maze i NOR oraz oceny patologiczne, aby ocenić skuteczność EA w leczeniu zaburzeń poznawczych. Celem tego badania jest dostarczenie odniesienia do klinicznego leczenia tego schorzenia.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Protokół

Wszystkie procedury eksperymentalne były przeprowadzane w ścisłej zgodności z Wytycznymi Narodowych Instytutów Zdrowia dotyczącymi opieki i wykorzystania zwierząt laboratoryjnych oraz zatwierdzone przez Komitet Etyki Zwierząt Uniwersytetu Medycyny Chińskiej w Pekinie (ID zatwierdzenia: BUCM-2024042505-2065).

1. Przygotowanie zwierząt

  1. Wybrane dorosłe samce szczurów Sprague Dawley (SD) ważące 220,0 g ± 20,0 g do eksperymentu.
  2. Zwierzęta przetrzymywać w Centrum Eksperymentalnych Zwierząt Uniwersytetu Medycyny Chińskiej w Pekinie w kontrolowanej temperaturze (24 ± 2 °C) i w 12-godzinnym cyklu ciemno-światło, z dostępną sterylną wodą pitną i standardową dietą na pellety ad libitum.
  3. Przyzwyczaj wszystkie zwierzęta do środowiska przez 7 dni przed eksperymentami.
  4. Losowo podziel 24 szczury SD na trzy grupy (n = 8 na grupę): grupę sfałszowaną operację (Sham), grupę modelową SCI (Model) oraz grupę elektroakupunktury (EA). Diagram osi czasowej w projektowaniu eksperymentalnym jest zilustrowany na Rysunku 1.

2. Ustanowienie modelu SCI

UWAGA: Szczury były pozbawione wody i jedzenia przez 8 godzin przed operacją, a narzędzia chirurgiczne sterylizowano przy użyciu pary wysokotemperaturowej. Model SCI został skonstruowany na podstawie modyfikacji metody24 Allena.

  1. Umieść szczura w pudełku indukującym i indukuj go tlenem zawierającym 4% izofluranu (1 L/min), aż szczur zostanie całkowicie znieczulony.
  2. Wyjmij szczura z pudełka indukcyjnego i umieść jego nos oraz usta przy masce znieczulnej. Dostosuj stężenie izofluranu do 1,5%-2%, aby utrzymać znieczulenie.
    UWAGA: Podczas procesu znieczulenia szczura konieczne jest dokładne monitorowanie stanu szczura. Jeśli szczur wykazuje płytkie i szybkie oddychanie lub spadek temperatury ciała, należy zmniejszyć stężenie izofluranu, aby uniknąć nadmiernego znieczulenia.
  3. Ogol włosy z tyłu szczura, aby całkowicie odsłonić obszar operacyjny. Wysterylizuj obszar operacyjny jodoforem i alkoholem.
  4. Zlokalizuj dziesiąty kręg piersiowy (T10). Stwórz środkowe przedłużne nacięcie o średnicy 2,5 cm ze środkiem na T10.
  5. Użyj ostrzy chirurgicznych, aby oddzielić mięśnie pleców, odsłaniając wyrostek kolczasty oraz mięśnie przylegające do kręgów piersiowych. Usunięcie wyrostka kolczastego i blaszki T10 za pomocą kleszczy hemostatycznych, odsłaniając około 10 mm segment rdzenia kręgowego.
  6. Precyzyjnie uderz w odsłoniętą oponę twardą (200 kilodynów) za pomocą zmodyfikowanego urządzenia Allena, aby wywołać umiarkowane stłuczenie.
    UWAGA: Sukces modelu rdzenia rdzeniowego charakteryzuje się zatkaniem i obrzękiem mięśnia twardego w miejscu urazu oraz skurczem ogonowym. W grupie szamowej szczury przeszły ten sam zabieg chirurgiczny, w tym usunięcie błonki kręgowej, ale rdzeń kręgowy nie został uszkodzony.
  7. Przykryj rdzenną kostkę twardą gąbką żelatynową i zszyj ranę warstwa po warstwie.
  8. Umieść szczura na termoforze o stałej temperaturze ustawionej na 37 °C i monitoruj go, aż odzyska przytomność.
  9. Podawaj zastrzyk z penicyliny sodowej mięśniowi szczura raz dziennie przez trzy dni po operacji, aby zapobiec infekcji. Dodatkowo wykonuj masaż pęcherza szczura 2-3 razy dziennie, aby ułatwić oddawanie moczu.

