Artykuł przeglądowy

Modele zwierzęce związane z udarem: metodologie, zastosowania i perspektywy translacyjne

DOI:

10.3791/70147

19 maja 2026

* These authors contributed equally

W tym artykule

Podsumowanie

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Niniejszy przegląd analizuje główne modele zwierząt doświadczających udaru, oceniając ich zasady techniczne, mocne strony i ograniczenia. Nacisk kładzie się na rygorystyczne, klinicznie dopasowane projektowanie oraz znaczenie translacyjne. Rozwój platform zintegrowanych z chorobami współistniejącymi, oceny sterowanej biomarkerami oraz walidacji międzygatunkowej będą niezbędne dla poprawy sukcesu od przedklinicznej do klinicznej w rozwoju terapii udarowej.

Streszczenie

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Udar pozostaje jedną z głównych przyczyn zgonów i niepełnosprawności na całym świecie. Pomimo setek leków neuroprotekcyjnych, które wykazują obiecujące wyniki w badaniach przedklinicznych, niemal wszystkie zakończyły się niepowodzeniem w badaniach klinicznych, głównie z powodu niespójności między modelami zwierzęcymi a kondycją ludzką. Niniejszy przegląd przedstawia kompleksowy przegląd eksperymentalnych modeli udaru, obejmujących udar niedokrwienny (zwężenie tętnicy środkowej, fotozakrzep, modele zakrzepowe i zatorowe, skurczenie naczynia indukowane endotelliną-1, niedokrwienie globalne), udar krwotoczny (krwotok śródmózgowy, krwotok podpajęczynkowy, krwiak zewnątrzoponowy), modele chorób mózgowo-naczyniowych (tętniak śródczaszkowy, malformacja tętniczo-żylna), modele spontanicznie skłonne do udaru (nadciśnienie, amyloid mózgowy angiopatia), oraz modelami specjalnych schorzeń (neonologiczna niedotleniona–niedokrwienna encefalopatia, przewlekła hipoperfuzja mózgu, powikłania po udarze, takie jak padaczka, depresja, dysfagia i zaburzenia poznawcze). Systematycznie podsumowujemy podejścia techniczne, kluczowe parametry, zalety i ograniczenia każdego modelu, podkreślając ich zastosowania w badaniu neuroprotekcji, reperfuzji, rozprzestrzeniania się krwiaka, stanu zapalnego, zakłóceń bariery krew-mózg oraz strategii rehabilitacji. Zgodnie z międzynarodowymi wytycznymi, takimi jak STAIR i INARRIVE, podkreślamy znaczenie rygorystycznego projektowania badań, w tym kontroli gatunków, szczepów, płci, wieku i chorób współistniejących, a także miar wyników dostosowanych do scenariuszy klinicznych. Przyszłe kierunki obejmują rozwój modeli hybrydowych i zintegrowanych z chorobami współistniejącymi, odzwierciedlających heterogeniczność udaru u człowieka, wdrożenie walidacji międzygatunkowej, włączanie obrazowania i biomarkerów krwi do procesów przedklinicznych oraz rozwój platform translacyjnych dla nowych leków i urządzeń. Zbliżenie modelowania na zwierzętach do projektowania badań klinicznych będzie kluczowe dla przyspieszenia odkrywania skutecznych terapii udarowych.

Wprowadzenie

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Udar jest główną przyczyną zgonów i długotrwałej niepełnosprawności na całym świecie, nakładając na to znaczne obciążenie społeczne i zdrowotne. Najnowsze wyniki Global Burden of Disease wskazują, że w 2021 roku odnotowano około 11,9 miliona przypadków udarów; spośród nich 65,3% miało wylew niedokrwienny, 28,8% krwotok śródmózgowy (ICH), a 5,8% krwotok podpajęczynkowy (SAH)1,2. Chociaż terapie reperfuzyjne — dożylna tromboliza z rekombinowanym aktywatorem plazminogenu tkankowego (rt-PA) oraz trombektomia mechaniczna — zrewolucjonizowały opiekę ostrą, to obecnie tylko mniejszość pacjentów otrzymuje lub korzysta z tych terapii 3,4. Co więcej, wiele neuroprotekcyjnych podejść skutecznych w badaniach na zwierzętach nie przeszło w badaniach klinicznych, co podkreśla utrzymującą się lukę translacyjną5. Kluczowym czynnikiem jest to, że sukces mierzy się różnie w poszczególnych badaniach i środowiskach, od ostrych urazów histologicznych po długotrwałą funkcjonalną regenerację, a coraz częściej włącza się fenotypowanie podłużne i multimodalne.

Modele zwierzęce są niezbędne w tym kontinuum translacyjnym. Od połowyXX wieku różnorodne preparaty przyczyniły się do rozwoju wiedzy na temat patofizjologii mózgu naczyniowego, kaskady niedokrwiennej, dynamiki krwotocznej oraz neurozapalenia i naprawy. Pełnią one trzy główne funkcje: (i) wyznaczanie komórkowych i molekularnych mechanizmów uszkodzeń niedokrwiennych i krwotocznych; (ii) przesiewowe i optymalizujące strategie neuroprotekcyjne oraz neuroodtwórcze; oraz (iii) zapewnienie platform pomostowych dla interwencji endowaskularnych, rehabilitacyjnych i systemowych opiek 6,7. Co istotne, wybór modelu powinien być podyktowany scenariuszem klinicznym i głównym punktem docelowym (np. biologia reperfuzji, toksyczność związana z krwiakiem, wczesne uszkodzenie mózgu lub długoterminowe wyniki behawioralne), a nie wygodą proceduralną. Biorąc pod uwagę wyraźną heterogeniczność udaru człowieka — ukształtowaną przez wiek, płeć, choroby współistniejące, anatomię naczyniową i podtyp etiologiczny — żaden pojedynczy model nie jest w stanie w pełni oddać klinicznej rzeczywistości; Do emulacji konkretnych scenariuszy wymagane są modele komplementarne 6,7.

