Artykuł metodologiczny

Podejście chirurgiczne do pełnego pobrania przeszczepu przeszczepów twarzy tkanek miękkich dla naczyńsko-kompozytowej allotransplantacji

DOI:

10.3791/69607

⸱

30 grudnia 2025

 ,  ,  ,  ,  ,  , 
1Department of Plastic and Reconstructive Surgery, Institut Universitaire Locomoteur et du Sport, Pasteur 2 Hospital, University Côte d'Azur, Nice, France and Université Côte d'Azur, CNRS, LP2M, 2Hansjörg Wyss Department of Plastic Surgery, New York University Langone Health

W tym artykule

Podsumowanie

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Protokół ten szczegółowo opisuje technikę chirurgiczną stosowaną do pobrania i przygotowania pełnego przeszczepu twarzy do przeszczepu u pacjentów z poważnymi zniekształceniami twarzy, koncentrując się głównie na pobieraniu tkanek miękkich z ograniczonym pobraniem kości ograniczonym do struktury nosa.

Streszczenie

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Pełna naczynowo naczynjona allotransplantacja twarzy (VCA) stanowi opcję rekonstrukcyjną dla pacjentów z poważnymi zniekształceniami twarzy, których nie można leczyć metodami konwencjonalnymi. Niniejszy artykuł opisuje protokół chirurgiczny dotyczący pozyskania pełnego przeszczepu twarzy od dawcy, koncentrujący się na tkankach miękkich z ograniczonym pobraniem kości ograniczonym do struktury nosowej, a także podkreśla kluczowe punkty anatomiczne i techniczne kwestie zapewniające bezpieczne i efektywne pobranie. Zabieg obejmuje rozwarstwienie całych tkanek miękkich twarzy, przy jednoczesnym zachowaniu tętnicy szyjnej zewnętrznej, żył szyjnym wewnętrznych oraz kolejnych gałęzi nerwów twarzowych i szczękowych, aby zmaksymalizować długość otoczki w późniejszej neurorafii. Protokół opisuje systematyczne odsłonięcie szyjki naczyniowej u ich początku, podprzyłożowe wyniesienie skóry głowy, identyfikację i podział nerwów nadoczodołowych i podoczodołowych oraz przygotowanie nerwu twarzowego u jego korzenia do osiągnięcia optymalnej długości. Podkreślane są strategie mające na celu minimalizację czasu niedokrwienia i zapewnienie integralności przeszczepu. Niniejszy artykuł przedstawia kompleksowy wizualny przewodnik po fazie pobierania pełnego przeszczepu twarzy tkanek miękkich i ma na celu ustandaryzowanie tej techniki do zastosowań badawczych oraz szkolenia chirurgicznego w zaawansowanym naczyniowym allotransplantacji kompozytów.

Wprowadzenie

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Nieśmiertelne, ciężkie wady czaszkowo-twarzowe głęboko wpływają na interakcje społeczne pacjentów oraz postrzeganie własnego wizerunku, często prowadząc do poważnych problemów psychicznych. Poza wyglądem, nienaruszona anatomia twarzy jest kluczowa dla niezbędnych funkcji, w tym oddychania, żucia, połykania, mowy oraz komunikacji niewerbalnej 1,2.

Allotransplantacja twarzy stała się transformującą opcją rekonstrukcji dla pacjentów z poważnymi deformacjami twarzy wynikającymi z wad wrodzonych, urazów lub resekcji onkologicznych. Pomimo postępów w konwencjonalnej chirurgii rekonstrukcyjnej, przywrócenie zarówno funkcji, jak i estetyki pozostaje szczególnie trudne w przypadku centralnie położonych defektów 3,4.

Od pierwszego częściowego przeszczepu twarzy we Francji w 2005 roku techniki nadal się rozwijały, 6,7, a kulminacją było ostatnie osiągnięcie w 2023 roku, gdy Ceradini i in. przeprowadzili łączną transplantację całego oka i twarzy. Nowoczesne planowanie chirurgiczne i innowacje technologiczne poprawiły powtarzalność i przewidywalność wyników, umożliwiając lepsze wyniki funkcjonalne i estetyczne 4,9. Jednak terapia immunosupresyjna przez całe życie niesie ze sobą ryzyko zakaźnych, metabolicznych i nowotworowych powikłań, które rodzą poważne wyzwania etyczne i medyczne10,11.

Strategie pobierania przeszły od częściowych przeszczepów dolnej części twarzy12 do allograftów całej twarzy8, 13, 14. Pobieranie pełnej twarzy jest wskazane, gdy rozległa utrata tkanek obejmuje wiele jednostek estetycznych i funkcjonalnych, takich jak powieki, nos, usta, policzki, a przywrócenie funkcji życiowych (oddychanie, mowę, żucie, połykanie) wymaga trójwymiarowej rekonstrukcji całej struktury twarzy 6,15.

