Artykuł metodologiczny

Rutynowa intraoperacyjna limfografia fluorescencyjna z użyciem indocyjaniny Green podczas przełyku: studium wykonalności

DOI:

10.3791/70160

13 marca 2026

W tym artykule

Podsumowanie

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Niniejszy artykuł opisuje wewnątrzoperacyjną limfografię fluorescencyjną z użyciem zielonego indocyjaniny podczas przełyku w celu wizualizacji przewodu piersiowego (okręgów pobocznych).

Streszczenie

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

W przypadku raka przełyku resekowalnego główne ośrodki onkologiczne zalecają przełyk przełykowy przełyk przezklatkowy, który obejmuje en-bloc limfadenektomię śródpiersiową, obejmującą resekcję przewodu piersiowego. Jednak resekcja przewódu piersiowego może zwiększać ryzyko pooperacyjnego wycieku chyla z powodu urazu przewodu głównego, bocznych lub bocznych gałęzi. Wewnątrzoperacyjna, w czasie rzeczywistym fluorescencyjna limfografia z użyciem zielonej indocyjaniny (ICG) ujawniła się jako obiecująca technika poprawiająca wizualizację przewodu piersiowego, bocznych gałęzi i ośrodków bocznych podczas przełyku. Celem tego badania jest zbadanie wykonalności rutynowej limfografii fluorescencyjnej z użyciem ICG podczas przełyku w leczeniu nowotworów, aby dokładnie zobrazować przewód piersiowy i jego elementy boczne.

W przypadku limfografii fluorescencyjnej podaje się 2 mL roztworu ICG (2,5 mg ICG/mL) obustronnie w węzłach chłonnych pachwinowych, przed fazą klatki piersiowej przełyku lub do korzenia krezkowego jelita cienkiego tuż przed zamknięciem jamy brzusznej. Do oceny fluorescencyjnej limfografii używa się kamery bliskiej podczerwieni (NIR). W wizualizacji fluorescencji przewód piersiowy jest podwójnie przycięty dystalnie na poziomie łuku żyły azygos, przycięty blisko 4-5 cm powyżej poziomu przepony i przecięty en bloc z okazem przełyku. Dodatkowe podcięcie lub ligacja szowa wykonywana jest w przypadku przecieku chyle z głównego przewodu lub pozostałych bocznych przewódów/bocznych gałęzi.

Fluorescencyjną limfografię wykonano u 20 pacjentów poddawanych przełyku rakowi przełyku. Przewód piersiowy został pomyślnie zwizualizowany u 18 pacjentów (90%). U 67% pacjentów, u których wykonano pomyślną fluorescencyjną limfografię, doprowadziło to do zmiany sposobu leczenia, na przykład umieszczenia dodatkowych klipsów. Limfografia fluorescencyjna z użyciem ICG pomaga wizualizować przewód piersiowy i jego elementy boczne oraz wykrywać wyciek chyle wewnątrzoperacyjnie, co często prowadzi do zmiany sposobu leczenia operacyjnego. Potrzebny jest dalszy rozwój badania, aby udoskonalić technikę i potwierdzić jej zastosowanie w zapobieganiu wycieku chylu pooperacyjnego.

Wprowadzenie

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Leczenie lecznicze raka przełyku resekowalnego zazwyczaj obejmuje neoadjuwantową chemioterapię lub chemoradioterapię, a następnie przełyk1. Często stosowana metoda leczenia neoadiuwantantów polega na pięciu cyklach karboplatyny i paklitakselu z jednoczesną radioterapią (41,4 Gy w 23 frakcjach), a następnie przełykiem po 6-10 tygodniach interwału. Radykalna transthorakowa przełyk w naszym centrum rutynowo obejmuje en-bloc resekcję przewodu piersiowego dla odpowiedniej limfadenektomii śródpiersiowej, uzasadnioną anatomiczną lokalizacją przewodu między żyłą azygostyczną a zstępującą aortą piersiową, która posiada zarówno węzły chłonne, jak i przerzuty do węzłów chłonnych 2,3,4.