Ewolucja modeli udarów ściśle śledzi potrzeby kliniczne. Wczesne paradygmaty niedokrwienia globalnego (np. okluzja czteronaczyniowa) zostały opracowane do badania encefalopatii hipoksyczno-niedokrwiennej (HIE) oraz urazu po zatrzymaniu akcji serca8. Model zamknięcia śródświatłowych włókna środkowego tętnicy mózgowej (MCAO), wprowadzony przez Koizumiego i udoskonalony przez Longę, umożliwił powtarzalną, trwałą lub przejściową niedokrwistość ogniskową bez kraniektomii, znacznie przyspieszając badania związane z okluzją dużych naczyń (LVO) i reperfuzją 9,10. Kolejne paradygmaty niedokrwienia ogniskowego zdywersyfikowały się, aby zrównoważyć eksperymentalną kontrolę z realizmem zakrzepowo-zatorowym: modele zakrzepowe ułatwiają ocenę trombolizy i leków przeciwzakrzepowych11; metody fotokrómpowe generują wyraźnie wyznaczone zawały korowe, odpowiednie do badań na poziomie obwodów i rehabilitacji12; oraz mikroiniekcja endotelin-1 (ET-1) powoduje przestrzennie ukierunkowaną, odwracalną zwężanie naczyń w modelowaniu chorób małych naczyń i głębokich zmian13. W przypadku udaru krwotocznego modele ICH indukowane kolagenazą i autologiczne w krwi, wraz z modelami perforacji endowaskularnej (EVP) SAH, mają zaawansowane zrozumienie zakresu rozszerzania się krwiaka, neurotoksyczności produktów krwi, wczesnego uszkodzenia mózgu (EBI) oraz skurczu naczyń 14,15,16,17. W ostatnich latach stosuje się paradygmaty skoncentrowane na schorzeniach specjalnych i powikłaniach—w tym HIE noworodków, przewlekłą hipoperfuzję/naczyniowe zaburzenia poznawcze (VCI) oraz powikłania układowe po udarze—aby lepiej odzwierciedlać różnorodność kliniczną i trajektorie powrotu do zdrowia18,19.

Mimo to wyzwania pozostają. Różnice anatomiczne i fizjologiczne między gryzoniami a ludźmi ograniczają bezpośrednie tłumaczenie i motywują badania uzupełniające u dużych zwierząt oraz, selektywnie, u naczelnych nie-ludzi (NHPs)20. Zmienność między laboratorium w technice chirurgicznej, czas trwania zagryzania, monitorowanie fizjologiczne i miary wyników podważa powtarzalność; Meta-badania podkreślają deficyty w randomizacji, zaślepianiu, planowaniu na podstawie próby oraz przejrzystym raportowaniu21,22. Ponadto dominacja młodych, zdrowych zwierząt oraz krótkoterminowe wyniki w badaniach przedklinicznych kontrastują z kliniczną rzeczywistością starzenia się, biologii specyficznej płci, obciążenia współistniejącymi oraz interakcjami immuno-mózg, które kształtują zarówno ostre urazy, jak i długoterminowy powrót do zdrowia. Aby poprawić rygor i wyrównanie translacyjne, rekomendacje Stroke Therapy Academic Industry Roundtable (STAIR) kładą nacisk na określoną moc, randomizację/zaślepianie, klinicznie istotne punkty końcowe, włączanie chorób współwystępujących, walidację wielomodelową oraz replikację międzylaboratoryjną; ARRIVE 2.0 dostarcza szczegółowe standardy raportowania. Konsekwentne wdrażanie tych praktyk jest niezbędne do wzmocnienia powtarzalności i ważności translacyjnej 23,24,25. W tym kontekście uzasadniona jest systematyczna synteza modeli zwierzęcych związanych z udarem. W niniejszym przeglądzie kategoryzujemy modele niedokrwienne, krwotoczne, specjalne oraz pomostowe; destylować kompromisy między modelami (konstruować ważność, powtarzalność i wyrównanie punktów końcowych); oraz zapewnić zwięzłe ramy wyboru modelu — wspierane przez ustrukturyzowaną tabelę porównawczą — które będą kierować wyborem modelu zgodnie z celami badawczymi i intencjami translacyjnymi.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Przegląd i perspektywa

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Podejścia metodologiczne do modelowania udaru

Rozwój metodologiczny modeli udaru na zwierzętach trwa już ponad pół wieku. Głównym celem jest jak najwierniejsze odtworzenie procesów patofizjologicznych ludzkiego udaru w warunkach eksperymentalnych, jednocześnie jasno określając kompromisy między ważnością konstrukcyjną, kontrolą eksperymentalną a dostosowaniem efektów końcowych. W praktyce, wybór modelu powinien rozpocząć się od scenariusza klinicznego i pierwotnego pomiaru, a następnie zbalanzować wykonalność i powtarzalność. W zależności od rodzaju udaru i scenariusza klinicznego, często używane modele można podzielić na cztery kategorie: modele niedokrwienne, modele krwotoczne, modele specjalnych warunków oraz modele dużych zwierząt i naczelnych. Tabela 1 podsumowuje atrybuty istotne dla celu (mechanizm, typowy profil zmian, zmienność i najlepsze zastosowania) w celu wsparcia wyboru modelu ukierunkowanego na konkretny cel.

Modele niedokrwiennego udaru mózgu

Modele niedokrwiennego udaru mózgu mają na celu odtworzenie utraty perfuzji mózgu spowodowanej LVO, oddalonymi zatorami, niedokrwieniem mikrokrążenia lub niedokrwieniem ogólnoustrojowym. Są one powszechnie stosowane do badania ewolucji strefy rdzenia infarktu i penumbry, uszkodzenia po reperfuzji, neuroochrony i regeneracji. Ponieważ żaden pojedynczy paradygmat nie obejmuje wszystkich cech klinicznych, kluczowy praktyczny podział dotyczy tego, czy model priorytetowo kładzie nacisk na kontrolę eksperymentalną (np. topografia i czas zajścia zmian) czy realizm zatorowy (np. biologia zakrzepu i rekanolizacji). Główne paradygmaty obejmują MCAO z wewnątrznaczyniowym włóknem, modele zatorowe, fototrombozę, zwężenie naczyń wywołane endoteliną-1 i globalne niedokrwienie/hipoksję-niedokrwienie (HI).

Zatkanie tętnicy środkowej mózgu

Wśród paradygmatów niedokrwia, wewnątrznaczyniowy model MCAO pozostaje najczęściej stosowanym i wszechstronnym technikom u małych zwierząt. Pierwotnie opisany przez Koizumiego i udoskonalony przez Longę, umożliwia trwałe lub przemijające ogniskowe niedokrwienie bez kraniektomii, czyniąc go praktycznym narzędziem do badań mechanyzmu i interwencyjnych9,10. W zasadzie, włókno przejściowo przerywa dopływ do MCA, a czas trwania zatkania służy jako główny czynnik regulacji ciężkości uszkodzenia i modelowania reperfuzji26,27. W konsekwencji, MCAO był kluczowym narzędziem do określenia dynamiki strefy rdzenia infarktu i penumbry oraz biologii uszkodzenia po reperfuzji, dostarczając często stosowany eksperymentalny odpowiednik ostrego LVO z następującą ponowną otwartością naczyń28.