3. Leczenie EA

  1. Wykonaj interwencję EA 24 godziny po pomyślnym ustanowieniu modelu SCI.
  2. Przygotuj jednorazowe igły do sterylnej akupunktury (średnica: 0,30 mm; długość: 25 mm).
  3. Zgodnie z teorią TCM i doświadczeniem klinicznym wybierz punkty punktowe Baihui (GV20), Dazhui (GV14) i Mingmen (GV4) do leczenia EA.
  4. Przygotuj czarne jedwabne pończochy. Prowadź szczura, by wiercił w czarne pończochy. Zwiąż i przymocuj szczura do deski za pomocą krawata.
    UWAGA: Lina powinna być umiarkowanie napięta, aby zapobiec uduszeniu szczura spowodowanym zbyt mocnym wiązaniem lub ucieczką spowodowaną zbyt luźnym wiązaniem.
  5. Umieść punkt akupunktowy GV20 w centrum kości ciemieniowej, na przecięciu linii środkowej czoła i środka linii łączącej dwie końcówki uszu. Umieść GV14 pomiędzy siódmym kręgiem szyjnym (C7) a pierwszym kręgiem piersiowym (T1), na linii środkowej pleców. Umieść GV4 w zagłębieniu pod kolczastym wyrostkiem drugiego kręgu lędźwiowego (L2), na linii środkowej pleców (Rysunek 2).
  6. Dezynfekuj punkty punktowe medycznym jodoforem i 75% alkoholem medycznym.
  7. Wkładaj igły skośnie w dół pod kątem 15° na głębokość 2-3 mm w GV20. Włóż igły w punkty GV14 i GV4 pod kątem 45°, z głębokością 5-7 mm (Rysunek 3A).
  8. Podłącz igły do aparatu terapeutycznego EA z częstotliwością 2 Hz i intensywnością 1 mA. Wybierz przebieg jako falę ciągłą (rysunek 3B, C).
    UWAGA: Ta interwencja EA była przeprowadzana codziennie przez 28 dni, każda sesja trwała 20 minut. Szczury z grup Sham i Model nie otrzymały leczenia, ale były unieruchomiane przez 20 minut dziennie w taki sam sposób jak te z grupy EA.

4. Ocena funkcji ruchowych (Rysunek 4)

UWAGA: W 1., 7., 14., 21. i 28. dniu po operacji funkcje motoryczne szczurów w każdej grupie oceniano na podstawie wyniku Basso, Beattie i Bresnahan (BBB).

  1. Umieść szczura w otwartym i cichym miejscu, aby umożliwić swobodne poruszanie się.
  2. Obserwuj ruchy tylnych kończyn szczura i oceniaj je według ustalonej skali25.
    UWAGA: Dwóch badaczy, którzy nie znali grupowania szczurów, niezależnie przydzieliło wyniki, a końcowy wynik dla każdego szczura został obliczony jako średnia ich ocen.

5. Przeprowadzenie eksperymentu labiryntu Y (Rysunek 5)

UWAGA: Pierwszego dnia po interwencji EA (29. dzień eksperymentu) przeprowadzono eksperyment z labiryntem Y, w tym test spontanicznej zmiany oraz nowatorski test eksploracji ramienia. Procedura eksperymentalna labiryntu Y została przedstawiona na rysunku 5A.