Funkcja przewodu piersiowego obejmuje transport limfy z lewej i prawej strony ciała poniżej przepony z powrotem do krążenia, przez połączenie lewej żyły podobojczykowej i wewnętrznej szyjnej, żyły podobojczykowej lub żyły szyjnej wewnętrznej 5,6. Jedną z funkcji układu limfatycznego jest transport chyle (płynu limfatycznego zawierającego chylomikrony z przewodu pokarmowego, które przenoszą białka, białe krwinki (głównie limfocyty), witaminy rozpuszczalne w tłuszczach, glukozę i produkty trawienne) z przewodu pokarmowego do układu krążenia.

Występują duże różnice w anatomii przewodu piersiowego. Częstotliwość występowania wariantów fizjologicznych oraz obecność kilku bocznych gałęzi i ubocznych sprawiają, że przewód jest podatny na niezamierzone uszkodzenia podczas operacji, co może prowadzić do wycieku chyle pooperacyjnego7. Przewód piersiowy jest podatny na urazy podczas przełyku ogólnie, a resekcja przewodu piersiowego historycznie wiązała się z wyższym ryzykiem pooperacyjnego wycieku chylu8. Wyciek chyle to częste powikłanie po przełyku, a częste występowanie w literaturze waha się od 2% do 21%, ze względu na stosowanie różnych definicji oraz dużą różnorodność technik chirurgicznych i zakres limfadenektomii 9,10,11,12. Występowanie wycieku chylu wiąże się z nieprzyjemnymi ograniczeniami dietetycznymi, przedłużonym drenażem klatki piersiowej, ponownymi interwencjami oraz przedłużonym hospitalizacją11,12. Ostatnio stwierdzono, że wyciek chyle wiąże się również ze zmniejszonym całkowitym przeżyciem, prawdopodobnie w wyniku hiponatremii, hiperbiałkemii, zaburzeń odżywiania i obniżonej funkcji odpornościowej13.

Aby osiągnąć maksymalne bezpieczeństwo onkologiczne przy odpowiedniej mediastinalnej chłonności i zapobiec niezamierzonym urazom prowadzącym do wycieku chyli pooperacyjnej, niezbędna jest odpowiednia czujność podczas resekcji przewodu piersiowego i jego bocznych gałęzi. Wykrywanie wycieku chyle w trakcie operacji może być trudne, ponieważ pacjenci poddawani ezofagektomii są głodzeni, co prowadzi do niskiego przepływu chyle i mniejszej średnicy przewódu piersiowego. Dlatego wyciek chyle zwykle wykrywa się w 2. lub 3. dniu po operacji, gdy karmienie jelitowe jest nasilone. Zieleń indocyjanina (ICG) to nietoksyczny barwnik, który silnie wiąże się z białkami transportowanymi przez układ limfatyczny i może być widoczny przy użyciu światła bliskiego podczerwieni. Zapewnia to ulepszenie przewodów w czasie rzeczywistym z kontrolą anatomii pod kierunkiem fluorescencji oraz wykrywaniem urazów wewnątrzoperacyjnych, które można kontrolować bezpośrednio. Poprawa rozpoznania przewodu piersiowego, bocznych gałęzi i ośrodków ubocznych, a także wykrycie możliwego wycieku chylu za pomocą fluorescencyjnej limfografii w czasie rzeczywistym za pomocą ICG, może prowadzić do zmniejszenia wskaźnika wycieku chyle po operacji14.

Identyfikacja przewódów piersiowych za pomocą ICG została wcześniej uznana za wykonalną, skuteczną i niewymagającą czasowo podczas ponownych operacji wycieku chyla po operacjach płuc i przełyku torakoskopicznych, podczas limfadenektomii szyjnej w przypadku raka tarczycy lub czerniaka oraz podczas minimalnie inwazyjnej ezofagektomii bez rutynowej resekcji przewódu piersiowego w przypadku raka płaskonabłonkowego 15,16,17,18 . Czy rutynowe stosowanie podczas przełyku z regularną resekcją przewodu piersiowego jest skuteczne, pozostaje nieznane. Dlatego w tym badaniu pilotażowym głównym celem jest zbadanie wykonalności rutynowej intraoperacyjnej limfografii fluorescencyjnej podczas przełyku przełyku, z rutynową resekcją przewodu piersiowego w celu wizualizacji przewodu piersiowego, jego bocznych elementów oraz zmian anatomicznych. Po drugie, zostanie zbadane, czy ta wizualizacja prowadzi do zmiany w leczeniu operacyjnym (np. dodatkowe przycinanie jako kolejne leczenie wycieku wewnątrzoperacyjnego). Ostatecznym celem jest zmniejszenie częstości wycieku chyla pooperacyjnego po ezofagektomii i jej klinicznych skutkach (przedłużony drenaż klatki piersiowej, przedłużona hospitalizacja, konieczność dodatkowych interwencji, ograniczenia dietetyczne oraz skrócone przeżycie).