Z biegiem czasu, udoskonalania koncentrowały się mniej na nowościach proceduralnych, a bardziej na kontroli jakości i powtarzalności. Monitorowanie fizjologiczne i potwierdzenie zmniejszenia przepływu krwi w mózgu podczas zatkania (oraz odzyskania po reperfuzji) są szeroko stosowane do wykrywania niepowodzenia technicznego i zmniejszania zmienności między zwierzętami29,30,31. Wśród laboratoriów, przejrzysta raportowanie kluczowych parametrów (cechy zwierząt, kontrola znieczulenia/temperatury, czas trwania zatkania i kryteria wykluczenia) jest często ważniejsze dla możliwości porównania niż niewielkie warianty proceduralne29,30,31.

Ograniczenia są równie dobrze rozpoznane. MCAO jest uzależnione od operatora i może prowadzić do uszkodzeń naczyniowych i powikłań krwotocznych, a uszkodzenia poza zasięgiem celu lub nieprawidłowa termofizjologia mogą zakłócić wyniki, jeśli nie są monitorowane32,33. Ponadto, anatomia naczyń bocznych i różnice między szczepami przyczyniają się do zmienności wielkości zmian nawet w pozornie identycznych warunkach34. Wreszcie, ponieważ MCAO jest mechanicznym zatkaniem, a nie zdarzeniem wywołanym przez zakrzep, nie jest optymalny do bezpośredniego testowania trombolizy lub strategii ukierunkowanych na zakrzep; paradygmaty zatorowe są lepiej przystosowane, gdy biologia zakrzepu i skuteczność rekanolizacji są priorytetowe35,36. Razem rzecz biorąc, MCAO jest najlepiej przystosowany do: (i) kontrolowanych badań nad ogniskową patobiologią niedokrwienia oraz (ii) oceny uzupełniającej neuroochrony w erze reperfuzji, pod warunkiem, że będą stosowane monitorowanie, wstępnie zdefiniowane kryteria oraz rygorystyczne raportowanie.

Modele zatorowe

Paradygmaty zatorowe odtwarzają klinicznie istotną sekwencję zatkania naczyniowego zakrzepu i samoistnej lub wywołanej terapią rekanolizacji, zapewniając wysoką wiarygodność zewn

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Wnioski

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Żaden pojedynczy model zwierzęcy nie jest w stanie oddać pełnej złożoności i heterogeniczności ludzkiego udaru. Zamiast tego każdy paradygmat oferuje odrębne kompromisy między trafnością konstruktu, powtarzalnością, wykonalnością i obciążeniem etycznym. W związku z tym główną zasadą jest wybór modelu dopasowany do scenariusza i punktu końcowego: badacze powinni rozpocząć od scenariusza klinicznego i głównego punktu końcowego (ostre uszkodzenie tkanek, biologia reperfuzji, rozszerzanie/toksyczność krwiaka, skurcz/DCI lub ...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Autorzy deklarują, że nie mają konfliktu interesów.

Podziękowania

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Prace te zostały wsparte przez Narodową Fundację Nauk Przyrodniczych Chin (nr 82260246), specjalne finansowanie szkolenia wysokiej klasy talentów z zakresu technologii medycznych w prowincji Yunnan (nr L-2025004) oraz specjalne finansowanie dla projektu zespołu talentów drugiego szpitala afiliowanego Kunming Medical University (nr RCTDXS-202307).

