Subskrypcja JoVE jest wymagana do oglądania tego materiału. Zaloguj się lub rozpocznij bezpłatny okres próbny.

Artykuł przeglądowy

Receptor purinergiczny P2X7 moduluje sygnalizację neuroimmunologiczną i neuronalną w patogenezie bólu neuropatycznego

263 wyświetleń

⸱

DOI:

10.3791/69940

⸱

24 marca 2026

 ,  ,  ,  , 

* These authors contributed equally

W tym artykule

Podsumowanie

W tym artykule opisano rolę receptora P2X7 w udziale astrocytów, neuronów i mikrogleju w bólu neuropatycznym (NPP). Celowanie w receptor P2X7 może być molekularnym celem terapii NPP.

Streszczenie

Pierwotne i wtórne urazy układu nerwowego mogą wywoływać ból neuropatyczny (NPP), który poważnie wpływa na zdrowie fizyczne i psychiczne pacjentów oraz stanowi poważne obciążenie ekonomiczne dla osób, rodzin i społeczeństwa. Obecnie skuteczne metody leczenia leczniczego pozostają nieosiągalne. W związku z tym badanie molekularnych podstaw mechanizmów patologicznych NPP jest kluczowe dla opracowania terapii celowanych. Kanał jonowy P2X7 purinergiczny receptor (P2X7R) jest szeroko eksprimowany w układzie nerwowym i odgrywa kluczową rolę w utrzymaniu jego stabilności funkcjonalnej. Coraz więcej dowodów wskazuje, że P2X7R jest cząsteczką związaną z bólem, zaangażowaną w inicjację i postęp NPP. Aktywacja lub zwiększenie ekspresji P2X7R przyczynia się do NPP poprzez pośredniczenie aktywności komórek odpornościowych, komórek glejowych i neuronów, regulując interakcje międzykomórkowe między nimi, wzmacniając transmisję sygnałów sensorycznych i plastyczność synaptyczną, a ostatecznie prowadząc do centralnej sensytyzacji. Warto zauważyć, że ukierunkowane hamowanie aktywacji P2X7R przy użyciu konkretnych antagonistów (np. A438079, A740003 i BBG) wykazuje właściwości farmakologiczne przeciwbólowe. Ponadto obniżenie ekspresji P2X7R w tkankach/komórkach za pomocą alternatywnych metod (takich jak leki farmakologiczne, terapia komórkowa i fizjoterapia) również wykazuje potencjał terapeutyczny przeciwko NPP. Niniejszy przegląd kompleksowo omawia mechanizmy, dzięki którym P2X7R reguluje zarówno komórki neuronalne, jak i nieneuronalne w NPP. Biorąc pod uwagę jego cechy, ukierunkowanie na ekspresję P2X7R lub antagonizowanie jego aktywności stanowi obiecującą, nowatorską strategię farmakologiczną leczenia NPP.

Wprowadzenie

Ból neuropatyczny (NPP), przewlekłe schorzenie wynikające z zmian lub chorób układu somatosensorycznego, poważnie obniża jakość życia pacjentów. Objawia się to jako samoistny ból (np. pieczenie, mrowienie), hiperalgezja i allodynia, w których nieszkodliwe bodźce, takie jak lekki dotyk, wywołują ból. Ponadto warto zauważyć, że nawet po wyeliminowaniu stymulacji nocyceptywnej ból może nadal istnieć, co może być związane z nienaprawionym uszkodzeniem nerwu. Ból wywołany uszkodzeniem nerwu może rozprzestrzeniać się na sąsiednie obszary, a jego potencjalna patofizjologia obejmuje uczulenie obwodowe i centralne, które obejmuje wiele czynników, w tym zmiany w kanałach jonowych, aktywacja komórek odpornościowych, mediatory pochodzące z gleju i regulacja epigenetyczna 1,2. Chociaż stosuje się różne metody kliniczne łagodzenia bólu, w tym leki, fizjoterapię i interwencje chirurgiczne, aby osiągnąć maksymalny efekt przeciwbólowy, efekt terapeutyczny nadal nie jest zbyt satysfakcjonujący. Dlatego konieczne jest zbadanie molekularnych podstaw patologicznych mechanizmów bólu neuropatycznego i odwrócenie tych zmian, w tym aktywacji komórek odpornościowych i infiltracji, Aktywacja komórek glejowych, zmniejszenie neurozapalenia, ochrona neuronów oraz poprawa neuroplastyczności. Ukierunkowane leczenie elektrowni jądrowej.

Zmiany w lokalnym mikrośrodowisku wokół urazu nerwowego, zwłaszcza aktywacja komórek zapalnych i komórek glejowych, mogą regulować aktywność komórek i przyczyniać się do postępu choroby poprzez uwalnianie adenozynotrifosforanu (ATP) do macierzy zewnątrzkomórkowej 3,4. Ekstrakomórkowy szlak sygnalizacji purinergicznej pośredniczony ATP odgrywa kluczową rolę w NPP po uszkodzeniu nerwu centralnego lub obwodowego. Badania wykazały, że kanały anionowe regulowane objętościowo (VRAC), które uwalniają ATP z mikrogleju, są kluczowym czynnikiem NPP, zmniejszając wzrost ATP zewnątrzkomórkowy w rdzeniu kręgowym spowodowany uszkodzeniem nerwów obwodowych i łagodząc NPP5. Receptor P2X7 (P2X7R) jest szeroko eksprimowany w centralnym i obwodowym układzie nerwowym i odgrywa fundamentalną rolę w utrzymaniu funkcji i stabilności układu nerwowego6. P2X7R może pełnić rolę ważnego mediatora bólu, uczestnicząc w postępie NPP 6,7 i regulując jego postęp. P2X7R jest wyrażany w komórkach odpornościowych, komórkach glejowych oraz neuronach. Poprzez regulację aktywności i interakcji komórek, komórki te uczestniczą w neurozapaleniu, immunomodulacji i uwalnianiu cytokin, które pośredniczą w występowaniu i rozwoju NPP 8,9,10,11. Ekspresja P2X7R w limfocytach krwi obwodowej i monocytach oraz poziom surowicy IL-1β były istotnie zwiększone u pacjentów z przewlekłym nocyceptywem i NPP12.

W przeciwieństwie do innych klasycznych celów terapeutycznych i strategii NPP, celowanie P2X7R wykazuje unikalne zalety w zakresie skuteczności i specyficzności mechanizmu. Na przykład konwencjonalne farmakoterapie pierwszego wyboru dla NPP, takie jak niektóre środki przeciwbólowe i leki przeciwzapalne, często łagodzą objawy tylko tymczasowo, nie zajmując się kluczowymi procesami patologicznymi, takimi jak neurozapalenie i aktywacja gleja. Strategie modulacji komórek glejowych, które koncentrują się na hamowaniu aktywacji mikrogleju rdzenia4, celują tylko w jeden typ komórek w złożonej sieci patologicznej NPP, podczas gdy antagoniści P2X7R lub ukierunkowane obniżenie mogą jednocześnie regulować aktywność komórek glejowych, komórek odpornościowych i neuronów, kluczowych populacji komórek zaangażowanych w progresję NPP 6,7,12. W przeciwieństwie do strategii ukierunkowanych na ogólne szlaki neurozapalne3, celowanie P2X7R specyficznie blokuje kaskadę sygnalizacji purinergicznej, ściśle powiązaną z inicjacją i utrzymaniem NPP, unikając niespecyficznej immunosupresji i potencjalnych skutków ubocznych. Dodatkowo, podejścia ukierunkowane na inne kanały jonowe lub szlaki sygnałoweneuronów 10 często nie odwracają utrzymującego się neurozapalenia pośredniczonego przez przesłuch glejowo-neuronalny4, podczas gdy P2X7R bezpośrednio hamuje ten przesłuch, regulując transmisję sygnału ATP 5,6, osiągając bardziej kompleksowe efekty terapeutyczne.

Niniejszy przegląd ma na celu dostarczenie kompleksowej i krytycznej syntezy aktualnej wiedzy na temat mechanizmów specyficznych dla typu komórek, dzięki którym P2X7R moduluje komórki neuronalne i nieneuronalne w NPP. Warto jednak zauważyć, że hamowanie P2X7R przez antagonistę lub celowane obniżenie ekspresji P2X7R ma efekty farmakologiczne w łagodzeniu i leczeniu NPP13. Na przykład Lu AF27139 jest wysoce selektywnym i silnym antagonistą małocząsteczkowym P2X7R u szczurów, myszy i ludzi, z dobrą farmakokinetyką i przepuszczalnością ośrodkowego układu nerwowego14. Lu AF27139 może funkcjonalnie blokować poziomy P2X7R w mózgu i rdzeniu kręgowym oraz ich dalsze szlaki bólowe oraz zmniejszać nadwrażliwość neuropatologiczną u szczurów z przewlekłym urazem uciskowatym14. Trimetoksyflawanon łagodzi ból neuropatyczny poprzez hamowanie funkcji P2X7R, produkcji CGRP, uczulenia neuronów DRG oraz nieprawidłowej aktywacji komórek glejowych w rdzeniukręgowym15. Badania te ujawniają kluczową rolę P2X7R w elektrowni jądrowej. Dlatego zrozumienie mechanizmu i właściwości farmakologicznych P2X7R w NPP ma ogromne znaczenie dla ukierunkowanego leczenia NPP.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Przegląd i perspektywa