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Protokół

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Wszyscy pacjenci wyrazili pisemną świadomą zgodę na wykorzystanie swoich danych klinicznych, zgodnie z Komitetem Etyki Badań Medycznych i Badań Ludzkich. Protokół jest w pełni opracowany w kontekście całkowitej, minimalnie inwazyjnej ezofagektomii. Kolejność kroków protokołu zależy od procedury: Ivor Lewis (dwustopniowa przełykowa; najpierw faza brzuszna, następnie faza klatki piersiowej) kontra przełyk McKeown (trzystopniowa przełykowa przełyk; najpierw faza klatki piersiowej, następnie faza brzuszna i faza szyjna). Przede wszystkim protokół jest napisany w kontekście przełyku Ivora Lewisa; w NOTATCE po kroku 11 opisano sekwencję oraz dodatkowe kroki przełyku McKeowna. W przełyku Ivor Lewisa ICG podaje się albo na końcu fazy brzusznej, u podstawy krezki jelita cienkiego, albo USG prowadzone obustronnie w węzłach chłonnych pachwinowych przed rozpoczęciem fazy klatki piersiowej. W przełyku McKeown ICG podaje się USG pod kierunkiem obustronnym w węzłach chłonnych pachwinowych na początku operacji.

1. Pacjenci

  1. Aby kwalifikować się do tego badania, należy upewnić się, że pacjent spełnia wszystkie następujące kryteria włączenia: wiek 18 lat i więcej; poddawanie się całkowitej, minimalnie inwazyjnej lub robotycznie wspomaganej ezofagektomii Ivora Lewisa lub McKeowna; dla raka resekowalnego (cT1-4a, N0-3, M0) przełyku lub połączenia przewodowo-przełykowego.
  2. Ustal następujące kryteria wykluczenia: alergia na ICG, jodek lub jodek sodu; nadczynność tarczycy lub łagodny guz tarczycy; badanie tarczycy za pomocą radioaktywnego jodku <1 tydzień; Wcześniejsza historia chłonno-denenektomii pachwinowej.

2. Protokół znieczulenia

  1. Przed operacją należy poddać pacjentowi znieczulenie ogólne i regionalne, stosując znieczulenie zewnątrzoponowe klatki piersiowej (kroki 2.1.1-2.1.5) lub cewnik okręgowy (kroki 2.1.6-2.1.10).
    1. Wykonaj założenie cewnika zewnątrzoponowego na poziomie międzykręgowym między T5 a T8, stosując technikę utraty oporu.
    2. W ciągu pierwszej godziny po indukcji podaj 5-10 ml bupiwakainy 0,25% bolusa epidualnego.
    3. Następnie rozpocząć ciągłą anestezję zewnątrzoponową z bupivakainą 0,125% i sufentanylem 0,5 μg/mL i dawkować dawkę do komfortu pacjenta.
    4. Zapewnij leki ucieczkowe zgodnie z lokalnym protokołem instytucjonalnym.
    5. Usuń cewnik zewnątrzoponowy trzeciego dnia po operacji.
    6. Umieść przestrzeń przykręgową po obu stronach kanału kręgowego i umieść cewnik w prawej przestrzeni podopłucnowej na poziomie T4-5, przy bezpośrednim widzeniu torakoskopowym igłą Tuohy o sile 18-19 G.
    7. Na początku torakoskopii podaj bolus 20 mL bupiwakainy 0,125%.
    8. Kontynuuj parawertebralne zmartwienie na bupivakainie 0,125% 8-12 mL/h w zależności od masy ciała i stopniowo dostosowuj do komfortu pacjenta.
    9. Dodatkowo podawaj dożylne środki przeciwbólowe kontrolowane przez pacjenta zgodnie z lokalnym protokołem ośrodka.
    10. Usunięcie cewnika przymiędzykręgowego trzeciego dnia po operacji.
  2. Intubuj pacjenta rurką endobronchialną o podwójnym lumenie (Ivor Lewis) lub rurką jednolumenową (Ivor Lewis) lub bez (McKeown) blokera oskrzeli.