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Bibliografia

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Feigin, V. L., et al. Global, regional, and national burden of stroke and its risk factors, 1990-2021: A systematic analysis for the global burden of disease study 2021. Lancet Neurol. 23 (10), 973-1003 (2021).
  2. Feigin, V. L., et al. World stroke organization: Global stroke fact sheet 2025. Int J Stroke. 20 (2), 132-144 (2025).
  3. National Institute of Neurological Disorders and Stroke rt-PA Stroke Study Group. Tissue plasminogen activator for acute ischemic stroke. N Engl J Med. 333 (24), 1581-1587 (1995).
  4. Goyal, M., et al. Endovascular thrombectomy after large-vessel ischaemic stroke: A meta-analysis of individual patient data from five randomised trials. Lancet. 387 (10029), 1723-1731 (2016).
  5. O'collins, V. E., et al. 1,026 experimental treatments in acute stroke. Ann Neurol. 59 (3), 467-477 (2006).
  6. Fluri, F., Schuhmann, M. K., Kleinschnitz, C. Animal models of ischemic stroke and their application in clinical research. Drug Des Devel Ther. 9, 3445-3454 (2015).
  7. Macrae, I. M. Preclinical stroke research--advantages and disadvantages of the most common rodent models of focal ischaemia. Br J Pharmacol. 164 (4), 1062-1078 (2011).
  8. Pulsinelli, W. A., Buchan, A. M. The four-vessel occlusion rat model: Method for complete occlusion of vertebral arteries and control of collateral circulation. Stroke. 19 (7), 913-914 (1988).
  9. Koizumi, J. I., Yoshida, Y., Nakazawa, T., Ooneda, G. Experimental studies of ischemic brain edema. Jpn J Stroke. 8 (1), 1-8 (1986).
  10. Longa, E. Z., Weinstein, P. R., Carlson, S., Cummins, R. Reversible middle cerebral artery occlusion without craniectomy in rats. Stroke. 20 (1), 84-91 (1989).
  11. Zhang, R. L., Chopp, M., Zhang, Z. G., Jiang, Q., Ewing, J. R. A rat model of focal embolic cerebral ischemia. Brain Res. 766 (1-2), 83-92 (1997).
  12. Watson, B. D., Dietrich, W. D., Busto, R., Wachtel, M. S., Ginsberg, M. D. Induction of reproducible brain infarction by photochemically initiated thrombosis. Ann Neurol. 17 (5), 497-504 (1985).
  13. Tatlisumak, T., et al. A novel endothelin antagonist, a-127722, attenuates ischemic lesion size in rats with temporary middle cerebral artery occlusion. Stroke. 29 (4), 850-858 (1998).
  14. Rosenberg, G. A., Mun-Bryce, S., Wesley, M., Kornfeld, M. Collagenase-induced intracerebral hemorrhage in rats. Stroke. 21 (5), 801-807 (1990).
  15. Krafft, P. R., et al. Modeling intracerebral hemorrhage in mice: Injection of autologous blood or bacterial collagenase. J Vis Exp. (67), e4289(2012).
  16. Bederson, J. B., Germano, I. M., Guarino, L. Cortical blood flow and cerebral perfusion pressure in a new noncraniotomy model of subarachnoid hemorrhage in the rat. Stroke. 26 (6), 1086-1092 (1995).
  17. Sehba, F. A. Rat endovascular perforation model. Transl Stroke Res. 5 (6), 660-668 (2014).
  18. Rice, J. E., Vannucci, R. C. 3rd, Brierley, J. B. The influence of immaturity on hypoxic-ischemic brain damage in the rat. Ann Neurol. 9 (2), 131-141 (1981).
  19. Shibata, M., Ohtani, R., Ihara, M., Tomimoto, H. White matter lesions and glial activation in a novel mouse model of chronic cerebral hypoperfusion. Stroke. 35 (11), 2598-2603 (2004).
  20. Nowak, B., et al. Animal models of focal ischemic stroke: Brain size matters. Front Stroke. 2, 1165231(2023).
  21. Friedrich, J., Lindauer, U., Höllig, A. Procedural and methodological quality in preclinical stroke research-a cohort analysis of the rat mcao model comparing periods before and after the publication of stair/arrive. Front Neurol. 13, 834003(2022).
  22. Sena, E. S., Currie, G. L., McCann, S. K., Macleod, M. R., Howells, D. W. Systematic reviews and meta-analysis of preclinical studies: Why perform them and how to appraise them critically. J Cerebral Blood Flow Metab. 34 (5), 737-742 (2014).
  23. Fisher, M., et al. Update of the stroke therapy academic industry roundtable preclinical recommendations. Stroke. 40 (6), 2244-2250 (2009).
  24. Lyden, P., Buchan, A., Boltze, J., Fisher, M. Top priorities for cerebroprotective studies-a paradigm shift: Report from stair xi. Stroke. 52 (9), 3063-3071 (2021).
  25. Du Sert, P. N., et al. The arrive guidelines 2.0: Updated guidelines for reporting animal research. Plos Biol. 18 (7), e3000410(2020).
  26. Kuge, Y., Minematsu, K., Yamaguchi, T., Miyake, Y. Nylon monofilament for intraluminal middle cerebral artery occlusion in rats. Stroke. 26 (9), 1655-1657 (1995).
  27. Takano, K., Tatlisumak, T., Bergmann, A. G., Gibson, D. G., Fisher, M. 3rd Reproducibility and reliability of middle cerebral artery occlusion using a silicone-coated suture (koizumi) in rats. J Neurol Sci. 153 (1), 8-11 (1997).
  28. Li, Y., et al. Distinctions between the koizumi and zea longa methods for middle cerebral artery occlusion (mcao) model: A systematic review and meta-analysis of rodent data. Sci Rep. 13 (1), 10247(2023).
  29. Morris, G. P., et al. A comparative study of variables influencing ischemic injury in the longa and koizumi methods of intraluminal filament middle cerebral artery occlusion in mice. PLoS One. 11 (2), e0148503(2016).
  30. Ingberg, E., Dock, H., Theodorsson, E., Theodorsson, A., Ström, J. O. Effect of laser doppler flowmetry and occlusion time on outcome variability and mortality in rat middle cerebral artery occlusion: Inconclusive results. BMC Neurosci. 19 (1), 24(2018).
  31. Hedna, V. S., et al. Validity of laser doppler flowmetry in predicting outcome in murine intraluminal middle cerebral artery occlusion stroke. J Vasc Interv Neurol. 8 (3), 74-82 (2015).
  32. Schmid-Elsaesser, R., Zausinger, S., Hungerhuber, E., Baethmann, A., Reulen, H. J. A critical reevaluation of the intraluminal thread model of focal cerebral ischemia: Evidence of inadvertent premature reperfusion and subarachnoid hemorrhage in rats by laser-doppler flowmetry. Stroke. 29 (10), 2162-2170 (1998).