Unaczynienie twarzy zapewnia głównie zewnętrzny układ tętnicy szyjnej, przy czym tętnica licowa pełni funkcję głównego naczynia, a powierzchowna tętnica skroniowa ważnym źródłem uzupełniającym16,17. Drenaż żylny odbywa się głównie przez żyłę twarzową do żył szyjną wewnętrzną18. Zachowanie struktur nerwowych jest równie istotne: funkcje motoryczne przywraca się poprzez koaptację nerwu twarzowego, natomiast unerwienie czuciowe twarzy19 zależy od starannej sekcji nerwu trójdzielnego, gałęzi: V1, V2 i V320.

Przedstawiamy tutaj krok po kroku protokół pobierania pełnego naczyńsko-naczyniowego allograftu złożonego, w tym czoła, powiek, policzków, nosa i ust od dawcy z rodu zwłok. Pobieranie obejmuje jedynie ograniczone struktury kostne, ograniczone do ramy nosowej, która jest wykorzystywana głównie w celach pedagogicznych, aby ułatwić trening, powtarzalność i zminimalizować złożoność proceduralną podczas pokazów zwłok.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Protokół

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Laboratorium Anatomiczne Wydziału Medycyny w Nicei we Francji hojnie udostępniło okazy i materiały użyte w tym badaniu. Badanie zostało zatwierdzone przez Francuski Narodowy Komitet Etyki (zatwierdzenie IRB nr IRB00014528_2025_36) i prowadzonych zgodnie z zasadami Deklaracji Helsińskiej.

1. Pozycjonowanie i przygotowanie dróg oddechowych

  1. Połóż dawcę na plecach na stole operacyjnym.
  2. Wykonaj tracheotomię, aby zabezpieczyć drogi oddechowe.
    UWAGA: Kiedy to możliwe, wykonuj pobieranie w warunkach bijących serca, aby zminimalizować czas niedokrwienny. Allograft twarzy powinien być pobrany przed pobraniem innych narządów stałych, aby zachować jakość tkanek bez utraty wyników późniejszych przeszczepów. Przed rozpoczęciem zakupu nałóż odlewankę na twarz dawcy (odcisk maski na twarz).
  3. Określ planowane nacięcia za pomocą chirurgicznego długopisu: nacięcie koronowe; Nacięcie przedtragalne; Nacięcie boczne szyjne; Nacięcie poprzeczne na poziomie kości gnykowej.
  4. Infiltrować znieczuleniem miejscowym (lidokaina + epinefryna 2%)
    UWAGA: Zacznij od skóry głowy i przesuwaj się w dół wzdłuż okolicy przedusznej. Przedłuż infiltrację do punktu około 5 cm poniżej kąta żuchwy, a następnie kontynuuj przednią część okolicy szyjki, aby połączyć się ze stroną przeciwną powyżej miejsca tracheotomii.

figure-protocol-1
Rysunek 1: Przedoperacyjne ślady skórne planowanych nacięć. (A) Widok przedni pokazujący poprzeczne nacięcie na poziomie kości gnykowej. (B) Widok boczny pokazujący boczne nacięcie koronowe, nacięcie przeduuszne oraz boczne nacięcie szyjne wzdłuż konturu mięśnia mostkowo-trawko-żółto-rdzeniowego. Proszę kliknąć tutaj, aby zobaczyć większą wersję tej figurki.