3. Protokół antybiotykowy

  1. Podaj antybiotyki profilaktyczne 1 godzinę przed rozpoczęciem operacji (1000 mg cefazoliny i 500 mg metronidazolu dożylnie; powtórz po 6 godzinach operacji).

4. Faza brzuszna podczas przełyku

  1. Ułóż pacjenta w pozycji leżącej. Dezynfekować i sterylnie wystawić.
  2. Włóż 12 mm trokar i kamerę nadpębkowo.
  3. Stwórz zapalenie płuc z maksymalnym ciśnieniem 10-12 mmHgCO2.
  4. Wprowadzić jeden 10 mm i dwa 5 mm trokary oraz laparoskopowy retraktor wątroby Nathansona.
  5. Otwórz więzadło wątrobowe. Uruchomić złącze przełykowe w przerwie, w tym stacje lewego i prawego węzła chłonnego przyserdziowego.
  6. Wykonaj limfadenektomię przez więzadło wątrobowo-naczyniowe, wzdłuż więzadła wątrobowo-naczyniowego, tętnicy wspólnej, tętnicy śledzionowej, lewej żylączki żołądkowej oraz wokół celiakii, z podwiązaniem żyły pobożnej i lewej tętnicy żołądkowej.
  7. Mobilizuj większą krzywiznę i zachowaj prawą tętnicę i żyłę żołądkowo-epiploiczną.
  8. Podwiązać lewą tętnicę i żyłę gastroepiploiczną oraz przeciąć krótkie tętnice żołądkowe. Szkieletyzuj mniejszą krzywiznę na poziomie obwódu i zachowaj prawą tętnicę żołądkową.
  9. Stwórz przewod żołądkowy, zszywając podłużnie od obryku w kierunku dna dna, tworząc rurkę żołądkową o szerokości 3-4 cm. Przeszyj linie zszywek przerwanymi, chłonnymi, plecionymi szwami 3-0.
  10. Zrób żerowaną jejunostomię 20 cm dalej od Treitza. Przymocuj jej unostomię do ściany brzucha za pomocą szwów w woreczku, używając wchłaniających plecionych szwów 3-0, a do skóry za pomocą niechłonnych szwów plecionych. Załóż dwa szwy antyrotacyjne.
  11. Sprawdź sondę żołądkową, aby nie wykazać przecieku i dobrą przechodność.
    UWAGA: W przypadku ezofagektomii Ivora Lewisa z podaniem korzenia krezkowego, protokół kontynuuje się w sekcjach 5 i 6; Sekcja 7 jest pomijana. W przypadku przełyku Ivor Lewis z podaniem ICG węzłów chłonnych pachwinowych, sekcja 5 jest pomijana, a protokół kontynuowany jest sekcjami 6 i 7.

5. Podanie ICG w rdzeniu krezkowym

  1. Rozpuścić 25 mg ICG w 10 mL wody sterylnej, otrzymując roztwór 2,5 mg ICG na mL.
  2. Wstrzyknąć 2 mL (5 mg) do korzenia krezkowego na poziomie planowanego miejsca jejunostomii.

6. Koniec fazy brzusznej

  1. Usuń trokary i retraktor wątroby pod bezpośrednią wizualizacją.
  2. W przypadku przełyku Ivor Lewis bliskie rany: powięzi z chłonnymi, warkoczowymi szwami 0 oraz skórą z doskórnie syntetycznymi, wchłaniającymi monofilamentowymi szwami 4-0.

7. Administracja pachwinowa ICG

  1. Rozpuszcz 25 mg ICG w 10 mL wody sterylnej, otrzymując roztwór o stężeniu 2,5 mg ICG/mL. Podziel to na dwie strzykawki po 2 mL, otrzymując dwie strzykawki po 2 mL zawierające po 5 mg ICG każda.
  2. Użyj USG jako wskazówki, aby zlokalizować powierzchowny węzeł chłonny pachwinowy po obu stronach. Podaj bolus 2 mL roztworu ICG (2,5 mg ICG/mL, łącznie 5 mg) przeskórnie do prawego węzła pachwinowego oraz lewego węzła powierzchownego pachwinowego pod kierunkiem USG.