  33. Li, F., Omae, T., Fisher, M. Spontaneous hyperthermia and its mechanism in the intraluminal suture middle cerebral artery occlusion model of rats. Stroke. 30 (11), 2464-2470 (1999).
  34. Qian, B., Rudy, R. F., Cai, T., Du, R. Cerebral artery diameter in inbred mice varies as a function of strain. Front Neuroanat. 12, 10(2018).
  35. Chen, Y., et al. A novel mouse model of thromboembolic stroke. J Neurosci Meth. 256, 203-211 (2015).
  36. Sutherland, B. A., et al. The transient intraluminal filament middle cerebral artery occlusion model as a model of endovascular thrombectomy in stroke. J Cereb Blood Flow Metab. 36 (2), 363-369 (2016).
  37. Keister, A., et al. Review: Preclinical models of large-vessel occlusion stroke. Stroke Vasc Intervent Neurol. 4 (4), e000604(2024).
  38. Orset, C., et al. Mouse model of in situ thromboembolic stroke and reperfusion. Stroke. 38 (10), 2771-2778 (2007).
  39. Arkelius, K., Vivien, D., Orset, C., Ansar, S. Validation of a stroke model in rat compatible with rt-pa-induced thrombolysis: New hope for successful translation to the clinic. Sci Rep. 10 (1), 12191(2020).
  40. Ostrova, I. V., Kalabushev, S. N., Ryzhkov, I. A., Tsokolaeva, Z. I. A novel thromboplastin-based rat model of ischemic stroke. Brain Sci. 11 (11), 1475(2021).
  41. Lapchak, P. A. Translational stroke research using a rabbit embolic stroke model: A correlative analysis hypothesis for novel therapy development. Transl Stroke Res. 1 (2), 96-107 (2010).
  42. Yuki, I., et al. Impact of target artery size on the performance of aspiration thrombectomy: Insights from a swine model with real-time visualization. Am J Neuroradiol. 45 (6), 727-730 (2024).
  43. Golubczyk, D., et al. Endovascular model of ischemic stroke in swine guided by real-time mri. Sci Rep. 10 (1), 17318(2020).
  44. Van Der Wijk, A. E., et al. Extravasation of biodegradable microspheres in the rat brain. Drug Delivery. 30 (1), 2194579(2023).
  45. Shen, Y., et al. Histochemistry of microinfarcts in the mouse brain after injection of fluorescent microspheres into the common carotid artery. Neural Regenerat Res. 17 (4), 832-837 (2022).
  46. Xue, Y., et al. Quantification of hypoxic regions distant from occlusions in cerebral penetrating arteriole trees. PLOS Computat Biol. 18 (8), e1010166(2022).
  47. Joshi, S., et al. Ferric chloride-induced arterial thrombosis and sample collection for 3d electron microscopy analysis. J Vis Exp. (193), e64985(2023).
  48. Shim, Y., et al. Characterization of ferric chloride-induced arterial thrombosis model of mice and the role of red blood cells in thrombosis acceleration. Yonsei Med J. 62 (11), 1032-1041 (2021).
  49. Anagnostakou, V., et al. Preclinical modeling of mechanical thrombectomy. J Biomech. 130, 110894(2022).
  50. Knezic, A., Broughton, B. R. S., Widdop, R. E., Mccarthy, C. A. Optimising the photothrombotic model of stroke in the c57bi/6 and fvb/n strains of mouse. Sci Rep. 12 (1), 7598(2022).
  51. Conti, E., Carlini, N., Piccardi, B., Allegra Mascaro, A. L., Pavone, F. S. Photothrombotic middle cerebral artery occlusion in mice: A novel model of ischemic stroke. eneuro. 10 (2), 0244(2023).
  52. Taylor, Z. J., Shih, A. Y. Targeted occlusion of individual pial vessels of mouse cortex. Bio Protoc. 3 (17), e897(2013).
  53. Nishimura, N., Schaffer, C. B., Friedman, B., Lyden, P. D., Kleinfeld, D. Penetrating arterioles are a bottleneck in the perfusion of neocortex. Proc Natl Acad Sci. 104 (1), 365-370 (2007).
  54. Fukuda, M., Matsumura, T., Suda, T., Hirase, H. Depth-targeted intracortical microstroke by two-photon photothrombosis in rodent brain. Neurophotonics. 9 (2), 021910(2022).
  55. Wester, P., Watson, B. D., Prado, R., Dietrich, W. D. A photothrombotic ‘ring’ model of rat stroke-in-evolution displaying putative penumbral inversion. Stroke. 26 (3), 444-450 (1995).
  56. Qian, C., et al. Precise characterization of the penumbra revealed by mri: A modified photothrombotic stroke model study. PLOS ONE. 11 (4), e0153756(2016).
  57. Weber, R. Z., et al. Characterization of the blood brain barrier disruption in the photothrombotic stroke model. Front Physiol. 11, 586226(2020).
  58. Sommer, C. J. Ischemic stroke: Experimental models and reality. Acta Neuropathol. 133 (2), 245-261 (2017).
  59. Trotman-Lucas, M., Gibson, C. A review of experimental models of focal cerebral ischemia focusing on the middle cerebral artery occlusion model [version 2; peer review: 2 approved]. F1000Research. 10, 242(2021).
  60. Ansari, S., et al. Endothelin-1 induced middle cerebral artery occlusion model for ischemic stroke with laser doppler flowmetry guidance in rat. J Vis Exp. (72), e50014(2013).
  61. Sharkey, J., Butcher, S. P. Characterisation of an experimental model of stroke produced by intracerebral microinjection of endothelin-1 adjacent to the rat middle cerebral artery. J Neurosci Meth. 60 (1-2), 125-131 (1995).
  62. Nikolova, S., et al. Endothelin-1 induced mcao: Dose dependency of cerebral blood flow. J Neurosci Meth. 179 (1), 22-28 (2009).
  63. Frost, S. B., Barbay, S., Mumert, M. L., Stowe, A. M., Nudo, R. J. An animal model of capsular infarct: Endothelin-1 injections in the rat. Behav Brain Res. 169 (2), 206-211 (2006).
  64. Blasi, F., Whalen, M. J., Ayata, C. Lasting pure-motor deficits after focal posterior internal capsule white-matter infarcts in rats. J Cerebral Blood Flow Metabol. 35 (6), 977-984 (2015).
  65. Virley, D., et al. A new primate model of focal stroke: Endothelin-1—induced middle cerebral artery occlusion and reperfusion in the common marmoset. J Cerebral Blood Flow Metabol. 24 (1), 24-41 (2004).
  66. Horie, N., et al. Mouse model of focal cerebral ischemia using endothelin-1. J Neurosci Meth. 173 (2), 286-290 (2008).
  67. Roome, R. B., et al. A reproducible endothelin-1 model of forelimb motor cortex stroke in the mouse. J Neurosci Meth. 233, 34-44 (2014).