1. NPP

NPP jest spowodowane pierwotnym lub wtórnym bezpośrednim lub pośrednim uszkodzeniem centralnego lub obwodowego układu nerwowego, prowadzącym do dysfunkcji lub przejściowych zaburzeń układu nerwowego i transmisji informacji sensorycznej, głównie objawiających się spontanicznym bólem, hiperalgezją lub nieprawidłowym bólem1. NPP powstaje w obwodowych częściach układu nerwowego, takich jak neuralgia trójdzielna, neuralgia popowodkowa, uszkodzenie nerwów obwodowych, bolesna polineuropatia lub radikulopatia. Informacje peryferyjne mogą być przekazywane do centrum (kluczowy czynnik w postrzeganiu przewlekłego bólu). Zwiększona wrażliwość ośrodkowego układu nerwowego na ból wiąże się ze zmianami w funkcjonalnym wzorcu łączności sieci neuronowej. Centralne przewlekłe NPP może być spowodowane uszkodzeniem rdzenia kręgowego lub mózgu, udarem lub stwardnieniem rozsianym 16,17,18,19,20. Po uszkodzeniu tkanki obwodowej nocyceptory obwodowe są uwrażliwione, co zwiększa wpływy włókien bólowych. Uszkodzenie nerwów może prowadzić do zmniejszenia liczby włókien nerwowych i demielinizacji aksonów w uszkodzonym obszarze. Zwiększone było otwarcie kanału jonowego w neuronach czuciowych w obszarze urazu (zwiększone napływ wapnia), a plastyczność synaptyczna między włóknami aferentnymi C a neuronami rogów grzbietowych została zwiększona, tym samym zwiększa dane wejściowe19. Chociaż konkretny mechanizm patologiczny bólu neuropatycznego pozostaje nadal niejasny, rozpoznano, że proces bólu neuropatycznego obejmuje immunomodulację, nieprawidłową pobudzenie i plastyczność neuronów, aktywację komórek glejowych, reakcje neurozapalne oraz zmiany w receptorach kanałów jonowych (takich jak P2X7R)10,20,21. Te aktywacje i interakcje komórek, w tym transmisja informacji i uwalnianie cytokin, odgrywają kluczową rolę w powstawaniu i rozwoju NPP. Dlatego przeprowadzimy kompleksową, dogłębną dyskusję na temat związku między P2X7R a tymi komórkami.

2. Regulacja aktywności mikrogleju przez P2X7R

Mikroglej to komórki odpornościowe osiadłe w układzie nerwowym, szeroko rozproszone w ośrodkowym układzie nerwowym, które odgrywają kluczową rolę w stabilizacji funkcji układu nerwowego oraz utrzymaniu stabilności mikrośrodowiska. W normalnych warunkach fizjologicznych mikroglej znajduje się w stanie spoczynku, nie ma odporności i fagocytozy, ale zachowuje pewną zdolność migracyjną. Jednak po uszkodzeniu ośrodkowego układu nerwowego, takim jak niedokrwienie, stan zapalny lub uraz, mikroglej może zostać aktywowany, rozprzestrzeniać się i migrować do uszkodzonego obszaru, usuwając metabolity komórkowe i fragmenty komórek apoptotycznych. Jest bardzo ważny dla naprawy i utrzymania ośrodkowego układu nerwowego po urazie. Terminowe usuwanie mikrogleju umożliwia skuteczną remielinizację, stanowiąc niezbędną podstawę do regeneracji nerwów 22,23,24. Polaryzacja i proliferacja mikrogleju przyczyniają się do bólu neuropatycznego. Niepowodzenie regeneracji mieliny w ośrodkowym układzie nerwowym prowadzi do chorób neurozapalnych i neurodegeneracyjnych, które mogą indukować NPP25. Badania wykazały, że skuteczna remielinizacja wymaga obumierania mikrogleju prozapalnego i rozmnażania się w celu wspomagania regeneracji. Śmierć i/lub regeneracja uszkodzonego mikrogleju może być podstawą dysaktywacji mikrogleju w chorobach układu nerwowego26. Dominujące stanowisko w dziedzinie bólu jest takie, że NPP jest napędzane przez mikroglej w obszarze przetwarzania somatosensorycznego rogu grzbietowego kręgosłupa. Odpowiedź mikrogleju rdzeniowego na stymulację zewnątrzkomórkową zmienia ich aktywację i polaryzację oraz indukuje uwalnianie cytokin zapalnych poprzez wewnątrzkomórkowe szlaki sygnalizacyjne, takie jak kinazy białkowe aktywowane mitogenem, p38, oraz kinazy białkowe regulowane sygnałem zewnątrzkomórkowym. wywołują reakcję neurozapalną i powodują ból. Jednak hamowanie lub zmiana aktywacji/proliferacji mikrogleju może zmniejszyć nieprawidłową pobudliwość i NPP w neuronach rogu grzbietowego 27,28,29. Mikroglej GI DREADD może zmniejszyć neurozapalenie, funkcję synaptyczną oraz NPP po przecięciu nerwu rdzeniowego30.

P2X7R jest szeroko eksprimowany w układzie nerwowym, zwłaszcza w mikrogleju. P2X7R reguluje aktywność mikrogleju poprzez wiązanie się z ich ligandami (ATP lub jego odpowiednikiem BzATP) i odgrywa kluczową rolę w NPP31,32. Poziom ekspresji P2X7R jest ściśle powiązany ze stopniem bólu. NPP jest indukowane przez zwiększoną aktywację lub ekspresję P2X7R w urazie nerwu.

Siedem dni po uszkodzeniu nerwu obwodowego ekspresja mRNA i białka P2X7R była istotnie zwiększona w rdzeniu kręgowym, który był głównie lokalizowany w mikrogleju rogu grzbietowego. Wstrzyknięcie wewnątrz antagonisty P2X7R (A438079) może skutecznie hamować aktywację mikrogleju i łagodzić nadwrażliwość mechaniczną33. Jest dobrze udokumentowane, że aktywacja P2X7R przyczynia się do bólu neuropatycznego (NPP) poprzez wywoływanie aktywacji mikrogleju, promowanie polaryzacji w kierunku fenotypu prozapalnego (M1), pośredniczenie w uwalnianiu prozapalnych cytokin, inicjowanie kaskady neurozapalnej, pogłębianie uszkodzeń tkanek nerwowych i ostatecznie wywoływanie lub nasilanie bólu34,35. Co istotne, samo nadekspresja P2X7R wystarcza, aby sprzyjać aktywacji i proliferacji mikrogleju. Konkretnie, aktywacja P2X7R w mikrogleju prowadzi do uwalniania prozapalnych cytokin, takich jak interleukina-1β (IL-1β), a ten proces jest ściśle powiązany z rozwojem i utrzymaniem NPP7. IL-1β pełni rolę kluczowego mediatora w aktywacji i proliferacji mikroglej, a jego uwalnianie lub produkcja zależy od funkcji makroporowej P2X7R34. Leczenie agonistą P2X7R BzATP może indukować mikroglej do uwalniania IL-1α, IL-1β i IL-18, podczas gdy uwalnianie innych cytokin/chemokin jest niezależne od aktywacji P2X7R. Wyniki te podkreślają specyficzną rolę P2X7R w regulowaniu uwalniania cytokin z rodziny IL-136. Łącznie wyniki te pokazują, że P2X7R jest kluczowym mediatorem neurozapalnych odpowiedzi neurozapalnych wywołanych przez mikroglej w NPP. W mikrogleju szczurów hodowanych pierwotnie cilnidipine może hamować odpowiedzi wapnia wywołane przez P2X7R oraz uwalnianie IL-1β; badania in vivo potwierdzają również, że cilnidipine może odwrócić mechaniczną allodynię wywołaną przez mikroglej P2X7R zapalny7.

Ponadto P2X7R może regulować interakcje między mikroglejem a neuronami, uczestnicząc tym samym w patogenezie NPP. W modelach NPP szlak sygnalizacyjny P2X7R-p38 jest ściśle związany z mikroglejowym wyrzucaniem mikropęcherzyków i odgrywa ważną rolę w progresji NPP poprzez pośredniczenie w interakcjach mikroglej-neuron37. Wykazano, że elektroakupunktura zmniejsza gęstość kolców dendrytycznych, hamuje nieprawidłowe przebudowywanie synaptyczne, łagodzi neurozapalenie oraz poprawia objawy bólu neuropatycznego; efekty te wiążą się ze zmniejszoną ekspresją P2X7R oraz poprawą funkcji neurobehawioralnych. Natomiast aktywacja P2X7R przez BzATP może wzmacniać nieprawidłową remodelację kręgosłupa dendrytycznego/synaptycznego oraz wspierać neurozapalenie, co nasila ból38.

Dlatego modulacja aktywności P2X7R w celu przesunięcia mikrogleju z fenotypu prozapalnego M1 na przeciwzapalny fenotyp M2 stanowi obiecującą strategię terapeutyczną dla NPP. Fenotyp M1 mikrogleju charakteryzuje się uwalnianiem cytokin prozapalnych (takich jak IL-1β i TNF-α) oraz promowaniem neurozapalenia, natomiast fenotyp M2 wiąże się z uwalnianiem czynników przeciwzapalnych i promowaniem naprawy tkanek. Hamowanie aktywności P2X7R może odwrócić ból neuropatyczny poprzez zmniejszenie ekspresji czynnika martwicy nowotworów-α (TNF-α), interleukiny-1α oraz IL-6 poprzez hamowanie fosforylacji p38MAPK w mikrogleju, któremu towarzyszy przejście mikrogleju z fenotypu M1 do M239.