8. Faza klatki piersiowej przełyku

  1. Obróć pacjenta do pozycji na brzuchu. Dezynfekować i sterylnie wystawić.
  2. Otwarte wprowadzenie na poziomie tylnej linii pachowej, czyli na końcu łopatki, z 12 mm trokarem i aparatem kamerowym. Stwórz odmę odmową po prawej stronie z maksymalnym ciśnieniemCO2 6-8 mmHg.
  3. Włóż dwa trockary 12 mm i jeden trokar 5 mm wzdłuż łopatki oraz jeszcze jeden dystalnie (przestrzeń międzyżebrowa 8 lub 9).
  4. Przecinajcie prawe więzadło płucne. Odsłonić osierdzie, od prawej żyły płucnej do lewej.
  5. Przeanalizuj tę przerwę. Wykonaj rozwarstwienie węzłów chłonnych podkarinalnych.
  6. Wyizoluj i podwiązuj łuk żyły azygos za pomocą zszywacza naczyniowego.
  7. Wykonaj rozwarstwienie dolnego węzła przytchawicowego po lewej i prawej stronie oraz w oknie aortopulmonalnym.

9. Resekcja przewodów piersiowych

  1. Do oceny fluorescencji limfatografii używaj kamery bliskiej podczerwieni (NIR). Oceń fluorescencyjne wzmocnienie przewodu piersiowego przez opłucną.
  2. Otwórz opłucną śródpiersiową wzdłuż żyły azygos. Odizoluj przewód piersiowy obwodowo, na wysokości łuku żyły azygos.
  3. W wizualizacji fluorescencji podwójnie przypięć przewód piersiowy na poziomie łuku żyły azygos (Ivor Lewis) lub na poziomie wlotu klatki piersiowej (McKeown) za pomocą dwóch metalowych klipsów. Przetnij przewód piersiowy między klipsami.
  4. W ramach wizualizacji fluorescencji rozciąć przewód piersiowy en bloc z okazem przełyku, od tkanki pomiędzy żyłą azygostyczną a aortą zstępującą klatki piersiowej w kierunku bliższego, aż do kilku centymetrów powyżej poziomu przepony.
  5. W wizualizacji fluorescencji przyciąć przewód piersiowy 4-5 cm powyżej poziomu membrany metalowym klipsem. Przetnij przewód piersiowy między klipsami.
    UWAGA: Przewód piersiowy jest teraz przecięty w całości razem z okazem przełyku, a aorta zstępująca jest całkowicie odsłonięta.
  6. Po 10 i 30 minutach po zakończeniu resekcji przewódu piersiowego sprawdź obszar operacyjny pod kątem wycieku chyle. Jeśli wykryje się wyciek chyle, przytnij również przeciekające przewody/naczynia boczne.

10. Anastomoza

  1. Przeciągnij rurkę żołądkową do klatki piersiowej.
  2. Przeciąć przełyk na wysokości łuku żyły azygos. Zwińcie próbkę w ranie.
  3. Całkowicie rozciąć preparat od przewodu żołądkowego zszywaczem liniowym.
  4. Włóż kowadło (25 lub 29 mm) do kikuta przełyku za pomocą szwu na szwie typu torebka. Zmierz długość przewodu żołądkowego.
  5. Włóż zszywacz do przewodu żołądkowego i przebij ścianę przewodu żołądkowego końcówką zszywacza. Wyrównaj części zszywacza i zamknij zszywacz. Odpal zszywacz i sprawdź pączki. Zamknij przewod żołądkowy zszywaczem liniowym.
  6. Zaznacz okaz. Przynieś próbkę patologowi.
  7. Przeszyj krzyżowania zszywaczy przerywanym, absorbowalnym szwem plecionym 3-0.
  8. Umocuj czubek przewodu żołądkowego poniżej płata opłucnowego. Wykonaj omentoplastykę.

11. Koniec torakozoskopii

  1. Po torakoskopii należy umieścić pojedynczą silikonową francuską drenę klatkową 27 do prawej jamy opłucnej do odpływu pozostałego CO2 oraz sondę Jacksona-Pratta do drenażu płynów pooperacyjnych.
  2. Usuń trokary pod bezpośrednią wizualizacją.
  3. Bliskie rany: powięzi z chłonnymi, plecionymi szwami 0 oraz skóra z doskórnymi, syntetycznymi, wchłaniającymi monofilamentowymi szwami 4-0.
    UWAGA: W przypadku przełyku McKeowna, po sekcji 3 protokół kontynuuje się w sekcjach 7, 8 i 9. W fazie klatki piersiowej wykonywana jest dodatkowa limfadenektomia wyższych stacji węzłów chłonnych przytchawicowych. Następnie protokół jest kontynuowany w sekcjach 11, 4 i 6. Po fazie brzusznej protokół kontynuuje się sekcją 12, która ma zastosowanie tylko do przełyku McKeowna, czyli nacięcia szyjnego szyjki w celu anastomozy. Sekcje 5 i 10 protokołu Ivor Lewis nie mają zastosowania do przełyku McKeowna.