  68. Mosneag, I. -E., Flaherty, S. M., Wykes, R. C., Allan, S. M. Stroke and translational research – review of experimental models with a focus on awake ischaemic induction and anaesthesia. Neuroscience. 550, 89-101 (2024).
  69. Pulsinelli, W. A., Brierley, J. B. A new model of bilateral hemispheric ischemia in the unanesthetized rat. Stroke. 10 (3), 267-272 (1979).
  70. Deng, P., Xu, Z. C. Four-vessel occlusion model in rats. Springer Protoc Handbooks. , Humana Press. (2009).
  71. Raval, A., Chunli, L., Bingren, H. Rat model of global cerebral ischemia: The two-vessel occlusion (2vo) model of forebrain ischemia. Springer Protoc Handbooks. , Humana Press. (2009).
  72. Sanderson, T. H., Wider, J. M. 2-vessel occlusion/hypotension: A rat model of global brain ischemia. J Vis Exp. (76), e50173(2013).
  73. Onken, M., Berger, S., Kristian, T. Simple model of forebrain ischemia in mouse. J Neurosci Meth. 204 (2), 254-261 (2012).
  74. Kondo, T., et al. Transient forebrain ischemia induces impairment in cognitive performance prior to extensive neuronal cell death in mongolian gerbil (meriones unguiculatus). J Vet Sci. 19 (4), 505-511 (2018).
  75. Kim, H., et al. Protocol for establishing a global ischemia model using a 4-vessel occlusion in rats. STAR Protoc. 4 (4), 102630(2023).
  76. Du, X. Y., et al. Characteristics of circle of willis variations in the mongolian gerbil and a newly established ischemia-prone gerbil group. Ilar J. 52 (1), E1-E7 (2011).
  77. Vannucci, S. J., Back, S. A. The vannucci model of hypoxic-ischemic injury in the neonatal rodent: 40 years later. Dev Neurosci. 44 (4-5), 186-193 (2022).
  78. Lyu, H., et al. A new hypoxic ischemic encephalopathy model in neonatal rats. Heliyon. 7 (12), e08646(2021).
  79. Rutledge, C. A., et al. A novel ultrasound-guided mouse model of sudden cardiac arrest. PLoS One. 15 (12), e0237292(2020).
  80. Liu, H., et al. Novel modification of potassium chloride induced cardiac arrest model for aged mice. Aging Dis. 9 (1), 31-39 (2018).
  81. Perkins, G. D., et al. Improving outcomes after post–cardiac arrest brain injury: A scientific statement from the international liaison committee on resuscitation. Circulation. , (2024).
  82. Arnautovic, T., Sinha, S., Laptook, A. R. Neonatal hypoxic-ischemic encephalopathy and hypothermia treatment. Obstet Gynecol. 143 (1), 67-81 (2024).
  83. Maclellan, C. L., Silasi, G., Auriat, A. M., Colbourne, F. Rodent models of intracerebral hemorrhage. Stroke. 41 (10), S95-S98 (2010).
  84. Sansing, L. H., et al. Autologous blood injection to model spontaneous intracerebral hemorrhage in mice. J Vis Exp. (54), e2618(2011).
  85. Rynkowski, M. A., et al. A mouse model of intracerebral hemorrhage using autologous blood infusion. Nat Protoc. 3 (1), 122-128 (2008).
  86. Zhu, W., et al. Mouse models of intracerebral hemorrhage in ventricle, cortex, and hippocampus by injections of autologous blood or collagenase. PLOS ONE. 9 (5), e97423(2014).
  87. Beray-Berthat, V., et al. Long-term histological and behavioural characterisation of a collagenase-induced model of intracerebral haemorrhage in rats. J Neurosci Meth. 191 (2), 180-190 (2010).
  88. Bai, Q., et al. Intracerebral haemorrhage: From clinical settings to animal models. Stroke Vasc Neurol. 5 (4), 388-395 (2020).
  89. Leonardo, C. C., Robbins, S., Dore, S. Translating basic science research to clinical application: Models and strategies for intracerebral hemorrhage. Front Neurol. 3, 85(2012).
  90. Yang, S., et al. Effects of thrombin on neurogenesis after intracerebral hemorrhage. Stroke. 39 (7), 2079-2084 (2008).
  91. Ziai, W. C. Hematology and inflammatory signaling of intracerebral hemorrhage. Stroke. 44 (6_suppl_1), S74-S78 (2013).
  92. Kim, J. -T., Youn, D. H., Kim, B. J., Rhim, J. K., Jeon, J. P. Recent stem cell research on hemorrhagic stroke: An update. J Korean Neurosurg Soc. 65 (2), 161-172 (2022).
  93. Paiva, W. S., et al. Animal models for the study of intracranial hematomas (review). Exp Ther Med. 25 (1), 20(2023).
  94. Sugawara, T., Ayer, R., Jadhav, V., Zhang, J. H. A new grading system evaluating bleeding scale in filament perforation subarachnoid hemorrhage rat model. J Neurosci Meth. 167 (2), 327-334 (2008).
  95. Egashira, Y., Shishido, H., Hua, Y., Keep, R. F., Xi, G. New grading system based on magnetic resonance imaging in a mouse model of subarachnoid hemorrhage. Stroke. 46 (2), 582-584 (2015).
  96. Prunell, G. F., Mathiesen, T., Diemer, N. H., Svendgaard, N. A. Experimental subarachnoid hemorrhage: Subarachnoid blood volume, mortality rate, neuronal death, cerebral blood flow, and perfusion pressure in three different rat models. Neurosurgery. 52 (1), 165-175 (2003).
  97. Diwan, D., et al. Development and validation of a prechiasmatic mouse model of subarachnoid hemorrhage to measure long-term cognitive deficits. Adv Sci. 11 (46), 2403977(2024).
  98. Liu, S., et al. Endovascular perforation model for subarachnoid hemorrhage combined with magnetic resonance imaging (mri). J Vis Exp. (178), e63150(2021).
  99. Fürstenau, E., Lindauer, U., Koch, H., Höllig, A. Secondary ischemia assessment in murine and rat preclinical subarachnoid hemorrhage models: A systematic review. J Am Heart Assoc. 13 (5), e032694(2024).
  100. Mori, K., et al. Canine double hemorrhage model of experimental subarachnoid hemorrhage. Acta Neurochir Suppl. 120, 347-351 (2015).
  101. Burger, R., Bendszus, M., Vince, G. H., Roosen, K., Marmarou, A. A new reproducible model of an epidural mass lesion in rodents. Part i: Characterization by neurophysiological monitoring, magnetic resonance imaging, and histopathological analysis. J Neurosurg. 97 (6), 1410-1418 (2002).
  102. Bendszus, M., Burger, R., Vince, G. H., Solymosi, L. A reproducible model of an epidural mass lesion in rodents. Part ii: Characterization by in vivo magnetic resonance imaging. J Neurosurg. 97 (6), 1419-1423 (2002).
  103. Pan, A., et al. Experimental epidural hematoma causes cerebral infarction and activates neocortical glial and neuronal genesis in adult guinea pigs. J Neurosci Res. 91 (2), 249-261 (2013).