Toksyna botulinowa A (BTX-A) łagodzi NPP poprzez hamowanie P2X7R i promowanie polaryzacji M2 szczęśliwego mikrogleju stymulowanego przez lipopolisacharyd40. Stymulacja rdzenia kręgowego o wysokiej częstotliwości znacząco zmniejsza odpowiedź immunologiczną rogu grzbietowego kręgosłupa i sprzyja długotrwałej ulgi w bólu poprzez inaktywację osi Kaiso-P2X7R w mikrogleju. Ukierunkowanie Kaiso-P2X7R w mikrogleju znacząco poprawiło skuteczność wysokoczęstotliwościowej stymulacji rdzenia kręgowego, zmniejszając tym samym neurozapalenie i zapewniając trwałą ulgę w bólu41. Elektroakupunktura może znacząco podnieść próg bólu wywołany urazem nerwu kulszowego lub agonistą P2X7R BzATP u myszy, hamować aktywację mikrogleju P2X7R rdzenia kręgowego, hamować nadekspresję IL-1β i IL-18 w rdzeniu kręgowym oraz zmniejszać nadwrażliwość dotykową i hiperalgezję termiczną42 (Rysunek 1). Inne badania wykazały również, że intratekalne wstrzyknięcie termicznie przetworzonego Aconitum jaluense może hamować produkcję i ekspresję P2X7R w rdzeniu kręgowym oraz zmniejszać aktywację mikrogleju, który ma działanie przeciwnadwrażliwe na NPP43. Ponadto aktywacja mikrogleju po uszkodzeniu nerwu obwodowego odgrywa ważną rolę w nieprawidłowym zbieżności sygnałów nocyceptywnych z neuronami rogu kręgosłupa kręgowego oraz w wystąpieniu NPP. Wzajemne przesłuchiwanie mikrogleju i neuronów ostatecznie bierze udział w ekspresji bólu nadsensorycznego nocyceptywnego. Galektyna-3, pochodząca z uszkodzonych neuronów czuciowych, wzmacnia pobudzającą transmisję synaptyczną neuronów pobudzających w rogu grzbietowym kręgosłupa poprzez aktywację mikrogleju, co prowadzi do powstania NPP44. Badania te wykazały, że aktywność mikrogleju pośredniczona P2X7R odgrywa kluczową rolę w NPP. Celowanie w aktywację mikrogleju poprzez hamowanie lub obniżanie ekspresji P2X7R to nowe podejście do leczenia NPP.

3. P2X7R pośredniczy w astrocytach

Astrocyty stanowią około 20%–40% całkowitej liczby komórek glejowych w ośrodkowym układzie nerwowym, co jest kluczem do utrzymania stabilności środowiska w ośrodkowym układzie nerwowym. Astrocyty uważa się za wsparcie strukturalne i odżywcze dla neuronów i można je odróżnić od innych typów komórek glejowych poprzez ekspresję białka kwaśnego glia włóknistego (GFAP). GFAP jest wyrażany we wszystkich głównych gałęziach i procesach astrocytów i zmienia się dynamicznie podczas przejścia od urazu do stanu reaktywnego 45,46,47. Coraz więcej dowodów wskazuje, że przewlekły ból może być spowodowany glejkiem astrocytowym. Ponadto astrocyty mogą regulować transmisję synaptyczną nocyceptywną poprzez interakcje neuron-glej i neuroglial-komórki glejowe, uczestnicząc w modulacji sygnałów bólowych i utrzymaniu NPP 45,48,49,50. Astrocyty mają intensywny kontakt z synapsami neuronalnymi. Aktywacja astrocytów może inicjować plastyczność kręgosłupa, zmniejszając synapsy powstałe krótko po podwiązaniu nerwu kulszowego i wywołując zachowania bólowe50. Badania wykazały, że CXCL13, produkowany przez neurony, aktywuje astrocyty za pomocą CXCR5, co sprzyja bólowi neuropatycznemu i ujawnia interakcję neuron/astrocytw rdzeniu kręgowym. Aktywacja reaktywnych astrocytów obejmuje różne mechanizmy i cząsteczki transdukcji sygnału, w tym wewnątrzkomórkowe kinazy, kanały, receptory oraz czynniki transkrypcyjne. Gdy zachodzą zmiany patologiczne, odgrywają one rolę w regulacji bólu po urazie52. Ekspresja akwaporyny AQP4 rdzenia kręgowego jest znacząco zwiększona po urazie rdzenia kręgowego, głównie w astrocytach, podczas gdy hamowanie AQP4 może osłabiać rozwój i utrzymanie NPP poprzez hamowanie aktywacji komórek glejowych oraz mechanizmu przeciwneurititis. Wykazują one, że aktywacja astrocytów jest zaangażowana w patogenezę NPP. Dlatego celowanie w astrocyty i hamowanie ich aktywacji pomaga złagodzić NPP.

P2X7R jest również eksprimowany w astrocytach i może uczestniczyć w NPP poprzez regulację aktywności astrocytów. Inne badania potwierdziły, że w modelu bólu neuropatycznego ekspresja P2X7R jest znacząco zwiększona w astrocytach, a aktywacja astrocytów jest ściśle powiązana z rozwojem i utrzymaniem bólu53,54. W takich modelach zaobserwowano w hipokampie podwyższony poziom mRNA i białek P2X7R oraz jego współlokalizację z markerem astrocytowym GFAP. Równocześnie poziomy składników związanych z inflammasomem (NLRP3, ASC, Kaspaza-1), białka tworzącego pory Gasdermin D oraz dojrzałych cytokin IL-1β i IL-18 są podwyższone, co sugeruje zaangażowanie szlaków inflammasomów55 (Rysunek 1). Od 11 do 21 dni po modelu bólu neuropatycznego przewlekłe leczenie antagonistą P2X7R A438079 podniosło próg mechanicznego skurczu stopy oraz zmniejszyło zachowania podobne do depresji i lęku56. A438079 może znacząco zmniejszyć odpowiedź immunologiczną IBA-1 i GFAP w mikrogleju i astrocytach po patologicznym bólu wywołanym uszkodzeniem nerwów oraz łagodzić zachowania bólowe u szczurów56. Pobudzające prądy postsynaptyczne indukowane przez pojedyncze włókna synaptyczne C zostały zarejestrowane w przekrojach rdzenia lędźwiowego rdzenia kręgowego szczurów. BzATP aktywuje mikroglej i astrocyty lub stymuluje pierwotne aferentne włókna C z wysoką częstotliwością, co skutkuje długotrwałą potencjacją aferentów włókien C9. Zwiększona odpowiedź aferentna wywołana przez BzATP może być blokowana odpowiednio przez antagonistę P2X7R A438079 oraz astrocytotoksynę fluoroacetatową,odpowiednio 9. Skoordynowana aktywacja mikrogleju i astrocytów może indukować LTP pośredniczone przez glej w tych synapsach poprzez uwalnianie D-seryny i czynnika martwicy nowotworów-α (TNF-α9. Ból neuropatyczny i depresja cukrzycowa wywołane przez wysoki poziom glukozy, substancję P (SP) oraz kortykosteron mogą zwiększać ekspresję P2X7R oraz poziomy fosforylacji czynnika martwicy nowotworów-α, IL-1β, wolnego wapnia i ERK1/2 w pierwotnych hodowlowanych astrocytach hipokampa. Jednak efekt ten może być hamowany przez terapię dihydromyrycytoną lub P2X7R shRNA57.

Astrocyty są aktywnymi uczestnikami sygnalizacji ATP i glutaminianu w mózgu. ATP i glutaminian koordynują aktywację astrocytów poprzez mobilizację jonów wapnia, które z kolei wywołują u astrocytatów uwolnienie kilku cząsteczek neuroaktywnych, w tym ATP i samego glutaminianu, aby sygnałować neurony oraz regulować transmisję synaptyczną i pobudliwość neuronów58,59. Galaretowata substancja (SG) rdzenia kręgowego odpowiada za przekazywanie informacji o bólu aferentnym do neuronów projekcji wznoszącej. Neurony i niektóre astrocyty reagują prądem wewnętrznym na NMDA, AMPA i mykofenol58,59. Astrocyty pobudzają neurony poprzez uwalnianie glutaminianu zależnego od wapnia na receptorach NMDA neuronów ekstrasynaptycznych, podczas gdy opóźniona transformacja astrocytów prowadzi do inhibicji neuronalnej58. Co istotne, agonista P2X7R BzATP zwiększa przepływy prądów wewnętrznych zarówno w neuronach, jak i astrocytach SG. Wzrost i aktywacja P2X7R w tych astrocytach sprzyja uwalnianiu glutaminianu, który następnie stymuluje prądy kationowe w sąsiednich neuronach za pośrednictwem receptorów NMDA i AMPA, ułatwiając transmisję bólu60. Ponadto neurony zwojowe korzenia grzbietowego mogą indukować silne uwalnianie ATP z komórek somatycznych. Uwolnione ATP aktywuje P2X7R w komórkach astroglialnych satelitarnych, które otaczają każdy zwoj korzenia grzbietowego, i inicjuje komunikację między neuronami a komórkami glejowymi61. Aktywacja P2X7R skutkuje uwolnieniem czynnika martwicy nowotworów-α z komórek satelitarnych przypominających astrocyty. Czynnik martwicy nowotworów-α z kolei wzmacniał odpowiedź pośredniczoną przez P2X3R i zwiększał pobudliwość neuronów DRG61. Badania te wykazały, że P2X7R może uczestniczyć w NPP poprzez regulację interakcji między astrocytami a neuronami.