12. Nacięcie szyjki szyjnej w celu zenastomozy (w przypadku przełyku McKeowna)

  1. Wykonaj nacięcie lewej szyjki macicy. Uruchomić przełyk szyjny, biorąc pod uwagę lokalizację nawracających nerwów krtani po obu stronach.
  2. Podziel przełyk. Wykonaj małą laparotomię. Włóż osłonę rany. Zwińcie próbkę w ranie.
  3. Całkowicie rozciąć preparat od przewodu żołądkowego zszywaczem liniowym. Zaznacz okaz. Przynieś próbkę patologowi.
  4. Zszyj skrzyżowania linii zszywki przerwanymi szwami PDS 3-0.
  5. Przenieś przewod żołądkowy do okolicy szyjnej przedkręgowo przedkręgowo. Stworzenie anastomozy za pomocą trzech zszywaczy (zmodyfikowana technika kapusty). Umieść sondę nosowo-żołądkową w kanale żołądkowym.
  6. Bliskie rany szyjne: musculus platysma z chłonnymi, plecionymi szwami 3-0 oraz skóra z doskórnie syntetycznymi, wchłaniającymi monofilamentowymi szwami 4-0.
  7. Zrób żerowaną jejunostomię 20 cm dalej od Treitza. Przymocuj jejunostomię do ściany brzucha za pomocą szwów w woreczku, używając chłonnych plecionych szwów 3-0, a do skóry za pomocą nieresorbowalnych szwów plecionych.
  8. Załóż dwa szwy antyrotacyjne.
  9. Sprawdź sondę żołądkową, aby nie wykazać przecieku i dobrą przechodność.
  10. Bliskie rany brzucha: powięź z chłonnymi, warkoczowymi szwami 0 oraz skóra z doskórnie syntetycznymi, wchłanianymi monofilamentowymi szwami 4-0.

13. Opieka pooperacyjna i monitorowanie

  1. Detubuj pacjenta na sali operacyjnej.
  2. Po operacji przewieź pacjenta na PACU (Oddział Opieki Poanestezjologicznej) na jedną noc monitoringu.
  3. W PACU, wykonaj prześwietlenie klatki piersiowej, aby sprawdzić obecność odmy opłucnowej. Trzymaj dren klatki piersiowej na ssaniu -10 cmH20aż do prześwietlenia rentgenowskiego. Jeśli nie ma wycieku powietrza ani odmy opłucnej, załóż dren klatki piersiowej na blokadę H2O.
  4. Usuń dren klatkowy pierwszego dnia po operacji, jeśli nie ma wycieku powietrza ani odmy opłucnowej.
  5. Usuń odpływ JP na oddziale, jeśli produkcja ma przezroczysty aspekt i jest mniejsza niż 200 mL/24 godziny.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Wyniki

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

W naszej instytucji fluorescencyjna limfografia ICG jest standardem opieki klinicznej podczas przełyku raka przełyku, oparty na opublikowanych dowodach i ugruntowanej praktyce w międzynarodowych ośrodkach eksperckich. Rutynowo wszyscy pacjenci poddawani są przełykowi z intraoperacyjną limfografią fluorescencyjną oraz resekcją przewodów piersiowych zgodnie z tym protokołem. W chwili pisania tego tekstu fluorescencyjną limfografię wykonano u 20 pacjentów poddawanych przełyku rakowi przełyku. Tabela 1 przed...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Dyskusja

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Kluczowe kroki w protokole oraz modyfikacje i rozwiązywanie problemów z techniką

Jednym z najważniejszych kroków w protokole jest pomyślne wstrzyknięcie ICG. U pierwszych 10 pacjentów przewód piersiowy nie był widoczny w 20%. Po dyskusjach z doświadczonymi chirurgami na międzynarodowych konferencjach i w świetle dostępnej literaturywprowadzono podanie ICG za pomocą zastrzyku krezkowego. Zamiast zastrzyku pachwinowego, ICG podawano przed zamknięciem jamy...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

M.I.v.B.H. jest konsultantem w Alesi Surgical, BBraun, Johnson & Johnson, Medtronic i Viatris, a także otrzymał granty badawcze od Stryker; Wszystkie opłaty zostały opłacone na rzecz instytutu. Żadna z tych firm nie brała udziału w projektowaniu, przeprowadzeniu ani analizie tego badania. Żaden z autorów nie ma konfliktów interesów do ujawnienia.