  104. Balikci, M., et al. Biochemical effects of experimental epidural hematoma on brain parenchyma of rats. Neurol Res. 30 (5), 450-456 (2008).
  105. Donaldson, R. I., Buchanan, O. J., Graham, T. L., Ross, J. D. Development of a novel epidural hemorrhage model in swine. Military Med. 188 (1-2), 20-26 (2021).
  106. Marklund, N., Hillered, L. Animal modelling of traumatic brain injury in preclinical drug development: Where do we go from here. Br J Pharmacol. 164 (4), 1207-1229 (2011).
  107. Gao, S., et al. Anti-hmgb1 mab therapy reduces epidural hematoma injury. Int J Mol Sci. 25 (11), 5889(2024).
  108. Khan, D., et al. Current mouse models of intracranial aneurysms: Analysis of pharmacological agents used to induce aneurysms and their impact on translational research. J Am Heart Assoc. 13 (3), e031811(2024).
  109. Nuki, Y., et al. Elastase-induced intracranial aneurysms in hypertensive mice. Hypertension. 54 (6), 1337-1344 (2009).
  110. Martinez, A. N., et al. Single-cell transcriptome analysis of the circle of willis in a mouse cerebral aneurysm model. Stroke. 53 (8), 2647-2657 (2022).
  111. Thompson, J. W., et al. In vivo cerebral aneurysm models. Neurosurg Focus. 47 (1), E20(2019).
  112. Cayron, A. F., Morel, S., Allémann, E., Bijlenga, P., Kwak, B. R. Imaging of intracranial aneurysms in animals: A systematic review of modalities. Neurosurg Rev. 46 (1), 56(2023).
  113. Han, C., et al. Novel experimental model of brain arteriovenous malformations using conditional alk1 gene deletion in transgenic mice. J Neurosurg. 137 (1), 163-174 (2022).
  114. Arthur, H. M., Roman, B. L. An update on preclinical models of hereditary haemorrhagic telangiectasia: Insights into disease mechanisms. Front Med. 9, 973964(2022).
  115. Jeong, J. Y., et al. Pathophysiology in brain arteriovenous malformations: Focus on endothelial dysfunctions and endothelial-to-mesenchymal transition. Biomedicines. 12 (8), 1795(2024).
  116. Ricciardelli, A. R., et al. From bench to bedside: Murine models of inherited and sporadic brain arteriovenous malformations. Angiogenesis. 28 (2), 15(2025).
  117. Ishikawa, H., et al. A brief overview of a mouse model of cerebral hypoperfusion by bilateral carotid artery stenosis. J Cereb Blood Flow Metab. 43 (2_suppl), 18-36 (2023).
  118. Kakae, M., Kawashita, A., Onogi, H., Nakagawa, T., Shirakawa, H. Bilateral common carotid artery stenosis in mice: A model of chronic cerebral hypoperfusion-induced vascular cognitive impairment. Bio Protoc. 14 (13), e5022(2024).
  119. Weng, Z., et al. A novel needle mouse model of vascular cognitive impairment and dementia. J Neurosci. 43 (44), 7351-7360 (2023).
  120. Washida, K., Hattori, Y., Ihara, M. Animal models of chronic cerebral hypoperfusion: From mouse to primate. Int J Mol Sci. 20 (24), 6176(2019).
  121. Abdou, H., et al. Characterizing brain perfusion in a swine model of raised intracranial pressure. J Surg Res. 278, 64-69 (2022).
  122. Ourednik, J., Ourednik, V., Ghosh, N., Snyder, E. Y. Protocol to optimize the rice-vannucci rat pup model of perinatal asphyxia to ensure predictable hypoxic-ischemic cerebral lesions. STAR Protoc. 5 (2), 103025(2024).
  123. Martinello, K. A., et al. Hypothermia is not therapeutic in a neonatal piglet model of inflammation-sensitized hypoxia–ischemia. Pediat Res. 91 (6), 1416-1427 (2022).
  124. He, M., et al. Animal models of epilepsy after ischemic stroke. Neuroscience. 576, 1-7 (2025).
  125. Mușat, M. I., Cătălin, B., Hadjiargyrou, M., Popa-Wagner, A., Greșiță, A. Advancing post-stroke depression research: Insights from murine models and behavioral analyses. Life (Basel). 14 (9), 1110(2024).
  126. Sasegbon, A., Cheng, I., Hamdy, S. The neurorehabilitation of post-stroke dysphagia: Physiology and pathophysiology. J Physiol. 603 (3), 617-634 (2025).
  127. Bandet, M. V., Winship, I. R. Aberrant cortical activity, functional connectivity, and neural assembly architecture after photothrombotic stroke in mice. eLife. 12, RP90080(2024).
  128. Brezzo, G., et al. Assessing post-stroke cognition in pre-clinical models: Lessons and recommendations from a multi-center study. J Cereb Blood Flow Metab. , (2025).
  129. Kaiser, E. E., West, F. D. Large animal ischemic stroke models: Replicating human stroke pathophysiology. Neural Regen Res. 15 (8), 1377-1387 (2020).
  130. Taha, A., et al. Comparison of large animal models for acute ischemic stroke: Which model to use. Stroke. 53 (4), 1411-1422 (2022).
  131. Herrmann, A. M., et al. Development of a routinely applicable imaging protocol for fast and precise middle cerebral artery occlusion assessment and perfusion deficit measure in an ovine stroke model: A case study. Front Neurol. 10, 1113(2019).
  132. Boltze, J., et al. Permanent middle cerebral artery occlusion in sheep: A novel large animal model of focal cerebral ischemia. J Cereb Blood Flow Metab. 28 (12), 1951-1964 (2008).
  133. Wells, A. J., et al. A surgical model of permanent and transient middle cerebral artery stroke in the sheep. PLoS One. 7 (7), e42157(2012).
  134. Wells, A. J., et al. Elevated intracranial pressure and cerebral edema following permanent mca occlusion in an ovine model. PLoS One. 10 (6), e0130512(2015).
  135. Castaño, C., et al. Establishment of a reproducible and minimally invasive ischemic stroke model in swine. JCI Insight. 8 (8), e163398(2023).
  136. Jadhav, V., Sugawara, T., Zhang, J., Jacobson, P., Obenaus, A. Magnetic resonance imaging detects and predicts early brain injury after subarachnoid hemorrhage in a canine experimental model. J Neurotrauma. 25 (9), 1099-1106 (2008).
  137. Wu, D., et al. Endovascular ischemic stroke models of adult rhesus monkeys: A comparison of two endovascular methods. Sci Rep. 6 (1), 31608(2016).
  138. Lin, X., et al. Nonhuman primate models of ischemic stroke and neurological evaluation after stroke. J Neurosci Meth. 376, 109611(2022).