4. P2X7R pośredniczy w aktywacji makrofagów

Interakcja między układem odpornościowym a nerwowym jest bardzo istotna w bólu neuropatycznym. Jako główny winowajca bólu neuropatycznego, ustalono odpowiedź immunologiczną w układzie nerwowym, która nie tylko wspiera inicjację i rozwój bólu, ale także jego rozwiązanie62. W rzeczywistości komórki odpornościowe są uznawane za promotory neurozapalenia, prowadzące do bólu i alergii na każdym poziomie szlaku neuralgii. Aktywacja i infiltracja komórek odpornościowych w postępie bólu przyczyniają się do postępu NPP 62,63,64. Równolegle do aktywacji mikrogleju w rogu grzbietowym po uszkodzeniu nerwu obwodowego następuje znaczne rozszerzanie i proliferacja makrofagów wokół uszkodzonych neuronów czuciowych w zwojach korzenia grzbietowego (DRG). Usunięcie makrofagów zwojowych korzenia grzbietowego może zmniejszyć nadwrażliwość mechaniczną i rozszerzanie makrofagów DRG spowodowane uszkodzeniem nerwu65. Systemowe lub miejscowe usuwanie makrofagów może zapobiegać alergii na ból66.

Zwiększona ekspresja P2X7R w makrofagach/monocytach może zmieniać wrodzony układ odpornościowy. Makrofagi występują jako fenotypy M1 (prozapalne) lub M2 (przeciwzapalne) i wyrażają receptory P2X7. W warunkach patologicznych P2X7R reaguje na wysokie stężenia ATP zewnątrzkomórkowego, umożliwiając nieselektywny przepływ kationów (Na+, Ca2+, K+)67,68. Aktywacja P2X7R przy wyższych stężeniach ATP, zwłaszcza po wielokrotnym podawaniu agonistów, powoduje otwarcie porów błonowych, umożliwia przepuszczenie cząsteczek ~900Da oraz pośredniczenie w zmianach funkcji makrofagów67. Kolejnym ważnym czynnikiem w odpowiedzi neurozapalnej wywołanej P2X7R jest regulacja aktywności makrofagów, która wywołuje lub utrzymuje ból neuropatyczny poprzez stymulację makrofagów, produkcję prozapalnych cytokin i wywoływanie kaskady zapalnej. Makrofag P2X7R musi być współaktywowany z receptorem Toll-podobnym 4 (TLR4) wrażliwym na endotoksynę, aby wywołać powstawanie ciała zapalnego 3 (NLRP3). Następnie ciało zapalne 3 (NLRP3) aktywuje pre-interleukinę-1β (Pro-IL-1β), aby rozłożyć cysteinę aspartazę-1 (Kaspaza-1), co skutkuje uwolnieniem IL-1β67,69 (Rysunek 1). Pochodna naringeniny, trimetoksyflawanon (Y3), hamowała działanie P2X7R po podaniu PTX, zmniejszała infiltrację komórek przypominających makrofagi IBA1 w zwojach grzbietowego korzenia oraz nadmierną aktywację astrocytów i mikrogleju w rdzeniu kręgowym, łagodziła ból neuropatyczny i neurotoksyczność.15 makrofagów RAW264.7 było leczone wysokoglukozą i wolnymi kwasami tłuszczowymi, aby indukować odporność pośredniczoną P2X7R, ból i stan zapalny neuropatyczny poprzez wydzielanie cytokin, ROS i aktywację szlaku sygnalizacyjnego ERK70.

Aktywacja P2X7R to mechanizm stymulujący makrofagi do szybkiego dojrzewania i uwalniania IL-1β, który uczestniczy w procesie zapalnym i transmisji nerwów nocyceptywnych71,72. Antagonista P2X7R A839977 zablokował napływ wapnia indukowany przez BzATP przez rekombinantne P2X7R u ludzi, szczurów i myszy, skutecznie blokował pobieranie i uwalnianie IL-1β przez ludzkie komórki THP-1 indukowane przez agonistów oraz wywołał silny efekt antyhiperalgezji73. Co ciekawe, u myszy z nokautacją IL-1αβ efekt przeciwbólowy A839977 całkowicie zniknął73. Sugeruje się, że działanie antyalgetyczne blokady P2X7R w modelu bólu myszy jest pośredniczone przez blokowanie uwalniania IL-1β. Badania wykazały, że antagonista P2X7R A438079 może zmniejszać ilość IL-1β uwalnianej przez makrofagi obwodowe w sposób zależny od dawki, hamować spontaniczną aktywność neuronów rdzenia kręgowego u szczurów neuropatycznych oraz regulować zachowania bólowe poprzez modulację interakcji immuno-neuronalnej uwalnianej przez endogenne cytokiny74.

5. Neuron regulowany przez P2X7R

Uszkodzenie nerwów obwodowych powoduje nadmierną reakcję nocyceptywną neuronów rogu kręgosłupa kręgowego i aktywuje zbieżne nocyceptywne aferenty neuronów rogu grzbietowego kręgosłupa. Ta zmiana jest uznawana za wskaźnik rozwoju elektrowni jądrowejnr 75. W rdzeniu kręgowym szczura nokaut genu pośredniczący w odpowiedzi kolapsynowej 2 (CRMP2) o krótkich zakłóceniach RNA zmniejszył częstotliwość i amplitudę spontanicznych pobudzających prądów postsynaptycznych w ostrych powierzchownych neuronach rogów kręgosłupa kręgosłupowego, ale nie zmniejszał częstotliwości i amplitudy spontanicznych hamujących prądów postsynaptycznych oraz nie miał wpływu na małe i hamujące prądy postsynaptyczne76. Ekspresja P2X7R w neuronach była historycznie przedmiotem debat. W przeszłości kontrowersyjne było, czy P2X7R jest wyrażany w neuronach. Wraz z postępem badań niektóre badania wykazały, że P2X7R jest wyrażany w neuronach, które mogą regulować aktywność neuronów oraz uczestniczyć w przekazywaniu informacji sensorycznej i generowaniu bólu 77,78,79. W modelu NPP szczurów neurony DRG były traktowane glikoproteiną otoczkową HIV 120 (Gp120). Aktywacja agonisty P2X7R (BzATP) zwiększyła prąd neuronalny, podczas gdy antagonista P2X7R BBG istotnie hamował prąd aktywowany BzATP i złagodził hiperalgezję w neuronach DRG leczonych gp12080. ATP może indukować produkcję ROS w neuronach rogów kręgosłupa kręgosłupa, którą mogą wyeliminować padlinożercy ROS N-tert-butylo-α-benzonitryl oraz antagonista P2X7R A43807981. Wstrzyknięcie wewnątrz agonisty P2X7R, BzATP, może indukować produkcję ROS rdzenia kręgowego oraz utleniające uszkodzenia DNA neuronów rogów grzbietowych oraz wzmacniać spontaniczne zachowania nocyceptywne w przypadku dwubiegunowego u szczurów81. To dowody na to, że aktywacja P2X7R neuronów prowadzi do produkcji ROS i późniejszego bólu nocyceptywnego u szczurów.

Aktywacja P2X7R ma szeroki wpływ na aktywność neuronów rdzenia kręgowego po przewlekłym urazie. W zwierzęcym modelu bólu patologicznego antagonista P2X7R A438079 może zmniejszać aktywność wywołaną różnych typów neuronów rdzenia kręgowego (niskoprogowe, specyficzne dla nocyceptywnie, szeroki zakres dynamiczny), regulować centralną wrażliwość oraz wywoływać działanie antynocyceptywne82. Inne badania wykazały, że wzrost wyrównania białka BDNF DRG wywołany uszkodzeniem nerwu kulszowego może zwiększyć aktywność P2X7R i przyczynić się do wzrostu ekspresji białka P2X7R DRG wywołanej uszkodzeniem nerwu kulszowego83. Ponadto nadekspresja BDNF zwiększa ekspresję P2X7R w neuronach DRG i pośredniczy w rozwoju NPP. Wykazano również, że nadmierna ekspresja BDNF zwiększała ekspresję P2X7R w neuronach DRG i pośredniczyła w NPP83. Badania te wykazały, że P2X7R jest ekspresjonowany w neuronach, a prądy i aktywność neuronów pośredniczą w bólu neuropatycznym. Jednak niektóre badania wykazały, że w bólu neuropatycznym P2X7R nie jest wyrażany w neuronach, lecz w komórkach glejowych (takich jak komórki gliowe satelitarne w zwoju korzenia grzbietowego), które regulują NPP. Dlatego potrzebne są dalsze badania, aby potwierdzić i wyjaśnić mechanizmy leżące u podstaw ekspresji i regulacji funkcji neuronów P2X7R.

6. Antagonistyczna aktywacja P2X7R i terapia NPP

Jak wspomniano wcześniej, aktywacja P2X7R pośredniczy w procesie pojawiania się i rozwoju bólu neuropatycznego. Dlatego hamowanie aktywacji P2X7R ma farmakologiczne efekty na łagodzenie i leczenie NPP. Obecnie opracowano różne antagonisty P2X7R (takie jak BBG, A438079 i A740003). Ci antagoniści mogą celować w aktywność P2X7R i byli dobrze stosowani w różnych chorobach (takich jak uszkodzenia rdzenia kręgowego, guzy czy choroby sercowo-naczyniowe). Potwierdzono, że celowany P2X7R pełni funkcję leczenia chorób powiązanych 84,85,86. W związku z tym antagoniści byli również wykorzystywani w leczeniu bólu, a właściwości farmakologiczne analgezji można wywierać poprzez hamowanie aktywacji P2X7R87,88.