Podziękowania

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Dział radiologii interwencyjnej jest z wdzięcznością doceniany za pomoc podczas pierwszych iniekcji ICG do węzłów chłonnych wewnątrzpachwinowych.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
specyficzna dla limfografii fluorescencyjnej ICG
Ultrasonografia Arietta V70HitachiUrządzenie USG z liniową sondą 
Konsola chirurga da VinciChirurgia intuicyjnaSS999Używany do sterowania robotem chirurgicznym
Wizja Cart da VinciChirurgia intuicyjnaVS999Wózek wizji mieści zaawansowane technologie wizualne i energetyczne oraz zapewnia komunikację pomiędzy komponentami systemu da Vinci
da Vinci XiChirurgia intuicyjnaK131861Robot chirurgiczny: 'wózek pacjenta boczny'
endoskop da Vinci Xi z aparatem, 8 mm, 30 stopni;  Chirurgia intuicyjna470027Kamera robota da Vinci
System kamer fluorescencyjnych (Stryker PINPOINT, platforma 1688 AIM 4K, optyka pod kątem 30 stopni z zasłoną kamery wideo lub Spy-PHI z osłonąStryker
Freka Connect ENFit/ProNeo strzykawka 60 mLFreka   3044683Do podawania kremu dojelitowego
Duże klipsy Hem-o-LockDo przecięcia przewodu piersiowego
Zielony barwnik indocyjaniny w proszku 25 mg flacon Diagnostyczna ZieleńPICG0025NLProszek z indocyjaniny
Igły lędźwiowe Spinocan 20G x 3 1/2" 0,9 x 88 mm (2x)BBraun4509900-01Przebicie węzłów pachwinowych
Metalowe klipsyER320Do przecięcia przewodu piersiowego
Nutridrink compact 50 ml Nutricia62173Krem dojelitowy stymulujący przepływ chyle
Igła Pajunk SonoPlex 22G x 50 mm (2x)Pajunk001185-74Aby przebić węzły pachwinowe 
Czerwona igła do rysowaniaAby stworzyć rozwiązanie ICG
Woda sterylna do wstrzykiwania 10 mLFresenius KabiAby rozpuścić proszek ICG
Strzykawka 10 mLBD300912Aby stworzyć rozwiązanie ICG
Strzykawki 3 mL (2x)BD309658Do administrowania rozwiązaniem ICG
Supplies esophagektomia ogólnie 
1000 mg cefazoliny i cnoty;
Gazy sterylne 10 x 10
18-19 igła Gauche Ruohy
1x Ethibond 2/0 (naprawa jejunostomii)
1x PDS 2/0 SH (pociąg)  
1x Vicryl 0 MH (powięź)
1x Vicryl 0 UR-6 (przedstaw)
1x Vicryl 0 UR-6 (przedstaw)
1x vicryl 3/0 SH (jejunostomia)  
1x vicryl 3/0 SH (podskórna)  
1x vicryl 3/0 SH-1 14 cm   
1x V-loc 23 cm (anastomoza)
2x Monocryl 4/0 (skórka)
2x Monocryl 4-0 (skórka)
2x vicryl 2/0 SH (fiksacja 27 drain)
3 x 5 mm trocar
500 mg metronidazolu i nbsp;
5 x 12mm trocar
Niebieski haczyk endo
Bupivacaine 0,125%
Bupivacaine 0,25%
Kamera
Drenaż kanału Ch27
Crush hechtingen Ethibond 0 EN-3
Diatermia
Jednorazowe nożyczki do laparoskopii;
Rurka endobronchialna z podwójnym lumenem
Endometrioza oka HD
Endoloop 
Endostitch 
Cewnik zewnątrzoponowy
System gastroskopowy
Wieża gastroskopowa
Jej unostomia do cewnika karmiącego
Laparoskopowy mini retraktor wątroby
Ligaclip 10 mm
Tępy czubek więza
Materac z mikrokulkami
Cewnik parawertebralny
Zszywacz Echelon Round 25 i 29 mm
Zszywacz Echelon Flex 60 mm
Przeładowuje 60mm Echelon White/Blue/Green
System ssania i odprowadzania dymu
Sufentanyl 0,5 mcg/mL
Igła Verresa
Wieża wideo