  1. Przed testem umieść klatki dla zwierząt doświadczalnych w środowisku eksperymentalnym i aklimatyzuj się przez 30 minut.
  2. Oczyść urządzenie Y-labirynt alkoholem i losowo ustaw trzy ramiona labiryntu Y jako ramię startowe, ramię nowatorskie i drugie.
  3. Podczas spontanicznego testu naprzemiennego przykryj nowe ramię przegrodą.
  4. Delikatnie umieść szczura na końcu początkowego ramienia i pozwól mu swobodnie eksplorować oba ramiona przez 10 minut. Zapisz czasy, odległość i czas pobytu szczura wchodzącego w ramię startowe i drugie.
  5. Po zakończeniu testu każdego szczura usuń wszelkie wychody z komory. Wnętrze komory oczyść 75% alkoholem medycznym i wysuszyć czystą gazą, aby zapobiec zakłóceniom zapachów pozostawionych przez poprzednich uczestników testowych. Utrzymuj ciche otoczenie wewnątrz przez cały eksperyment.
  6. Usuń przegrodę i przeprowadź nowy eksperyment eksploracji ramienia 4 godziny po eksperymencie spontanicznej alternacji.
  7. Delikatnie umieść szczura na końcu początkowego ramienia i pozwól mu swobodnie eksplorować trzy ramiona przez 5 minut.
  8. Zapisz kolejność, liczbę wejść, odległość oraz czas pobytu szczura wchodzącego do każdego ramienia w ciągu 5 minut.

6. Przeprowadzenie nowego eksperymentu rozpoznawania obiektów (NOR) (Rysunek 6)

UWAGA: Drugiego dnia po interwencji EA (30. dnia eksperymentu) przeprowadzono eksperyment NOR. Procedura eksperymentalna NOR została przedstawiona na rysunku 6A.

  1. Przygotuj eksperymentalny zestaw składający się z pudełka o wymiarach 70 cm × 60 cm × 30 cm, niebieskich obiektów sześciennych oraz czerwonych cylindrycznych.
  2. Wstaw szczura do eksperymentalnego pudełka i pozwól mu swobodnie eksplorować otoczenie przez 10 minut.
  3. Po zakończeniu powyższego eksperymentu przez 1 godzinę, umieść dwa identyczne obiekty sześcienne symetrycznie w dwóch narożnikach pudełka eksperymentalnego, ustawione około 10 cm od ścian.
  4. Wprowadź szczura do pudełka eksperymentalnego z głową skierowaną z dala od bloku obiektu. Pozwól szczurowi swobodnie eksplorować otoczenie przez 10 minut, aby zapoznać się z blokiem obiektów.
  5. Po zakończeniu każdego testu szczura dokładnie przetrzyj pudełko z eksperymentem alkoholem, aby zminimalizować wpływ pozostałości zapachów na zachowanie kolejnych szczurów. Gdy pudełko wyschnie, włóż do środka kolejnego szczura.
  6. Po zakończeniu powyższego eksperymentu na 4 godziny zastąpić prawy blok obiektu cylindrycznym.
  7. Wprowadź szczura ponownie do eksperymentalnego pudełka z głową zwróconą tyłem do ściany bloku obiektu. Pozwól szczurowi swobodnie eksplorować przez 5 minut w pudełku.
  8. Zapisz czas spędzony na eksploracji obiektów cylindrycznych i sześciennych oraz całkowitą odległość i czas. Oblicz indeks preferencji według wzoru: (Czas eksploracji nowego obiektu - czas eksploracji starego obiektu)/(Czas eksploracji nowego obiektu + czas eksploracji starego obiektu) × 100%.

7. Przeprowadzenie testu preferencji sacharozy

UWAGA: Mieszkania w jednej klatce są wykorzystywane, aby zapobiec rywalizacji społecznej o wodę, co może zakłócać nawyki picia.

  1. Przygotuj butelkę z 1% roztworem sacharozy i butelkę z wodą z kranu.
  2. Włóż roztwór cukru i butelki z wodą z kranu w klatce, dbając o zmianę pozycji co 12 godzin.
  3. Pozwól szczurowi przystosować się do wody cukrowej i kranowej przez 48 godzin. Następnie pozbawij szczura wody pitnej przez 24 godziny bez postu.
  4. Wlej butelkę wody z cukrem i butelkę wody z kranu z powrotem do klatki. Zmień pozycje butelek po 2 godzinach i zapisuj spożycie każdego płynu przez okres 4 godzin. Oblicz procent preferencji sacharozy, stosując wzór: (spożycie roztworu sacharozy/(spożycie roztworu sacharozowego + wodę) × 100%.