A740003 (N-(1-{[cyanoimino) (5-chinolinylamino) metylo] amino}-2, cyanoimino-dimetylopropyl)-2-(3-metoksyfenyl) acetamd oraz A438079 (5-(2mae, 3muricofenyl)-1H-tetrazol-1-yl) metylopirydynowy chlorowodorek zostały zidentyfikowane niemal w tym samym czasie. A740003 jest pochodną cyjanoguanidyny, natomiast A438079 pochodną tetrazolu. Początkowo zgłaszano je jako silne inhibitory receptorów P2X7, a później scharakteryzowano jako antagonistów allosterycznych, wiążących się z miejscem innym niż kieszeń wiążąca ATP89,90. Działają one na P2X7R w ten sam sposób i wykazują ten sam efekt pod różnymi mutacjami w kieszeni wiązania allosterycznej, co wskazuje, że wiążą się w bardzo podobnej konfiguracji. A740003 jest nowatorskim antagonistą rywalizacji w P2X7R. Jego IC50 przeciwko człowiekowi i szczurowi wynosi odpowiednio 40 nM i 18 nM, czyli89. Antagonistyczny IC50 A438079 do ludzkiego P2X7R wynosił 130 nM91,92. W modelu zwierzęcym bólu neuropatycznego cukrzycowego, intratekalne wstrzyknięcie antagonisty P2X7R znacząco A438079 wydłużyło mechaniczny próg wycofania i opóźnienie termicznego, obniżyło poziom mRNA i białka TRPV1 w zwojach grzbietowego korzenia, obniżyło poziom fosforylacji p38 i białka regulatora sygnału zewnętrznego 1sum2 (ERK1/2) oraz złagodziło NPP93. A438079 znacząco zmniejszyło aktywność mikrogleju i astrocytów po podwiązaniu nerwu kulszowego, podniosło próg wycofania łapy mechanicznej (MWT), skróciło czas termicznego wycofania oraz zmniejszyło zachowania podobne do depresji i lęku94. PWT myszy wzrosły o 3 godziny po intratekalnym wstrzyknięciu selektywnego antagonisty P2X7R A740003 (50 nmol/L × 5 μL) i osiągnęły szczyt po 5 godzinach. Ponadto mogą również łagodzić ból poprzez eliminację ekspresji P2X7R u myszy95.

Kolejnym antagonistą w zastosowaniu NPP jest Brilliant Blue G, powszechnie stosowany pochodny syntetycznego związku barwnika spożywczego FD&C Blue 1, który jest wysoce selektywnym antagonistą P2X7R96. BBG działa jako wysoce selektywny antagonista P2X7R w modelach szczurów, gdzie wiąże się z kieszonką allosteryczną w sposób niekonkurencyjny, hamując prądy indukowane przez ATP za pomocą IC50 o średnicy około 300 nM97,98. Jego potencjalna użyteczność jest potwierdzona badaniami potwierdzającymi jego bezpieczeństwo i zdolność do przenikania przez barierę krew-mózg w modelach gryzoni99. Inhibitor P2X7R BBG może zmniejszyć ekspresję NLRP3, IL-1β, IL-18, kaspazy-1 i P2X7R w mikrogleju stymulowanym lipopolisacharydem oraz podnieść próg bólu u szczurów100. Iniekcja do otrzewnewnej agonisty TRPV4 GSK-1016790A może znacząco zwiększyć hiperalgezję mechaniczną i termiczną u szczurów, podczas gdy antagonista P2X7R BBG może częściowo hamować hiperalgezję u szczurów100. Antagonista P2X7R BBG może zmniejszyć ekspresję IL-1β oraz receptora czynnika martwiczego nowotworu-α oraz poziom fosforylacji ERK1/2, zwiększyć ekspresję IL-10 oraz łagodzić hiperalgezję u szczurów stosujących NPP101.

Inni powszechnie stosowani antagoniści P2X7R, tacy jak KN-62, JNJ-5417546 i AZ10606120, mają farmakologiczne efekty na łagodzenie bólu w innych typach bólu, w tym bólu zapalnym, trzewnym oraz bólu kości 102,103,104, jednak istnieje niewiele doniesień dotyczących zastosowania NPP, które mogą różnić się od P2X7R w różnych typach modeli zwierzęcych i schematach projektowych. Niemniej jednak, antagoniści P2X7R poczynili pewne postępy w terapii NPP i mają pole do dalszego rozwoju. Dlatego istnieje duża perspektywa na zbadanie większej liczby antagonistów skierowanych na P2X7R w NPP.

7. Ukierunkowane obniżenie ekspresji P2X7R w celu złagodzenia NPP

Wiadomo, że ośrodkowy układ nerwowy (rdzeń kręgowy) lub uszkodzenia nerwów obwodowych (takie jak nerwy kulszowe lub trójdzielne) mogą znacząco zwiększać ekspresję P2X7R w tkankach, co jest ściśle związane z występowaniem i postępem NPP. Różne badania wykazały, że ekspresja P2X7R jest istotnie zwiększona w modelu bólu neuropatycznego. Dlatego celowanie w P2X7R i obniżenie jego ekspresji może złagodzić lub leczyć NPP. Obecnie niektóre badania wykazały, że fizjoterapia, migracja komórek, składniki roślinne (takie jak kwas galowy), toksyna botulinowa i resweratrol mogą obniżać ekspresję P2X7R w tkance rdzenia kręgowego lub nerwowej, a w leczeniu NPP 105,106,107,108,109,110 odnotowano znaczące wyniki. Receptor kannabinoidowy 2 (CB2R) jest jednym z ważnych receptorów w endogennym układzie kannabinoidowym. Jest szeroko eksprimowany w ośrodkowym układzie nerwowym, zwłaszcza w komórkach glejowych, i odgrywa ważną rolę w rozwoju oraz postępie zapalenia układu nerwowego111. Po uszkodzeniu nerwu oszcząconego zawartość P2X7R w rogu grzbietowym rdzenia kręgowego wzrosła z czasem, ale po ciągłym intratekalnym wstrzykiwaniu agonisty CB2R PM226 zawartość białka P2X7R w tkance mózgowej znacząco się zmniejszyła, zmniejszyła liczbę mikrogleju i uwalnianie zapalnych cytokin, odegrała rolę neuroprotekcyjną oraz złagodziła hiperalgezję mechaniczną u szczurów111. Kwas galowy (3-4-5-trihydroksybenzoinowy), który występuje naturalnie u wielu roślin, ma działanie przeciwzapalne, antyoksydacyjne i przeciwbólowe. Badania wykazały, że kwas galowy może hamować ferroptozę w mikrogleju rdzenia kręgowego i zmniejszać uszkodzenia mitochondrialne poprzez regulację szlaku sygnalizacyjnego P2X7R-ROS, co łagodzi zmiany behawioralne u szczurów z bólem i depresją112. Dihydromirycytyna może zmniejszać ekspresję P2X7R w DRG, rdzeniu kręgowym i hipokampie, obniżać poziomy fosforylowanego białka regulowanego sygnałem zewnątrzkomórkowym 1, p38, TNF-α i IL-1 oraz skutecznie łagodzić NPP u szczurów113.

W ostatnich latach, wraz z ciągłym badaniem metod leczenia bólu, wprowadzono koncepcję terapii transplantacyjnej komórek. Naukowcy hodowali aktywne i funkcjonalne komórki (takie jak komórki macierzyste mezenchymalne, komórki macierzyste nerwowe, komórki Schwanna oraz komórki otulające węch) in vitro i przeszczepiali je do gospodarza poprzez neuroprotekcję, przeciwzapalną i wspierające regenerację aksonów, obniżyła ekspresję P2X7R w tkankach, co przyczyniło się do łagodzenia NPP 114,115,116,117,118. Badanie wykazało, że 4 tygodnie po wstrzyknięciu komórek macierzystych nerwowych do uszkodzonego segmentu rdzenia kręgowego w modelu urazu rdzenia kręgowego szczura ekspresja białka neurofilamentowego wzrosła istotnie, podczas gdy ekspresja białka kwaśnego glia włóknistego i P2X7R (P2X4R) spadła, funkcje motoryczne i czuciowe znacznie się poprawiły, a ból neuropatyczny złagodził119. W naszym poprzednim badaniu, po przeszczepieniu komórek otulających węch oraz mikrokapsułkowanych komórek otulających węch do modelu urazu nerwu kulszowego, oceniano ekspresję P2X7R w rdzeniu kręgowym metodami behawioralnymi. Wyniki wykazały, że przeszczepienie komórek może znacząco zmniejszyć ekspresję białka i mRNA P2X7R oraz liczbę dodatnich komórek znakowanych P2X7R w tkance rdzenia kręgowego, oraz łagodzą hiperalgezję u szczurów118. Dodatkowo zmniejszyliśmy ekspresję P2X7R w komórkach otulających węch w połączeniu z biomateriałami (chitosanem) w miejscu uszkodzonego nerwu kulszowego i znacząco złagodziliśmy NPP u szczurów120. Wszystkie te badania pokazują, że celowanie w P2X7R i obniżanie jego ekspresji może łagodzić lub leczyć NPP, zapewniając szerzej dostępne leczenie NPP.