2. Rozwarstwienie szyjki macicy

  1. Wykonaj nacięcie szyjne rozciągające się od górnej krawędzi obojczyka do płatka ucha, używając ostrza skalpela nr 10 lub 15.
  2. Unieś płat skóry szyjnej szyjki w płaszczyźnie podplatowej za pomocą mikroskopialnej elektrokautery, ustawionej na około 20-30 °C i 80 W w trybie krzepnięcia oraz kleszczy tkankowych Adson.
  3. Rozciąć okolice szyi, aby zidentyfikować mięsień mostkowo-poduszkowo-naczyniowy, używając nożyczek przeciw zezu.
  4. Wykonaj rozwarstwienie obwodowe żyły szyjnej zewnętrznej, która jest podwiązana i dzielona nożyczkami na zez.
  5. Cofnięcie mięśnia mostkowo-poduszko-duszanego bocznie za pomocą retraktora Farabeufa, aby uzyskać dostęp do szypekli naczyniowych. Uwolnij ten mięsień bocznie, aby odsłonić naczynia.
  6. Ostrożnie rozcinaj nożyczkami na zez, aby odsłonić żyłę szyjną wewnętrzną i następnie tarczowo-językowo-twarzowy pnień oraz zidentyfikować i zachować żyłę twarzową. Kontroluj drobne krwawienia przy koagulacji niskiej intensywności, stosując standardową monopunkcyjną elektrokauterę ustawioną na 10-20 W w trybie krzepnięcia lub urządzenie dwubiegunowe ustawione na 10-20 W, aby utrzymać precyzyjną hemostazę.
    UWAGA: Stosuj niskointensywną koagulację i utrzymuj stałą wizualizację rozgałęzienia szyjnej, aby uniknąć urazów termicznych nerwów błędnych i podjęzykowych.
  7. Ostrożnie rozciknij nożyczkami przeciw zezu, aby odsłonić wspólną tętnicę szyjną i odsłonić rozgałęzienie szyi.
  8. Rozciąć tętnicę szyjną zezową nożyczkami czaszkowymi, aby odsłonić wszystkie gałęzie: podwiązać i podzielić tarczycę górną, wężącą gardła, tętnicę potyliczną oraz językową. Zachowaj gałąź twarzy.
  9. Zidentyfikuj tylną część brzucha mięśnia dwugłowego i mięśnia kościkowego.
  10. Przeciąć oba mięśnie w pobliżu ich przyczepów, aby zwiększyć ekspozycję chirurgiczną, używając monopunkalnej elektrokautery z cienkim końcówką ustawionym na około 30 °C w trybie krzepnięcia.
  11. Zlokalizuj nerw podjęzykowy i przeciń go za pomocą drobnokoczakowej monolarnej elektrokautery, ustawionej na około 20-30 °C w trybie krzepnięcia proximalnie, aby uzyskać maksymalną długość potencjalnego przeszczepu nerwu.
  12. Zidentyfikuj, podwiązuj i podziel gruczoł podżuchwywy, przewód i naczynia. Wyklucz gruczoł podżuchwy z przeszczepu alla.
    UWAGA: Gruczoł podżuchwy jest wyłączany, aby zminimalizować powikłania ślinowe po operacji, takie jak sialocela lub infekcje, które występują częściej, gdy gruczoł lub jego przewod jest objęty przeszczepem. Ten wybór jest zgodny z praktyką kliniczną w przeszczepach twarzy, gdzie wykluczenie gruczołów ślinowych, szczególnie gruczołu podżuchwywowego, zmniejsza objętość i poprawia definicję konturu21.
  13. Powtórz powyższe kroki sekcji szyjnej po przeciwnej stronie.

figure-protocol-2
Rysunek 2: Rozwarstwienie szyjne i odsłonięcie struktury szyi u źródła jej rdzenia. (1) Wspólna tętnica szyjna, (2) Tętnica szyjna zewnętrzna, (3) Tętnica potyliczna, (4) Tylna tętnica uszna, (5) Tętnica twarzowa, (6) Tętnica językowa, (7) Tętnica tarczycowa górna, (8) żyła szyjna wewnętrzna, (9) żyła szyjna, (10) nerw błędny, (11) nerw szyjny (11) nerw podjęzykowy. Proszę kliknąć tutaj, aby zobaczyć większą wersję tej figurki.

3. Sekcja nerwu twarzowego

  1. Wykonaj nacięcie przeduchowe za pomocą ostrza skalpela nr 10 lub 15, aby rozcinać płat skórny przeduszny nożyczkami na zez w podpowierzchniowej płaszczyźnie układu mięśniowo-aponeurotycznego.
  2. Przeciąć zewnętrzny kanał słuchowy za pomocą cienkokońcowego monopolarnego elektrokauteru ustawionego na około 30 °C w trybie krzepnięcia, aby odsłonić nerw twarzowy u jego źródła (retro-uszny)
    UWAGA: Przecięcie zewnętrznego kanału słuchowego jest powszechnie stosowane w protokołach zwłokowych lub eksperymentalnych, ponieważ zapewnia szybszą i prostszą ekspozycję. Można również przeprowadzić pozaduszne rozwarstwienie głównego pnia nerwu twarzowego, stosując metodę parotidektomii, zachowując zewnętrzny kanał słuchowy. W klinicznym przeszczepie twarzy to drugie podejście jest systematycznie preferowane, aby zachować integralność kanału słuchowego i zewnętrznych struktur ucha. Unikaj nadmiernej przyczepności pnia nerwu twarzowego, aby zapobiec awulsji lub przecięciu w otworze rysosutkowatym.
  3. Rozcień tętnicę szczękową nożyczkami i podwiązuj za pomocą wchłaniającego monofilamentowego szwu tętnicy szczękowej (jeśli wcześniej nie robić).
  4. Uwolnij wszystkie przednie tkanki miękkie en bloc – w tym powierzchowne naczynia skroniowe, używając nożyczek przeciwzezowych.
    UWAGA: Dla celów klinicznych należy uwzględnić wykluczenie gruczołów przyusznych i pozostałych gruczołów ślinowych, aby zminimalizować powstawanie sialocele6. Wymaga to powierzchownej parotidektomii z rozwarstwieniem nerwu twarzowego. W kontekście treningu zwłokowego może być szybsze włączenie gruczołu przyusznego do przeszczepu, aby uniknąć potencjalnego uszkodzenia nerwu twarzowego i czasochłonnej sekcji.
  5. Wyizoluj nerw twarzowy pętlą naczyniową i rozciń go, aby uzyskać maksymalną długość, używając nożyczek do zeza.
  6. Powtórz tę samą sekcję po stronie przeciwległej.