8. Barwienie hipokampa HE

  1. Po badaniu behawioralnym znieczulaj szczura 3% fenobarbitalu sodu (2,0 mL/kg). Wykonaj perfuzję serca z użyciem paradehydu. Weź tkankę mózgową i zanurz ją w parafinie. Przygotuj plasterki o grubości 5 μm.
    UWAGA: Paradehyd drażniący jest i należy go obchodzić w dobrze wentylowanym środowisku.
  2. Stopniowo odparafinizuj plasterki ksylenem (I) i ksylenem (II) przez kolejne 10 minut. Mocz plasterki w alkoholu gradientowym dla odwodnienia, a każdy gradient trwa 3 minuty. Na koniec zanurz plasterki w wodzie destylowanej na 2 minuty.
  3. Barwij plasterki roztworem hematoksyliny przez 10 minut. Przepłukuj nadmiar roztworu wodą przez 1-3 minuty. Szybko zanurz preparaty w etanolu z kwasem muriatalnym na 5-10 sekund. Ponownie opłucz szkiełko wodą.
  4. Przelej plasterki do słabego, zasadowego roztworu wodnego, aby uzyskać niebieski powrót. Płucz plasterki wodą przez 1-3 minuty. Zanurz plasterki w etanolu 85% na 3-5 minut.
  5. Barw plasterki roztworem eozyny przez 3-5 minut, a po umyciu susz alkoholem gradientowym. Umieść plasterki w ksylenie na 5-10 minut. Na koniec użyj żywicy neutralnej do uszczelnienia plasterków.
  6. Obejrzyj zabarwione preparaty pod mikroskopem świetlnym przy powiększeniu 400×.

9. Analiza ELISA

  1. Po badaniu behawioralnym uśpij szczura za pomocą intraotrzewnej zastrzyku pentobarbitalu sodu (200 mg/kg). Pobierz tkanki hipokampa.
  2. Zważ tkankę hipokampa i przenieś ją do wcześniej schłodzonej rurki homogenizacyjnej.
  3. Ujednolic tkanki na lodzie za pomocą homogenizatora tkanek.
  4. Wiruj homogenat w 5000 × g przez 10 minut w temperaturze 4 °C. Pobierz supernatant i określ całkowite stężenie białka.
  5. Określ stężenie IL-1β i IL-6 w hipokampie za pomocą zestawów ELISA.

10. Analiza statystyczna

  1. Używaj odpowiedniego oprogramowania do analizy statystycznej. Wyrażmy dane jako średnią ± odchyleniu standardowym.
  2. Wykonaj dwukierunkową analizę wariancji (ANOVA) z powtarzanymi pomiarami oraz testem najmniejszej istotnej różnicy (LSD) w celu analizy różnic między grupami w danych wyników BBB.
  3. Wykonaj jednokierunkową ANOVA metodą LSD, aby porównać zmienność między grupami w innych badaniach, gdy dane były normalnie rozłożone lub miały jednorodną zmienność. W przeciwnym razie przeprowadź test nieparametryczny.
  4. Jeśli dane są zgodne z rozkładem normalnym, przeprowadź analizę korelacji Pearsona. W przeciwnym razie przeprowadź analizę korelacji Spearmana.
  5. Rozważ różnice statystycznie istotne, gdy P < 0,05.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Wyniki

EA poprawia funkcje motoryczne szczurów z rdzeniem rdzeniowym
Pierwszegodnia po operacji SCI wyniki BBB grupy Modelu zostały zarejestrowane na poziomie 0, co wskazuje na pomyślne wdrożenie modelu SCI. Przez1, 7, 14, 21 i 28 dni po operacji, wyniki BBB grupy Model były znacznie niższe niż grupy Sham (P < 0,01). Co istotne, 7., 14. i 28. dzień po operacji wyniki BBB grupy EA były znacznie wyższe niż grupy ...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Dyskusja

SCI to stresujące wydarzenie, które powoduje poważne urazy w fizjologii i psychologii pacjentów, prowadząc nie tylko do zaburzeń ruchowych i sensorycznych, ale także do zaburzeń poznawczych3. Jak podano4, ryzyko pogorszenia funkcji poznawczych po SCI jest 13 razy wyższe niż u osób zdrowych. Pacjenci w średnim i starszym wieku z SCI wykazują wyższą podatność na AD w porównaniu do rówieśników, którzy nie doświadczyli SCI6. Po urazie pacjenci rdzenia rd...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

Wszyscy autorzy zadeklarowali brak potencjalnych konfliktów interesów.