Wyjaśnienie heterogeniczności modelu NPP jest kluczowe dla klinicznej transformacji terapii ukierunkowanej na P2X7R. W porównaniu z innymi powszechnymi terapiami NPP, strategie ukierunkowane na P2X7R (antagoniści, ukierunkowane obniżenie regulacji) mają unikalne zalety w regulowaniu kluczowych populacji komórek oraz blokowaniu sygnalizacji purinergicznej 3,4,6,7,10,12.

NPP można podzielić na typy urazowe, cukrzycowe wywołane chemioterapią oraz wirusowe, z wyraźnymi mechanizmami pośredniczonymi przez P2X7R 2,5,12,55,80,101: modele urazowe obejmują aktywację gleja i zaburzenie purinergiczne 4,5,33; Modele cukrzycowe dotyczą neurozapalenia wywołanego przez hiperglikemię oraz aktywacji inflammasomu NLRP3 5,113; Modele indukowane chemioterapią obejmują aktywację i uwrażliwienie makrofagów/gleju 2,15; Modele wirusowe są pośredniczone przez aktywację immunologiczną/glejową oraz zwiększoną pobudliwość neuronów sensorycznych 6,80,101, co jest zgodne z przypadkami klinicznymi 12.

Inicjacja NPP zależy od aktywacji P2X7R indukowanej przez ATP oraz początkowego neurozapalenia 3,5,2,55,80; utrzymanie zależy od trwałej aktywacji P2X7R oraz nieprawidłowej komunikacji glejowo-neuronalnej 4,6,56,60. Samice wykazują wyższą ekspresję P2X7R, silniejszy ból oraz większą wrażliwość na antagonistów w modelach urazowych i cukrzycowych55,66, podczas gdy różnice płciowe w innych modelach pozostają niedostatecznie zbadane.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Wnioski

Mechanizm NPP po uszkodzeniu nerwu jest złożony, co może prowadzić do zaburzeń sensorycznych i ruchowych, poważnie wpływać na jakość życia pacjentów i nie ma skutecznego leczenia. Dlatego analiza molekularnej podstawy NPP jest pomocna w leczeniu NPP. Na szczęście wykazano, że kanał jonowy P2X7R odgrywa kluczową rolę w występowaniu i rozwoju NPP. Aktywacja lub nadekspresja P2X7R może regulować aktywację komórek glejowych i makrofagów, pośredniczyć w uwalnianiu prozapalnych cytokin i kaskady zapalnej, zwiększać uszkodzenia...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Bibliografia