figure-protocol-3
Rysunek 3: Rozwarstwienie nerwu twarzowego. (1) nerw twarzowy, (2) tętnicę szyjną zewnętrzną, (3) tętnicę skroniową powierzchowną. Proszę kliknąć tutaj, aby zobaczyć większą wersję tej figurki.

4. Podejście koronalne do sekcji skóry głowy i leczenia okołooczodołowego

  1. Wykonaj nacięcie koronalne za pomocą ostrza skalpela nr 10 lub 15 i unieś płat skóry głowy w płaszczyźnie podokołokostowej od tyłu do przodu, aż napotkasz nerw nadoczodołowy za pomocą mikroskopijnej elektrokauterycznej kolektoru ustawionego na około 30 °C w trybie krzepnięcia.
    UWAGA: Mięsień skroniowy jest wyłączony z przeszczepu alloralnego.
  2. Podwiązać i dzielić zawartość neuronaczyniową nadoczodołu i nadprzełomową jak najbliżej otworu kostnego, używając wchłaniającego szwu monofilamentowego i nożyczek przeciw zezu.
  3. Zlokalizuj mięsień Levator Palpebrae Superioris (LPS) z kulą i umieść szew znakujący (Ethilon).
    UWAGA: Na tym etapie hydrodysekcia może być stosowana w celu ułatwienia sekcji i zmniejszenia urazu sąsiednich struktur.
  4. Przejdź do rozwarstwienia okołooczodołu za pomocą nożyczek na zez w płaszczyźnie podokołooszołowy, aby zachować orbicularis occuli w przeszczepie, dzieląc górną powiekę poziomo.
  5. Wykonaj nacięcia obwodowe przespojówkowe za pomocą ostrza skalpela nr 10 lub 15, aby maksymalnie zachować płytki stopa górna i dolna, przegrodę oczodołu, lewator palpebrae superioris oraz mięsień Müllera.
  6. Wyizoluj boczny kantus i unieś go o mały segment bocznej krawędzi oczodołu za pomocą osteotomu, zapewniając odpowiednie wsparcie kantalu w przeszczepie.
  7. Wyciąć dolną powiekę, zachowując spojówkę. Przecień przez dolny wycisek za pomocą nożyczek do zeza, tuż wewnątrz krawędzi oczodołu, co pozwala zachować przegrodę oczodołu, tłuszcz oraz retraktory dolnej powieki.
  8. Identyfikacja i przecięcie nerwu podoczodołu w pobliżu otworów za pomocą mikroskopijnej elektrokautery, ustawionej na około 30 °C w trybie krzepnięcia, zapewniając maksymalną długość nerwu dla przyszłej neuroterapii.

figure-protocol-4
Rysunek 4: Rozwarstwienie koronowe. (1) Nerw nadoczodołowy, (2) Nerw nadprzełomowy. Proszę kliknąć tutaj, aby zobaczyć większą wersję tej figurki.

5. Uniesienie płata twarzowego i wyciągnięcie w kierunku środkowej części twarzy

  1. Przeciąć nerw twarzowy nożyczkami do zeza na jego wyjściu z otworu włosowo-sutkowatego, goląc mięsień żwaczowy, aby odsłonić powierzchnię żuchwy
  2. Podnieś płat z przodu na górę żwacza i zidentyfikuj poduszkę tłuszczową policzkową na jej przedniej krawędzi, używając monolonalnej elektrokautery z cienką końcówką ustawioną na około 30 °C w trybie krzepnięcia. Kontynuuj przednią dyssekcię wzdłuż poduszki tłuszczowej poduszki policzkowej (pozostawionej na miejscu), aż do osiągnięcia i pełnego pobrania błony śluzowej policzka.
  3. Rozszerzymy rozwarstwienie na oczodoł i jarzm.