Podziękowania

Badania te zostały wsparte przez Narodową Fundację Nauk Przyrodniczych Chin (nr 82374593, 82305381), Fundusz Budowy Szpitali Wysokiego Szczebla w Shenzhen (nr 24275G1001), Wspierany Projekt Planu Medycznego i Nauk o Zdrowiu i technologii Changshu (nr CSWSQ202302) oraz Niezależnym Projekcie Badawczym dla doktorantów na Uniwersytecie Medycyny Chińskiej w Pekinie (nr ZJKT2025016).

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
0,9% soli fizjologicznejBeijing suolaibao technology Co., Ltd.IN9000, P1022-10
4% paraformaldehyduBeyotimeP0099
75% alkoholu medycznego, jodoforuBeijing oubei biology science and technology Co., LtdOB40126-1, HX0098AWykorzystywane do dezynfekcji
Igły akupunkturoweZhongyan Taihe Co., LtdZY500
Aparat znieczulający dla małych zwierzątShanghai Yuyan Instruments Co., LtdABM
System analizy zachowań zwierzątBeijing zhong Shi di Chuang technology Co., LtdZS-XWT-II
Maszyna odśrodkowaEppendorf, Niemcy5811FR080384
Urządzenie elektroakupunkturyShantou Medical Instrument Factory Co., Ltd6805-DUżywane  do leczenia elektroakupunkturą
Zestawy ELISAJianglai Biologiczna Nauka i Technologia, LtdJL18365, JL20896Używany do wykrywania poziomów IL-1, IL-6
Gąbka żelatynowaJiangxi Xiang'en Medical Technology Development Co., Ltd24092901
Roztwór hematoksyliny, roztwór eozynySigma-Aldrich03971Wykorzystywane do barwienia HE
Nieskończony Horyzont ImpaktorLexington, KY, Stany ZjednoczoneIH-0400Wykorzystany do budowy modelu urazu rdzenia kręgowego
IzofluranShenzhen Ruiwode Life Science and Technology Co., LtdR510-22-10
MikroskopOLYMPUS
Penicylina sodowaCoolaberCP8271-5g
Fenobarbital sodowySigma-AldrichP3761
Szczury SDSibeifu (Pekin) Biologia Technologiczna Co., LtdSCXK2019-0010
SPSSIBMWersja 26.0Oprogramowanie statystyczne
SacharozaBeijing Solarbio Technology Co., LtdS8271
KsylenShanghai Aladdin Biochemical Technology Co., LtdX112050