  1. Finnerup, N. B., Kuner, R., Jensen, T. S. Neuropathic pain: From mechanisms to treatment. Physiol Rev. 101 (1), 259-301 (2021).
  2. Xu, Y., Jiang, Z., Chen, X. Mechanisms underlying paclitaxel-induced neuropathic pain: Channels, inflammation and immune regulations. Eur J Pharmacol. 933, 175288(2022).
  3. Fiore, N. T., Debs, S. R., Hayes, J. P., Duffy, S. S., Moalem-Taylor, G. Pain-resolving immune mechanisms in neuropathic pain. Nat Rev Neurol. 19 (4), 199-220 (2023).
  4. Zhang, T., et al. The core of maintaining neuropathic pain: Crosstalk between glial cells and neurons (neural cell crosstalk at spinal cord. Brain Behav. 13 (2), e2868(2023).
  5. Chu, J., et al. ATP-releasing SWELL1 channel in spinal microglia contributes to neuropathic pain. Sci Adv. 9 (13), eade9931(2023).
  6. Zhang, W. J., Zhu, Z. M., Liu, Z. X. The role and pharmacological properties of the P2X7 receptor in neuropathic pain. Brain Res Bull. 155, 19-28 (2020).
  7. Yamashita, T., et al. New Inhibitory Effects of Cilnidipine on Microglial P2X7 Receptors and IL-1β Release: An Involvement in its Alleviating Effect on Neuropathic Pain. Cells. 10 (2), 434(2021).
  8. Hu, S. Q., et al. P2X7 receptor in inflammation and pain. Brain Res Bull. 187, 199-209 (2022).
  9. Ren, W. J., Illes, P. Involvement of P2X7 receptors in chronic pain disorders. Purinergic Signal. 18 (1), 83-92 (2022).
  10. Inoue, K., Tsuda, M. Nociceptive signaling mediated by P2X3, P2X4 and P2X7 receptors. Biochem Pharmacol. 187, 114309(2021).
  11. Zou, Y., Yang, R., Li, L., Xu, X., Liang, S. Purinergic signaling: a potential therapeutic target for depression and chronic pain. Purinergic Signal. 19 (1), 163-172 (2023).
  12. Luchting, B., et al. Differential expression of P2X7 receptor and IL-1β in nociceptive and neuropathic pain. J Neuroinflammation. 13 (1), 100(2016).
  13. Jacobson, K. A., Giancotti, L. A., Lauro, F., Mufti, F., Salvemini, D. Treatment of chronic neuropathic pain: purine receptor modulation. Pain. 161 (7), 1425-1441 (2020).
  14. Staal, R., et al. P2X7 receptor-mediated release of microglial prostanoids and miRNAs correlates with reversal of neuropathic hypersensitivity in rats. Eur J Pain. 26 (6), 1304-1321 (2022).
  15. Mei, C., et al. Trimethoxyflavanone relieves Paclitaxel-induced neuropathic pain via inhibiting expression and activation of P2X7 and production of CGRP in mice. Neuropharmacology. 236, 109584(2023).
  16. Szok, D., Tajti, J., Nyári, A., Vécsei, L. Therapeutic approaches for peripheral and central neuropathic pain. Behav Neurol. 2019, 8685954(2019).
  17. Inoue, K. The role of ATP receptors in pain signaling. Neurochem Res. 47 (9), 2454-2468 (2022).
  18. Bannister, K., Sachau, J., Baron, R., Dickenson, A. H. Neuropathic pain: Mechanism-based therapeutics. Annu Rev Pharmacol Toxicol. 60, 257-274 (2020).
  19. Liu, J. P., et al. Olfactory ensheathing cells and neuropathic pain. Front Cell Dev Biol. 11, 1147242(2023).
  20. Miranpuri, G. S., et al. Role of microglia and astrocytes in spinal cord injury induced neuropathic pain. Ann Neurosci. 28 (3-4), 219-228 (2021).
  21. Ma, Y. C., et al. The complexity of neuropathic pain and central sensitization: Exploring mechanisms and therapeutic prospects. J Integr Neurosci. 23 (5), 89(2024).
  22. Pinto, M. V., et al. BASHY dye platform enables the fluorescence bioimaging of myelin debris phagocytosis by microglia during demyelination. Cells. 10 (11), 3163(2021).
  23. Colonna, M., Butovsky, O. Microglia function in the central nervous system during health and neurodegeneration. Annu Rev Immunol. 35, 441-468 (2017).
  24. Zhang, W. J., Hu, D. X., Lin, S. J., Fang, X. Q., Ye, Z. F. Contribution of P2X purinergic receptor in cerebral ischemia injury. Brain Res Bull. 190, 42-49 (2022).
  25. Meacham, K., Shepherd, A., Mohapatra, D. P., Haroutounian, S. Neuropathic Pain: Central vs Peripheral Mechanisms. Curr Pain Headache Rep. 21 (6), 28(2017).
  26. Jiang, B. C., et al. NFAT1 orchestrates spinal microglial transcription and promotes microglial proliferation via c-MYC contributing to nerve injury-induced neuropathic pain. Adv Sci (Weinh). 9 (27), e2201300(2022).
  27. Tsuda, M. Microglia in the spinal cord and neuropathic pain. J Diabetes Investig. 7 (1), 17-26 (2016).
  28. Ji, A., Xu, J. Neuropathic pain: Biomolecular intervention and imaging via targeting microglia activation. Biomolecules. 11 (9), 1343(2021).
  29. Atta, A. A., Ibrahim, W. W., Mohamed, A. F., Abdelkader, N. F. Microglia polarization in nociplastic pain: mechanisms and perspectives. Inflammopharmacology. 31 (3), 1053-1067 (2023).
  30. Yi, M. H., et al. Chemogenetic manipulation of microglia inhibits neuroinflammation and neuropathic pain in mice. Brain Behav Immun. 92, 78-89 (2021).
  31. Li, T., et al. P2X7 receptor-activated microglia in cortex is critical for sleep disorder under neuropathic pain. Front Neurosci. 17, 1095718(2023).
  32. Zhou, Y., et al. Spinal cannabinoid receptor 2 activation alleviates neuropathic pain by regulating microglia and suppressing P2X7 receptor. Front Mol Neurosci. 16, 1061220(2023).
  33. Kobayashi, K., Takahashi, E., Miyagawa, Y., Yamanaka, H., Noguchi, K. Induction of the P2X7 receptor in spinal microglia in a neuropathic pain model. Neurosci Lett. 504 (1), 57-61 (2011).
  34. Monif, M., et al. Interleukin-1β has trophic effects in microglia and its release is mediated by P2X7R pore. J Neuroinflammation. 13 (1), 173(2016).
  35. Asatryan, L., Ostrovskaya, O., Lieu, D., Davies, D. L. Ethanol differentially modulates P2X4 and P2X7 receptor activity and function in BV2 microglial cells. Neuropharmacology. 128, 11-21 (2018).
  36. He, Y., Taylor, N., Fourgeaud, L., Bhattacharya, A. The role of microglial P2X7: Modulation of cell death and cytokine release. J Neuroinflammation. 14 (1), 135(2017).
  37. Li, J., et al. Microvesicles shed from microglia activated by the P2X7-p38 pathway are involved in neuropathic pain induced by spinal nerve ligation in rats. Purinergic Signal. 13 (1), 13-26 (2017).
  38. Wu, Q., et al. Electroacupuncture may alleviate neuropathic pain via suppressing P2X7R expression. Mol Pain. 17, 1744806921997654(2021).
  39. Guo, Y., et al. The actions and mechanisms of P2X7R and p38 MAPK activation in mediating bortezomib-induced neuropathic pain. Biomed Res Int. 2020, 8143754(2020).
  40. Gui, X., et al. Botulinum toxin type A promotes microglial M2 polarization and suppresses chronic constriction injury-induced neuropathic pain through the P2X7 receptor. Cell Biosci. 10, 45(2020).
  41. Yu, J., et al. High-frequency spinal stimulation suppresses microglial Kaiso-P2X7 receptor axis-induced inflammation to alleviate neuropathic pain in rats. Ann Neurol. 95 (5), 966-983 (2024).
  42. Xu, J., Chen, X. M., Zheng, B. J., Wang, X. R. Electroacupuncture relieves nerve injury-induced pain hypersensitivity via the inhibition of spinal P2X7 receptor-positive microglia. Anesth Analg. 122 (3), 882-892 (2016).
  43. Yang, J., et al. Anti-allodynic effect of intrathecal processed Aconitum jaluense is associated with the inhibition of microglial activation and P2X7 receptor expression in spinal cord. BMC Complement Altern Med. 16, 214(2016).
  44. Shan, L., et al. Injured sensory neurons-derived galectin-3 contributes to neuropathic pain via programming microglia in the spinal dorsal horn. Brain Behav Immun. 117, 80-99 (2024).
  45. Ji, R. R., Donnelly, C. R., Nedergaard, M. Astrocytes in chronic pain and itch. Nat Rev Neurosci. 20 (11), 667-685 (2019).
  46. McGinnis, A., Ji, R. R. The similar and distinct roles of satellite glial cells and spinal astrocytes in neuropathic pain. Cells. 12 (6), 965(2023).
  47. Daigo, E., et al. Photobiomodulation activates microglia/astrocytes and relieves neuropathic pain in inferior alveolar nerve injury. Photobiomodul Photomed Laser Surg. 41 (12), 694-702 (2023).
  48. Yuan, J., Fei, Y. Lidocaine activates autophagy of astrocytes and ameliorates chronic constriction injury-induced neuropathic pain. J Biochem. 170 (1), 25-31 (2021).
  49. Yang, L., et al. Ventrolateral periaqueductal gray astrocytes regulate nociceptive sensation and emotional motivation in diabetic neuropathic pain. J Neurosci. 42 (43), 8184-8199 (2022).
  50. Takeda, I., et al. Controlled activation of cortical astrocytes modulates neuropathic pain-like behaviour. Nat Commun. 13 (1), 4100(2022).
  51. Jiang, B. C., et al. CXCL13 drives spinal astrocyte activation and neuropathic pain via CXCR5. J Clin Invest. 126 (2), 745-761 (2016).
  52. Cheng, T., Xu, Z., Ma, X. The role of astrocytes in neuropathic pain. Front Mol Neurosci. 15, 1007889(2022).
  53. Wu, Y. Y., et al. Targeting GATA1 and p2x7r locus binding in spinal astrocytes suppresses chronic visceral pain by promoting DNA demethylation. Neurosci Bull. 38 (4), 359-372 (2022).
  54. Yang, Y., et al. Delayed activation of spinal microglia contributes to the maintenance of bone cancer pain in female Wistar rats via P2X7 receptor and IL-18. J Neurosci. 35 (20), 7950-7963 (2015).
  55. Zhan, T., et al. Implication of lncRNA MSTRG.81401 in hippocampal pyroptosis induced by p2x7 receptor in Type 2 diabetic rats with neuropathic pain combined with depression. Int J Mol Sci. 25 (2), 1186(2024).
  56. Hu, X., et al. Inhibition of P2X7R in the amygdala ameliorates symptoms of neuropathic pain after spared nerve injury in rats. Brain Behav Immun. 88, 507-514 (2020).
  57. Ge, H., et al. Protective effects of dihydromyricetin on primary hippocampal astrocytes from cytotoxicity induced by comorbid diabetic neuropathic pain and depression. Purinergic Signal. 16 (4), 585-599 (2020).
  58. Fellin, T., et al. Bidirectional astrocyte-neuron communication: the many roles of glutamate and ATP. Novartis Found Symp. 276, 208-217 (2006).
  59. Perea, G., Araque, A. Properties of synaptically evoked astrocyte calcium signal reveal synaptic information processing by astrocytes. J Neurosci. 25 (9), 2192-2203 (2005).
  60. Ficker, C., et al. Astrocyte-neuron interaction in the substantia gelatinosa of the spinal cord dorsal horn via P2X7 receptor-mediated release of glutamate and reactive oxygen species. Glia. 62 (10), 1671-1686 (2014).
  61. Zhang, X., Chen, Y., Wang, C., Huang, L. Y. Neuronal somatic ATP release triggers neuron-satellite glial cell communication in dorsal root ganglia. Proc Natl Acad Sci U S A. 104 (23), 9864-9869 (2007).
  62. Fiore, N. T., Debs, S. R., Hayes, J. P., Duffy, S. S., Moalem-Taylor, G. Pain-resolving immune mechanisms in neuropathic pain. Nat Rev Neurol. 19 (4), 199-220 (2023).
  63. Malcangio, M. Role of the immune system in neuropathic pain. Scand J Pain. 20 (1), 33-37 (2019).
  64. Bethea, J. R., Fischer, R. Role of peripheral immune cells for development and recovery of chronic pain. Front Immunol. 12, 641588(2021).
  65. Yu, X., et al. Dorsal root ganglion macrophages contribute to both the initiation and persistence of neuropathic pain. Nat Commun. 11 (1), 264(2020).