6. Osteotomie śródbłonowej

  1. Wykonaj podokołodowłosie boczne od nosa za pomocą nożyczek przeciwzezowych, zachowując przyczepy ścięgien przyśrodkowych i kantalnych.
  2. Wykonaj boczną osteotomię nosa od niskiego do niskiego za pomocą piły tłokowej i zakrzywionego osteotomu, sięgając do podniebienia twardego.
    UWAGA: Orientacja instrumentów kontroluj, aby uniknąć uszkodzenia nerwu podoczodołowego.
  3. Przedłuż osteotomię bocznie, aby objąć przypor jarzmotowy, a następnie podążaj za szwami zygomatoczo-czołowymi i klinowo-krzyżowymi szczęki i zygoma.
  4. Podziel przegrodę nosową podłużnie nożyczkami przeciw zezu. Pobierz nos wraz ze skórą, chrząstką (alar, trójkątną i większość przegrody), kośćmi nosowymi i błoną śluzową.
    UWAGA: Dla zaawansowanych szkoleń lub zastosowań badawczych pobieranie może być rozszerzone o elementy kostne, takie jak szczęka czy zygoma, z wykorzystaniem specyficznych dla dawcy prowadnic cięcia. W takich przypadkach tętnica twarzowa pozostaje główną szypułką naczyniową, z możliwym wkładem podoczodołowej i poprzecznej w zależności od zakresu zamieszania kości.

figure-protocol-5
Rysunek 5: Rozwarstwienie środkowej części twarzy. (1) Nerw podoczodołowy. Do celów demonstracyjnych nerw podoczodołowy został zachowany i nie był dzielony przed pobraniem nosa. Proszę kliknąć tutaj, aby zobaczyć większą wersję tej figurki.

7. Rozwarstwienie wewnątrzustne i uwolnienie płata

  1. Wykonaj nacięcie wewnątrzustne obwodowe, używając ostrza skalpela nr 10 lub 15, wzdłuż połączenia błonczakowego i śluzowego.
  2. Przejdź od nacięcia zarówno górnej (szczęki), jak i dolnej (żuchwy) błony śluzowej skalpelem, dokładnie podążając za arkadami dentystycznymi.
  3. Naciń błonę śluzową dziąseł wzdłuż linii żuchwy.
  4. Zidentyfikuj i podziel nerw umysłowy blisko jego otworu umysłowego, zachowując jak największą długość dla potencjalnej neurorhafii, używając nożyczek przeciw zezu.
  5. Przetnij błonę śluzową w okolicy dziąsła, na części zębowej szczęki i żuchwy.
  6. Podziel nerw umysłowy blisko otworów za pomocą nożyczek do zeza.
  7. Mobilizacja płaszczyzn tkanek miękkich szyjki przyśrodkowej i kierowanie ich w kierunku jamy ustnej za pomocą monopunktarnej elektrokautery cienkiej końcówki ustawionej na około 30 °C w trybie krzepnięcia, rozcinanie w płaszczyźnie powyżej mięśnia mostkowego i górnego mięśnia omohyoidalnego, z udziałem lub bez włączenia żyły szyjnej przedniej.
  8. Uniesienie przeszczepu en bloc, uwalniając przeszczep od wszystkich przyczepów tkanek miękkich za pomocą monopolarnej elektrokautery oprócz obustronnych szypek naczyniowych.
  9. Podwiązuj żyły tętnicze szyjne wewnętrzne i zewnętrzne oraz tętnice szyjne za pomocą wchłaniającego monofilamentu jak najbardziej dystalnie.
  10. Odłącz twarz całkowicie.

figure-protocol-6
Rysunek 6: Ostatni aspekt zebranego szczepu. Nerw twarzowy jest oznaczony niebieskim szwem po obu stronach przeszczepu. (A) Widok wewnętrzny, strona tkanek miękkich. Biała strzałka: przegroda oczodołu. strzałka: błona śluzowa dziąseł górna. Zielona strzałka: błona śluzowa dziąseł dolna. (B) Widok zewnętrzny, powierzchnia naskórka. Proszę kliknąć tutaj, aby zobaczyć większą wersję tej figurki.