Bibliografia

  1. Kirshblum, S., Snider, B., Eren, F., Guest, J. Characterizing natural recovery after traumatic spinal cord injury. J Neurotrauma. 38 (9), 1267-1284 (2021).
  2. Lim, S. W., et al. Anxiety and depression in patients with traumatic spinal cord injury:a nationwide population-based cohort study. PLoS One. 12 (1), e0169623(2017).
  3. Calderone, A., et al. Cognitive, behavioral and psychiatric symptoms in patients with spinal cord injury:a scoping review. Front Psychiatry. 15, 1369714(2024).
  4. Craig, A., Guest, R., Tran, Y., Middleton, J. Cognitive impairment and mood states after spinal cord injury. J Neurotrauma. 34 (6), 1156-1163 (2017).
  5. Yeh, T. S., Ho, Y. C., Hsu, C. L., Pan, S. L. Spinal cord injury and Alzheimer's disease risk:a population-based, retrospective cohort study. Spinal Cord. 56 (2), 151-157 (2018).
  6. Mahmoudi, E., et al. Traumatic spinal cord injury and risk of early and late onset Alzheimer's disease and related dementia:large longitudinal study. Arch Phys Med Rehabil. 102 (6), 1147-1154 (2021).
  7. Sachdeva, R., Gao, F., Chan, C. C. H., Krassioukov, A. V. Cognitive function after spinal cord injury:a systematic review. Neurology. 91 (13), 611-621 (2018).
  8. Chen, X., et al. The gray matter atrophy and related network changes occur in the higher cognitive region rather than the primary sensorimotor cortex after spinal cord injury. PeerJ. 11, e16172(2023).
  9. Li, Y., et al. Delayed microglial depletion after spinal cord injury reduces chronic inflammation and neurodegeneration in the brain and improves neurological recovery in male mice. Theranostics. 10 (25), 11376-11403 (2020).
  10. Wu, J., et al. Endoplasmic reticulum stress and disrupted neurogenesis in the brain are associated with cognitive impairment and depressive-like behavior after spinal cord injury. J Neurotrauma. 33 (21), 1919-1935 (2016).
  11. Sefiani, A., Geoffroy, C. G. The potential role of inflammation in modulating endogenous hippocampal neurogenesis after spinal cord injury. Front Neurosci. 15, 682259(2021).
  12. Wu, R., et al. Electroacupuncture stimulation to modulate neural oscillations in promoting neurological rehabilitation. Brain Res. 1822, 148642(2024).
  13. Xu, Y., et al. Electroacupuncture alleviates mechanical allodynia and anxiety-like behaviors induced by chronic neuropathic pain via regulating rostral anterior cingulate cortex-dorsal raphe nucleus neural circuit. CNS Neurosci Ther. 29 (12), 4043-4058 (2023).
  14. Hu, R., et al. Electroacupuncture promotes the repair of the damaged spinal cord in mice by mediating neurocan-perineuronal net. CNS Neurosci Ther. 30 (1), e14468(2024).
  15. Chen, M., et al. Electroacupuncture alleviates sciatic nerve injury and inhibits autophagy in rats. Acupunct Med. 42 (5), 268-274 (2024).
  16. Chen, Y., et al. Electroacupuncture inhibits NLRP3 activation by regulating CMPK2 after spinal cord injury. Front Immunol. 13, 788556(2022).
  17. Cheng, J., et al. Electroacupuncture modulates the intestinal microecology to improve intestinal motility in spinal cord injury rats. Microb Biotechnol. 15 (3), 862-873 (2022).
  18. Zhang, T., Yu, J., Huang, Z., Wang, G., Zhang, R. Electroacupuncture improves neurogenic bladder dysfunction through activation of NGF/TrkA signaling in a rat model. J Cell Biochem. 120 (6), 9900-9905 (2019).
  19. Liu, Q., et al. The protein kinase A signaling pathway mediates the effect of electroacupuncture on excessive contraction of the bladder detrusor in a rat model of neurogenic bladder. Acupunct Med. 42 (1), 32-38 (2024).
  20. Xu, Y., et al. Effectiveness of acupuncture in the governor vessel and yangming meridian for the treatment of acute ischemic stroke:a systematic review and network meta-analysis. PLoS One. 19 (4), (2024).
  21. Hu, Y., et al. Effects of electroacupuncture on glial scar generation in SCI model rats. Anat Rec (Hoboken). 306 (12), 3156-3168 (2023).
  22. Ding, N., Hao, X., Zhang, Y., Zhang, Y., Li, Z. Benign regulation of short-chain fatty acids:the underlying mechanism of the beneficial effects of manual acupuncture on cognitive ability and the intestinal mucosal barrier in APP/PS1 mice. Front Neurosci. 19, 1509581(2025).