  139. Li, G., et al. Comprehensive assessment of ischemic stroke in nonhuman primates: Neuroimaging, behavioral, and serum proteomic analysis. ACS Chem Neurosci. 15 (7), 1548-1559 (2024).
  140. Nashed, J. Y., Gale, D. J., Gallivan, J. P., Cook, D. J. Changes in cortical manifold structure following stroke and its relation to behavioral recovery in the male macaque. Nat Comm. 15 (1), 9005(2024).
  141. Lemon, R. N. Applying the 3rs to neuroscience research involving nonhuman primates. Drug Disc Today. 23 (9), 1574-1577 (2018).
  142. Basso, M. A., et al. The future of nonhuman primate neuroscience: Peril or possibilities. J Neurosci. 44 (37), e1458242024(2024).
  143. Cheng, W., Zhao, Q., Li, C., Xu, Y. Neuroinflammation and brain-peripheral interaction in ischemic stroke: A narrative review. Front Immunol. 13, 1080737(2022).
  144. Ahnstedt, H., et al. Sex differences in t cell immune responses, gut permeability and outcome after ischemic stroke in aged mice. Brain Behav Immun. 87, 556-567 (2020).
  145. Kostas-Polston, E. A., et al. Ensuring accountability for consideration of sex as a biological variable in research. Nurs Outlook. 72 (4), 102194(2024).
  146. Percie Du Sert, N., et al. Reporting animal research: Explanation and elaboration for the arrive guidelines 2.0. PLOS Biol. 18 (7), e3000411(2020).
  147. Macleod, M. R., et al. Risk of bias in reports of in vivo research: A focus for improvement. PLOS Biol. 13 (10), e1002273(2015).
  148. Corbett, D., et al. Enhancing the alignment of the preclinical and clinical stroke recovery research pipeline: Consensus-based core recommendations from the stroke recovery and rehabilitation roundtable translational working group. Int J Stroke. 12 (5), 462-471 (2017).
  149. Barber, P. A., Hoyte, L., Colbourne, F., Buchan, A. M. Temperature-regulated model of focal ischemia in the mouse. Stroke. 35 (7), 1720-1725 (2004).
  150. Archer, D. P., Walker, A. M., Mccann, S. K., Moser, J. J., Appireddy, R. M. Anesthetic neuroprotection in experimental stroke in rodents: A systematic review and meta-analysis. Anesthesiology. 126 (4), 653-665 (2017).
  151. Oh, S. S., Narver, H. L. Mouse and rat anesthesia and analgesia. Curr Protoc. 4 (2), e995(2024).
  152. Denorme, F., Portier, I., Kosaka, Y., Campbell, R. A. Hyperglycemia exacerbates ischemic stroke outcome independent of platelet glucose uptake. J Thrombosis Haemostasis. 19 (2), 536-546 (2021).
  153. Liu, S., Zhen, G., Meloni, B. P., Campbell, K., Winn, H. R. Rodent stroke model guidelines for preclinical stroke trials (1st edition). J Exp Stroke Transl Med. 2 (2), 2-27 (2009).
  154. Sena, E. S., van der Worp, H. B., Bath, P. M. W., Howells, D. W., Macleod, M. R. Publication bias in reports of animal stroke studies leads to major overstatement of efficacy. PLoS Biol. 8 (3), e1000344(2010).
  155. Peterson, N. C., Nunamaker, E. A., Turner, P. V. To treat or not to treat: The effects of pain on experimental parameters. Comp Med. 67 (6), 469-482 (2017).
  156. Balkaya, M., Cho, S. Optimizing functional outcome endpoints for stroke recovery studies. J Cereb Blood Flow Metab. 39 (12), 2323-2342 (2019).
  157. Pohl, J., et al. Consensus-based core set of outcome measures for clinical motor rehabilitation after stroke—a delphi study. Front Neurol. 11, 875(2020).
  158. Ayata, C., et al. Preclinical ischemic stroke multicenter (prism) trials collective statement: Opportunities, challenges, and recommendations for a new era. Stroke. 57 (1), e12-e40 (2026).
  159. Llovera, G., et al. Results of a preclinical randomized controlled multicenter trial (prct): Anti-cd49d treatment for acute brain ischemia. Sci Transl Med. 7 (299), 299ra121-299ra121 (2015).
  160. Zhang, T., et al. Humanized mouse model reveals t cell anxa2 as a potential therapeutic target in ischemic stroke. iScience. 28 (5), 112302(2025).
  161. Giorgi, C., Castelli, V., D'angelo, M., Cimini, A. Organoids modeling stroke in a petri dish. Biomedicines. 12 (4), (2024).
  162. Kistemaker, L., Van Bodegraven, E. J., De Vries, H. E., Hol, E. M. Vascularized human brain organoids: Current possibilities and prospects. Trends Biotechnol. 43 (6), 1275-1285 (2025).
  163. Bryniarska-Kubiak, N., et al. Oxygen-glucose deprivation in organotypic hippocampal cultures leads to cytoskeleton rearrangement and immune activation: Link to the potential pathomechanism of ischaemic stroke. Cells. 12 (11), (2023).
  164. Granata, A. Functional genomics in stroke: Current and future applications of ipscs and gene editing to dissect the function of risk variants. BMC Cardiovasc Disord. 23 (1), 223(2023).
  165. Bonowicz, K., et al. Crispr-cas9 in cardiovascular medicine: Unlocking new potential for treatment. Cells. 14 (2), (2025).
  166. Al-Thani, M., et al. A novel human ipsc model of col4a1/a2 small vessel disease unveils a key pathogenic role of matrix metalloproteinases. Stem Cell Rep. 18 (12), 2386-2399 (2023).
  167. Cheng, Z., Zhu, H., Feng, S., Zhang, Y., Xiong, X. Cross-species multi-omics analysis reveals myeloid-driven endothelial oxidative stress in ischemic stroke. Front Biosci (Landmark Ed). 30 (4), 37429(2025).
  168. Koska, İ, Selver, A. Artificial intelligence in stroke imaging: A comprehensive review. Eurasian J Med. 55 (1), 91-97 (2023).
  169. Weber, R. Z., Mulders, G., Kaiser, J., Tackenberg, C., Rust, R. Deep learning-based behavioral profiling of rodent stroke recovery. BMC Biol. 20 (1), 232(2022).
  170. Knab, F., et al. Prediction of stroke outcome in mice based on noninvasive mri and behavioral testing. Stroke. 54 (11), 2895-2905 (2023).

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Przedruki i uprawnienia

Poproś o pozwolenie na ponowne wykorzystanie tekstu lub ilustracji tego artykułu JoVE

Poproś o pozwolenie

Tagi

Stroke Animal ModelsIschemic Stroke ModelsHemorrhagic Stroke ModelsMiddle Cerebral Artery OcclusionPhotothrombosis ModelNeuroprotection StrategiesBlood Brain BarrierPreclinical Stroke ResearchTranslational Stroke ResearchCerebrovascular Disease Models

Powiązane artykuły