8. Opakowanie przeszczepu

  1. Kanyluj zewnętrzne tętnice szyjne za pomocą kaniuli naczyniowych zabezpieczonych jedwabnymi wiązaniami.
    UWAGA: Potwierdź hemostazę przed perfuzją i ostrożnie obchodz się z kaniulami, aby zapobiec pęknięciu ściany naczynia.
  2. Podłącz zestaw do irygacji cysto do kurka i przepłukaj roztworem do konserwacji przeszczepów do instytucji, aż zauważymy czyste wypływanie żylne.
    UWAGA: Do perfuzji i przechowywania przeszczepów można stosować rozwiązania konserwujące, takie jak University of Wisconsin (UW) w temperaturze 4 °C lub histydyna-tryptofan-ketoglutaran (HTK) uzupełniony 5 000 jednostkami niefrakcjonowanej heparyny.
  3. Odłącz zestaw do irygacji cysto i zamknij zawor.
  4. Owiń przeszczep sterylnymi ręcznikami nawilżonymi solą fizjologiczną, umieść w szczelnym woreczku sterylnym i oznacz. Umieść w drugim sterylnym pustym woreczku, a następnie w trzecim sterylnym woreczku zawierającym wodę lodowaną, zgodnie ze standardowymi strategiami konserwacji przeszczepów narządów stałych. Zgodnie z przeszczepem narządów stałych, zalecany docelowy czas zimnego niedokrwienia dla przeszczepów VCA jest idealnie utrzymywany poniżej 4-6 godzin, aby zoptymalizować żywotność tkanek.
    UWAGA: Po zakupie podejmowane są działania rekonstrukcyjne, aby zapewnić szacunek prezentujący się darczyńcę. Zazwyczaj obejmują one ponowne przybliżenie krawędzi skóry, założenie akrylowej maski lub protezy twarzy oraz przywrócenie ogólnego konturu twarzy w celu zachowania godności podczas dalszego zarządzania dawcą. Przywrócenie integralności twarzy darczyńcy jest zarówno obowiązkiem etycznym, jak i prawnym. Maskę z żywicy lub wydrukowaną w 3D można wykonać z formy alginanowej w ciągu około 30 minut, aby odtworzyć rysy twarzy dawcy. Zabieg ten zapewnia godną prezentację podczas ceremonii pogrzebowych i powinien być systematycznie wykonywany jako część każdego pobrania przeszczepu twarzy.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Wyniki

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Rozłożona twarz dawcy w tym badaniu to mężczyzna o wzroście 1,72 m o niedożywionej morfologii ciała. Podczas sekcji przeszczepu wymiary naczyń i nerwów były mierzone obustronnie przy standardowych poziomach przecięcia za pomocą zacisku, a następnie obliczono średnie wartości.

Średnie średnice naczyń i nerwów dawcy porównano ze średnimi podanymi w literaturze zwłokowej i chirurgicznej. Pobrana tętnica twarzowa miała 1,5 mm na brzegu żuchwy, co jest zbliżone do średnich trupowych dla średnicy na...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Dyskusja

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Allotransplantacja twarzy stała się kamieniem milowym w chirurgii rekonstrukcyjnej, oferując unikalne rozwiązanie dla pacjentów z wadami twarzy, które inaczej nie dały się uratować.4. Pobrany przeszczep bipedikularny obejmował skórę, powieki i nos, a także nerwy twarzowe, nadoczodołowe, podoczodowe i psychiczne. Obie tętnice tętnice szyjne zewnętrzne powinny być izolowane u ich początku. Jeśli chodzi o struktury nerwowe, główne gałęzie nerwu trójdzielnego (nadoczodołowe, podoczodowe i men...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Autorzy nie mają żadnych ujawnień.

Podziękowania

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Autorzy pragną wyrazić szczere podziękowania osobom, które hojnie oddały swoje ciała nauce, umożliwiając tym samym badania anatomiczne.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
11,5" Medium Premium Surgiclip II Auto Suture do klipsa do oczyńCovidien
2-0 szw jedwabny 
Kleszcze AdsonMPM106-2112A
Wiertar bioimpedancjiStryker5400-50Wiertarka o dużej prędkości z bioimpedancją sprzężenia zwrotnego do sekcji kanału wzrokowego i podstawy czaszki
Kleszcze do krzepnięcia dwubiegunowegoOlsen20-1320I
Custodiol HTK Solution do perfuzji kończynEssential Pharmaceuticals Inc.Zastosowanie poza wskazaniami
Zestaw do irygacji cysto/pęcherza Baxter Healthcare Corp.
Jednorazowy Skalpel #15Sklar
Tępa końcówka DLP 3 mm naczyniaMedtronic Inc
Rozszerzacze kleszczeWPI15910
Zaworek zaworowy dożylny
MikronożyczkiWPI504492
Diatermia monopolarnaValleylab
Piła oscylantnaStryker5400-31Standardowa piła oscylantna do osteotomii czaszkowo-twarzowych (również Synthes/DePuy)
Roztwór soli fizjologicznej 0,9%GenDepotS0600-101
Nożyczki zezaSurtex102-4109
Chirurgiczne pióro markująceZdrowie kardynalne212PR
Szwy Ethilon 4.0Ethicon1667G
Szwy Ethilon 4.0 i 9.0Ethicon1667G
Strzykawka 10 mlAgilent9301-6474
Trzy sterylne plastikowe torby i trzy sterylne opaski zaciskowe
Kleszcze tkankoweMPM106-0511
Rozwiązanie Uniwersytetu Wisconsin (UW) w zakresie ochrony organówMost do życiaZastosowanie poza wskazaniami
Pętla statkuDeroyal30-711