  23. Wang, Z. D., et al. Electroacupuncture efficacy evaluation on blood-brain barrier and cerebral blood flow function in SAMP8 mice. Pak Vet J. 45 (1), 149-161 (2025).
  24. Koozekanani, S. H., Vise, W. M., Hashemi, R. M., McGhee, R. B. Possible mechanisms for observed pathophysiological variability in experimental spinal cord injury by the method of Allen. J Neurosurg. 44 (4), 429-434 (1976).
  25. Basso, D. M., Beattie, M. S., Bresnahan, J. C. A sensitive and reliable locomotor rating scale for open field testing in rats. J Neurotrauma. 12 (1), 1-21 (1995).
  26. Bai, J., et al. The impact of electroacupuncture on anxiety-like behavior and gut microbiome in a mouse model of chronic restraint stress. Front Behav Neurosci. 17, 1292835(2023).
  27. Man, S. C., et al. A pilot controlled trial of a combination of dense cranial electroacupuncture stimulation and body acupuncture for post-stroke depression. BMC Complement Altern Med. 14, 255(2014).
  28. Zhang, Y., et al. Manual acupuncture benignly regulates blood-brain barrier disruption and reduces lipopolysaccharide loading and systemic inflammation, possibly by adjusting the gut microbiota. Front Aging Neurosci. 14, 1018371(2022).
  29. Wang, X., et al. Electroacupuncture in promoting neural repair after spinal cord injury:inhibiting the Notch signaling pathway and regulating downstream proteins expression. Anat Rec (Hoboken). 304 (11), 2494-2505 (2021).
  30. Wang, W. W., Xie, C. L., Lu, L., Zheng, G. Q. A systematic review and meta-analysis of Baihui (GV20)-based scalp acupuncture in experimental ischemic stroke. Sci Rep. 4, 3981(2014).
  31. Lu, X. Y., et al. Impact of acupuncture on ischemia/reperfusion injury:unraveling the role of miR-34c-5p and autophagy activation. Brain Res Bull. 215, 111031(2024).
  32. Song, Y., Chen, Y., Li, J., Sun, W., Jin, F. Manual acupuncture enhanced therapeutic efficacy in vascular dementia rat model:systematic review and network meta-analysis. Syst Rev. 14 (1), 80(2025).
  33. Ding, N., Jiang, J., Xu, A., Tang, Y., Li, Z. Manual acupuncture regulates behavior and cerebral blood flow in the SAMP8 mouse model of Alzheimer's disease. Front Neurosci. 13, 37(2019).
  34. Ai, Q., et al. Electroacupuncture inhibits oxidative stress and improves cognitive function by downregulating the Ang II/AT1R/NOX axis in chronic cerebral ischemia rats. Neurosci Lett. 851, 138179(2025).
  35. Wang, X., et al. Electroacupuncture at Dazhui (GV14) and Mingmen (GV4) protects against spinal cord injury:the role of the Wnt/β-catenin signaling pathway. Neural Regen Res. 11 (12), 2004-2011 (2016).
  36. Li, K., et al. Effect of electroacupuncture treatment at Dazhui (GV14) and Mingmen (GV4) modulates the PI3K/Akt/mTOR signaling pathway in rats after spinal cord injury. Neural Plast. 2020, 5474608(2020).
  37. Ahuja, C. S., Martin, A. R., Fehlings, M. Recent advances in managing a spinal cord injury secondary to trauma. F1000Res. 5, F1000 Faculty Rev-1017(2016).
  38. Jure, I., De Nicola, A. F., Encinas, J. M., Labombarda, F. Spinal cord injury leads to hippocampal glial alterations and neural stem cell inactivation. Cell Mol Neurobiol. 42 (1), 197-215 (2022).
  39. Bromley-Brits, K., Deng, Y., Song, W. Morris water maze test for learning and memory deficits in Alzheimer's disease model mice. J Vis Exp. (53), e2920(2011).
  40. Kraeuter, A. K., Guest, P. C., Sarnyai, Z. The Y-maze for assessment of spatial working and reference memory in mice. Methods Mol Biol. 1916, 105-111 (1916).
  41. Leger, M., et al. Object recognition test in mice. Nat Protoc. 8 (12), 2531-2537 (2013).
  42. Li, C., et al. Regulation of NRF2/GPX4 signaling pathway by hyperbaric oxygen protects against depressive behavior and cognitive impairment in a spinal cord injury rat model. CNS Neurosci Ther. 31 (5), e70421(2025).

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Przedruki i uprawnienia

Poproś o pozwolenie na ponowne wykorzystanie tekstu lub ilustracji tego artykułu JoVE

Poproś o pozwolenie

Tagi

O rodkowy Uk ad NerwowyFunkcje HipokampaFunkcje Kory M zgowejMetoda AllenaTest Labiryntu w kszta cie YRozpoznawanie Nowego ObiektuKana Governor

Powiązane artykuły