  66. Tu, Y., Muley, M. M., Beggs, S., Salter, M. W. Microglia-independent peripheral neuropathic pain in male and female mice. Pain. 163 (11), e1129-e1144 (2022).
  67. Ren, W., Rubini, P., Tang, Y., Engel, T., Illes, P. Inherent P2X7 receptors regulate macrophage functions during inflammatory diseases. Int J Mol Sci. 23 (1), 232(2021).
  68. Zhou, L., et al. Extracellular ATP (eATP) inhibits the progression of endometriosis and enhances the immune function of macrophages. Biochim Biophys Acta Mol Basis Dis. 1870 (1), 166895(2024).
  69. Jiang, S., et al. Potentiation of hepatic stellate cell activation by extracellular ATP is dependent on P2X7R-mediated NLRP3 inflammasome activation. Pharmacol Res. 117, 82-93 (2017).
  70. Wu, H., Wen, F., Jiang, M., Liu, Q., Nie, Y. LncRNA uc.48+ is involved in the diabetic immune and inflammatory responses mediated by P2X7 receptor in RAW264.7 macrophages. Int J Mol Med. 42 (2), 1152-1160 (2018).
  71. Honore, P., et al. A-740003 [N-(1-{[(cyanoimino)(5-quinolinylamino) methyl]amino}-2,2-dimethylpropyl)-2-(3,4-dimethoxyphenyl)acetamide], a novel and selective P2X7 receptor antagonist, dose-dependently reduces neuropathic pain in the rat. J Pharmacol Exp Ther. 319 (3), 1376-1385 (2006).
  72. Hempel, C., et al. The phenothiazine-class antipsychotic drugs prochlorperazine and trifluoperazine are potent allosteric modulators of the human P2X7 receptor. Neuropharmacology. 75, 365-379 (2013).
  73. Honore, P., et al. The anti-hyperalgesic activity of a selective P2X7 receptor antagonist, A-839977, is lost in IL-1alphabeta knockout mice. Behav Brain Res. 204 (1), 77-81 (2009).
  74. McGaraughty, S., et al. P2X7-related modulation of pathological nociception in rats. Neuroscience. 146 (4), 1817-1828 (2007).
  75. Terayama, R., et al. Peripheral nerve injury activates convergent nociceptive input to dorsal horn neurons from neighboring intact nerve. Exp Brain Res. 233 (4), 1201-1212 (2015).
  76. Boinon, L., et al. Conditional knockout of CRMP2 in neurons, but not astrocytes, disrupts spinal nociceptive neurotransmission to control the initiation and maintenance of chronic neuropathic pain. Pain. 163 (2), e368-e381 (2022).
  77. Illes, P., Khan, T. M., Rubini, P. Neuronal P2X7 receptors revisited: Do they really exist. J Neurosci. 37 (30), 7049-7062 (2017).
  78. Inoue, K., Tsuda, M. Nociceptive signaling mediated by P2X3, P2X4 and P2X7 receptors. Biochem Pharmacol. 187, 114309(2021).
  79. Chen, L., et al. Differential expression of ATP-gated P2X receptors in DRG between chronic neuropathic pain and visceralgia rat models. Purinergic Signal. 12 (1), 79-87 (2016).
  80. Wu, B., et al. The P2X7 receptor in dorsal root ganglia is involved in HIV gp120-associated neuropathic pain. Brain Res Bull. 135, 25-32 (2017).
  81. Munoz, F. M., Gao, R., Tian, Y., Henstenburg, B. A., Barrett, J. E., Hu, H. Neuronal P2X7 receptor-induced reactive oxygen species production contributes to nociceptive behavior in mice. Sci Rep. 7 (1), 3539(2017).
  82. McGaraughty, S., et al. P2X7-related modulation of pathological nociception in rats. Neuroscience. 146 (4), 1817-1828 (2007).
  83. Wu, Y., et al. BDNF participates in chronic constriction injury-induced neuropathic pain via transcriptionally activating P2X7 in primary sensory neurons. Mol Neurobiol. 58 (9), 4226-4236 (2021).
  84. Zhang, W. J., Zhu, Z. M., Liu, Z. X. The role and pharmacological properties of the P2X7 receptor in neuropathic pain. Brain Res Bull. 155, 19-28 (2020).
  85. Jacobson, K. A., Giancotti, L. A., Lauro, F., Mufti, F., Salvemini, D. Treatment of chronic neuropathic pain: purine receptor modulation. Pain. 161 (7), 1425-1441 (2020).
  86. El Idrissi, I. G., et al. Structure-activity relationships and therapeutic potential of purinergic P2X7 receptor antagonists. Curr Med Chem. 31 (11), 1361-1403 (2024).
  87. Zhu, Y., Zhang, S., Wu, Y., Wang, J. P2X7 receptor antagonist BBG inhibits endoplasmic reticulum stress and pyroptosis to alleviate post-herpetic neuralgia. Mol Cell Biochem. 476 (9), 3461-3468 (2021).
  88. Green-Fulgham, S. M., et al. Suppression of active phase voluntary wheel running in male rats by unilateral chronic constriction injury: Enduring therapeutic effects of a brief treatment of morphine combined with TLR4 or P2X7 antagonists. J Neurosci Res. 100 (1), 265-277 (2022).
  89. Honore, P., et al. A-740003 [N-(1-{[(cyanoimino)(5-quinolinylamino) methyl]amino}-2,2-dimethylpropyl)-2-(3,4-dimethoxyphenyl)acetamide], a novel and selective P2X7 receptor antagonist, dose-dependently reduces neuropathic pain in the rat. J Pharmacol Exp Ther. 319, 1376-1385 (2006).
  90. Karasawa, A., Kawate, T. Structural basis for subtype-specific inhibition of the P2X7 receptor. Elife. 5, e22153(2016).
  91. Nelson, D. W., et al. Structure-activity relationship studies on a series of novel, substituted 1-benzyl-5-phenyltetrazole P2X7 antagonists. J Med Chem. 49, 3659-3666 (2006).
  92. Savio, L. E. B., de Andrade Mello, P., da Silva, C. G., Coutinho-Silva, R. The P2X7 receptor in inflammatory diseases: Angel or demon. Front Pharmacol. 9, 52(2018).
  93. Wang, A., et al. The P2X7 receptor is involved in diabetic neuropathic pain hypersensitivity mediated by TRPV1 in the rat dorsal root ganglion. Front Mol Neurosci. 14, 663649(2021).
  94. Hu, X., et al. Inhibition of P2X7R in the amygdala ameliorates symptoms of neuropathic pain after spared nerve injury in rats. Brain Behav Immun. 88, 507-514 (2020).
  95. Ni, C. M., et al. Spinal P2X7R contributes to streptozotocin-induced mechanical allodynia in mice. J Zhejiang Univ Sci B. 21 (2), 155-165 (2020).
  96. Jiang, L. H., Mackenzie, A. B., North, R. A., Surprenant, A. Brilliant blue G selectively blocks ATP-gated rat P2X(7) receptors. Mol Pharmacol. 58 (1), 82-88 (2000).
  97. Bin Dayel, A., Evans, R. J., Schmid, R. Mapping the site of action of human P2X7 receptor antagonists AZ11645373, Brilliant Blue G, KN-62, Calmidazolium, and ZINC58368839 to the Intersubunit Allosteric Pocket. Mol Pharmacol. 96 (3), 355-363 (2019).
  98. Peng, W., et al. Systemic administration of an antagonist of the ATP-sensitive receptor P2X7 improves recovery after spinal cord injury. Proc Natl Acad Sci U S A. 106 (30), 12489-12493 (2009).
  99. Sun, S., et al. Ligand-gated ion channel P2X7 regulates NLRP3/Caspase-1-mediated inflammatory pain caused by pulpitis in the trigeminal ganglion and medullary dorsal horn. Brain Res Bull. 192, 1-10 (2023).
  100. Fan, X., et al. Role of TRPV4-P2X7 pathway in neuropathic pain in rats with chronic compression of the dorsal root ganglion. Neurochem Res. 46 (8), 2143-2153 (2021).
  101. Wu, B., et al. The P2X7 receptor in dorsal root ganglia is involved in HIV gp120-associated neuropathic pain. Brain Res Bull. 135, 25-32 (2017).
  102. Park, J. H., et al. Discovery of novel 2,5-dioxoimidazolidine-based P2X(7) receptor antagonists as constrained analogues of KN62. J Med Chem. 58 (7), 2114-2134 (2015).
  103. Jacobson, K. A., IJzerman, A. P., Müller, C. E. Medicinal chemistry of P2 and adenosine receptors: Common scaffolds adapted for multiple targets. Biochem Pharmacol. 187, 114311(2021).
  104. Allsopp, R. C., Dayl, S., Schmid, R., Evans, R. J. Unique residues in the ATP gated human P2X7 receptor define a novel allosteric binding pocket for the selective antagonist AZ10606120. Sci Rep. 7 (1), 725(2017).
  105. Mei, C., et al. Trimethoxyflavanone relieves Paclitaxel-induced neuropathic pain via inhibiting expression and activation of P2X7 and production of CGRP in mice. Neuropharmacology. 236, 109584(2023).
  106. Yang, R., et al. Gallic acid alleviates neuropathic pain behaviors in rats by inhibiting P2X7 receptor-mediated NF-κB/STAT3 signaling pathway. Front Pharmacol. 12, 680139(2021).
  107. Gui, X., et al. Botulinum toxin type A promotes microglial M2 polarization and suppresses chronic constriction injury-induced neuropathic pain through the P2X7 receptor. Cell Biosci. 10, 45(2020).
  108. Yu, J., et al. High-frequency spinal stimulation suppresses microglial Kaiso-P2X7 receptor axis-induced inflammation to alleviate neuropathic pain in rats. Ann Neurol. 95 (5), 966-983 (2024).
  109. Xu, J., Chen, X. M., Zheng, B. J., Wang, X. R. Electroacupuncture relieves nerve injury-induced pain hypersensitivity via the inhibition of spinal P2X7 receptor-positive microglia. Anesth Analg. 122 (3), 882-892 (2016).
  110. Xie, J., et al. The protective effect of resveratrol in the transmission of neuropathic pain mediated by the P2X7 receptor in the dorsal root ganglia. Neurochem Int. 103, 24-35 (2017).
  111. Zhou, Y., et al. Spinal cannabinoid receptor 2 activation alleviates neuropathic pain by regulating microglia and suppressing P2X7 receptor. Front Mol Neurosci. 16, 1061220(2023).
  112. Yang, R., et al. Gallic acid improves comorbid chronic pain and depression behaviors by inhibiting P2X7 receptor-mediated ferroptosis in the spinal cord of rats. ACS Chem Neurosci. 14 (4), 667-676 (2023).
  113. Guan, S., et al. Dihydromyricetin alleviates diabetic neuropathic pain and depression comorbidity symptoms by inhibiting P2X7 receptor. Front Psychiatry. 10, 770(2019).
  114. Masoodifar, M., et al. Effect of the conditioned medium of mesenchymal stem cells on the expression levels of P2X4 and P2X7 purinergic receptors in the spinal cord of rats with neuropathic pain. Purinergic Signal. 17 (1), 143-150 (2021).
  115. Zhang, W. J., Zhu, J. F., Zhu, Z. M. Transplantation of microencapsulated neural stem cells inhibits neuropathic pain mediated by P2X7 receptor overexpression. Biochem Biophys Res Commun. 533 (4), 1219-1225 (2020).
  116. Lu, J., et al. Olfactory ensheathing cells alleviate facial pain in rats with trigeminal neuralgia by inhibiting the expression of P2X7 receptor. Brain Sci. 12 (6), 706(2022).
  117. Jing, B., et al. Catechin alleviates CCI-induced neuropathic pain in rats by modulating the IL34/CSFIR axis and attenuating the schwann cell-macrophage cascade response in the DRG. Mol Neurobiol. 60, 1-14 (2023).
  118. Zhang, W., Liu, Y., Sun, Y., Liu, Z. Effects of microencapsulated olfactory ensheathing cell transplantation on neuropathic pain and P2X7 receptor expression in the L4-5 spinal cord segment. Neurosci Lett. 701, 48-53 (2019).
  119. Du, X. J., et al. Neural stem cell transplantation inhibits glial cell proliferation and P2X receptor-mediated neuropathic pain in spinal cord injury rats. Neural Regen Res. 14 (5), 876-885 (2019).
  120. Zhang, W. J., et al. Transplantation of olfactory ensheathing cells combined with chitosan down-regulates the expression of P2X7 receptor in the spinal cord and inhibits neuropathic pain. Brain Res. 1748, 147058(2020).

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Przedruki i uprawnienia

Przeglądaj więcej artykułów

Receptor P2X7sygnalizacja neuroimmunologicznacentralna sensytyzacjakomórki glejowekomórki odpornościoweplastyczność synaptycznaantagoniści P2X7patogeneza bólu