Bibliografia

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Kantar, R. S., et al. Incidence of preventable nonfatal craniofacial injuries and implications for facial transplantation. J Craniofac Surg. 30 (7), 2023-2025 (2019).
  2. Lico, M., et al. Swallowing function after pioneering partial face and whole eye transplant: Clinical insights. Am J Speech Lang Pathol. 34 (4), 1921-1930 (2025).
  3. Knobloch, K., Rennekampff, H. O., Vogt, P. M. Face transplant procurement: A preclinical and clinical study. Plast Reconstr Surg. 124 (1), 314-315 (2009).
  4. Homsy, P., et al. An update on the survival of the first 50 face transplants worldwide. JAMA Surg. 159 (12), 1339-1345 (2024).
  5. Devauchelle, B., et al. First human face allograft: Early report. Lancet. 368 (9531), 203-209 (2006).
  6. Kantar, R. S., et al. Facial transplantation: Principles and evolving concepts. Plast Reconstr Surg. 147 (6), 1022e-1038e (2021).
  7. Lupon, E., et al. Vascularized composite allografts in france: An update. Ann Chir Plast Esthet. 70, 140-147 (2025).
  8. Ceradini, D. J., et al. Combined whole eye and face transplant: Microsurgical strategy and 1-year clinical course. Jama. 332 (18), 1551-1558 (2024).
  9. Diep, G. K., Ramly, E. P., Alfonso, A. R., Berman, Z. P., Rodriguez, E. D. Enhancing face transplant outcomes: Fundamental principles of facial allograft revision. Plast Reconstr Surg Glob Open. 8 (8), e2949(2020).
  10. Uluer, M. C., et al. Vascularized composite allotransplantation: Medical complications. Curr Transplant Rep. 3 (4), 395-403 (2016).
  11. Diaz-Siso, J. R., Sosin, M., Plana, N. M., Rodriguez, E. D. Face transplantation: Complications, implications, and an update for the oncologic surgeon. J Surg Oncol. 113 (8), 971-975 (2016).
  12. Meningaud, J. P., Paraskevas, A., Ingallina, F., Bouhana, E., Lantieri, L. Face transplant graft procurement: A preclinical and clinical study. Plast Reconstr Surg. 122 (5), 1383-1389 (2008).
  13. Barret, J. P., et al. Full face transplant: The first case report. Ann Surg. 254 (2), 252-256 (2011).
  14. Meningaud, J. P., et al. Procurement of total human face graft for allotransplantation: A preclinical study and the first clinical case. Plast Reconstr Surg. 126 (4), 1181-1190 (2010).
  15. Diep, G. K., et al. The 2020 facial transplantation update: A 15-year compendium. Plast Reconstr Surg Glob Open. 9 (5), e3586(2021).
  16. Von Arx, T., Tamura, K., Yukiya, O., Lozanoff, S. The face - a vascular perspective. A literature review. Swiss Dent J. 128 (5), 382-392 (2018).
  17. Pomahac, B., et al. Vascular considerations in composite midfacial allotransplantation. Plast Reconstr Surg. 125 (2), 517-522 (2010).
  18. Onishi, S., et al. Venous drainage of the face. J Plast Reconstr Aesthet Surg. 70 (4), 433-440 (2017).
  19. Swanson, J. W., et al. The retroauricular approach to the facial nerve trunk. J Craniofac Surg. 28 (2), 347-351 (2017).
  20. Von Arx, T., Abdelkarim, A. Z., Lozanoff, S. The face - a neurosensory perspective. Swiss Dent J. 127 (12), 1066-1075 (2017).
  21. Frautschi, R., et al. Management of the salivary glands and facial nerve in face transplantation. Plast Reconstr Surg. 137 (6), 1887-1897 (2016).
  22. Lee, S. H., Ha, T. J., Koh, K. S., Song, W. C. External and internal diameters of the facial artery relevant to intravascular filler injection. Plast Reconstr Surg. 143 (4), 1031-1037 (2019).
  23. Koziej, M., et al. The superficial temporal artery: A meta-analysis of its prevalence and morphology. Clin Anat. 33 (8), 1130-1137 (2020).
  24. Wang, D., Xiong, S., Zeng, N., Wu, Y. The facial vein on computed tomographic angiography: Implications for plastic surgery and filler injection. Aesthet Surg J. 42 (5), Np319-np326 (2022).
  25. Freitas, C. aF., Santos, L., Santos, A. N., Amaral Neto, A. B. D., Brandão, L. G. Anatomical study of jugular foramen in the neck. Braz J Otorhinolaryngol. 86 (1), 44-48 (2020).
  26. Rusu, M. C., Tudose, R. C., Vrapciu, A. D., Toader, C., Popescu, ŞA. Anatomical variations of the external jugular vein: A pictorial and critical review. Medicina (Kaunas). 59 (3), (2023).
  27. Salame, K., Ouaknine, G. E., Arensburg, B., Rochkind, S. Microsurgical anatomy of the facial nerve trunk. Clin Anat. 15 (2), 93-99 (2002).
  28. Tong, J. Y., et al. Normative data for dimensions of the frontal and infraorbital nerves. Eye (Lond). 39 (7), 1390-1393 (2025).
  29. Pomahac, B., Pribaz, J. Facial composite tissue allograft. J Craniofac Surg. 23 (1), 265-267 (2012).
  30. Siemionow, M., et al. Coronal-posterior approach for face/scalp flap harvesting in preparation for face transplantation. J Reconstr Microsurg. 22 (6), 399-405 (2006).
  31. Smeets, R., et al. Face transplantation: On the verge of becoming clinical routine. Biomed Res Int. 2014, 907272(2014).
  32. Siemionow, M., Gharb, B. B., Rampazzo, A. Pathways of sensory recovery after face transplantation. Plast Reconstr Surg. 127 (5), 1875-1889 (2011).
  33. Sosin, M., et al. Total face, eyelids, ears, scalp, and skeletal subunit transplant: A reconstructive solution for the full face and total scalp burn. Plast Reconstr Surg. 138 (1), 205-219 (2016).
  34. Perraudin, T., et al. Vascularized composite upper limb allograft harvesting for proximal arm allotransplantation. J Vis Exp. (220), e68170(2025).
  35. Perraudin, T., et al. Vascularized composite hand allograft procurement and preparation for distal and proximal forearm allotransplantation: A stepwise approach. J Vis Exp. (219), e67767(2025).
  36. Barbat, P., et al. Procurement for a vascularized and reinnervated abdominal wall allotransplantation. J Vis Exp. (221), e68418(2025).
  37. Pomahac, B., Bueno, E. M., Sisk, G. C., Pribaz, J. J. Current principles of facial allotransplantation: The brigham and women's hospital experience. Plast Reconstr Surg. 131 (5), 1069-1076 (2013).
  38. Gurunian, R., Rampazzo, A., Papay, F., Gharb, B. b Reconstructive transplantation. , Springer. Nature, Switzerland. (2023).
  39. Pomahac, B., Gobble, R. M., Schneeberger, S. Facial and hand allotransplantation. Cold Spring Harb Perspect Med. 4 (3), a015651(2014).
  40. Lupon, E., et al. A new method for preparation of decellularized human scaffolds for facial reconstruction. Curr Issues Mol Biol. 47 (4), 275(2025).
  41. Julienne, A., et al. flap harvest training on a new ultrarealistic simulation model: In-training operator feedback about a pulsating reperfused and reventilated cadaver simlife®. Ann Chir Plast Esthet. 66 (2), 126-133 (2021).
  42. Rodríguez-Lorenzo, A., et al. Vascular perfusion of the facial skin: Implications in allotransplantation of facial aesthetic subunits. Plast Reconstr Surg. 138 (5), 1073-1079 (2016).
  43. Quilichini, J., et al. Restoration of the donor after face graft procurement for allotransplantation: Report on the technique and outcomes of seven cases. Plast Reconstr Surg. 129 (5), 1105-1111 (2012).
  44. Baker, C. E., et al. Pretreatments of ex vivo vascularized composite allografts: A scoping review. Ann Plast Surg. , (2025).
  45. Njessi, P., et al. Preservation strategies for vascularized composite allotransplantation: An updated systematic review of a rapidly expanding field. bioRxiv. , (2025).
  46. Lupon, E., et al. An experimental human diep flap model to investigate preservation strategies for vascularized composite allografts and free flaps. J Vis Exp. (226), e69392(2025).
  47. Lupon, E., et al. Engineering vascularized composite allografts using natural scaffolds: A systematic review. Tissue Eng Part B Rev. , (2021).

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Przedruki i uprawnienia

Poproś o pozwolenie na ponowne wykorzystanie tekstu lub ilustracji tego artykułu JoVE

Poproś o pozwolenie

Tagi

Pozyskiwanie allograftu twarzyallograft tkanek mi kkichpreparowanie nerwu twarzowegoods anianie szypu y naczyniowejpunkty orientacyjne anatomiiminimalizacja niedokrwieniapreparowanie podokostnoweochrona nerwuszkolenie chirurgiczne

Powiązane artykuły