Bibliografia

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Eyck, B. M., et al. Ten-year outcome of neoadjuvant chemoradiotherapy plus surgery for esophageal cancer: the randomized controlled CROSS trial. J Clin Oncol. 39, 1995-2004 (2021).
  2. Udagawa, H., et al. Should lymph nodes along the thoracic duct be dissected routinely in radical esophagectomy. Esophagus. 11 (3), 204-210 (2014).
  3. Matsuda, S., et al. Clinical outcome of transthoracic esophagectomy with thoracic duct resection: number of dissected lymph nodes and distribution of lymph node metastasis around the thoracic duct. Medicine (Baltimore). 95, e3839(2016).
  4. Schurink, B., et al. Two-field lymphadenectomy during esophagectomy: the presence of thoracic duct lymph nodes. Ann Thorac Surg. 105, 196-202 (2018).
  5. Ilahi, M., Lucia, K. S., Ilahi, T. B. Anatomy, thorax, thoracic duct. , StatPearls. (2020).
  6. Hematti, H., Mehran, R. J. Anatomy of the thoracic duct. Thorac Surg Clin. 21, 229-238 (2011).
  7. Defize, I. L., et al. The anatomy of the thoracic duct at the level of the diaphragm: a cadaver study. Ann Anat. 217, 47-53 (2018).
  8. Oshikiri, T., et al. Thoracic duct resection during esophagectomy does not contribute to improved prognosis in esophageal squamous cell carcinoma. Ann Surg Oncol. 26, 4053-4060 (2019).
  9. Low, D. E., et al. Benchmarking complications associated with esophagectomy. Ann Surg. 269 (2), 291-298 (2019).
  10. Kranzfelder, M., Gertler, R., Hapfelmeier, A., Friess, H., Feith, M. Chylothorax after esophagectomy for cancer: impact of the surgical approach and neoadjuvant treatment. Surg Endosc. 27 (10), 3530-3538 (2013).
  11. Weijs, T. J., Ruurda, J. P., Broekhuizen, M. E., Bracco Gartner, T. C. L., van Hillegersberg, R. Outcome of a step-up treatment strategy for chyle leakage after esophagectomy. Ann Thorac Surg. 104 (2), 477-484 (2017).
  12. Schafrat, P., et al. Clinical implications of chyle leakage following esophagectomy. Dis Esophagus. 35 (Suppl 2), 1-7 (2022).
  13. Hagens, E. R. C., et al. Conditional survival after neoadjuvant chemoradiotherapy and surgery for oesophageal cancer. Br J Surg. 107 (8), 1053-1061 (2020).
  14. Shen, Y., Feng, M., Khan, M. A., Wang, H., Tan, L., Wang, Q. A simple method minimizes chylothorax after minimally invasive esophagectomy. J Am Coll Surg. 218 (1), 108-112 (2014).
  15. Chakedis, J., et al. Identification of the thoracic duct using indocyanine green during cervical lymphadenectomy. Ann Surg Oncol. 25 (12), 3711-3717 (2018).
  16. Cheng, S., et al. Near-infrared fluorescence imaging of thoracic duct in minimally invasive esophagectomy. Dis Esophagus. 35 (Suppl 2), 1-8 (2022).
  17. Kamiya, K., Unno, N., Konno, H. Intraoperative indocyanine green fluorescence lymphography to detect chyle fistula after esophagectomy. Surg Today. 39 (5), 421-424 (2009).
  18. Yang, F., et al. Near-infrared fluorescence-guided thoracoscopic surgical intervention for postoperative chylothorax. Interact Cardiovasc Thorac Surg. 26 (2), 171-175 (2018).
  19. Barnes, T. G., MacGregor, T., Sgromo, B., Maynard, N. D., Gillies, R. S. Near-infrared fluorescence identification of the thoracic duct to prevent chyle leaks during oesophagectomy. Surg Endosc. 36, 2989-2996 (2022).
  20. Barbato, G., Cammelli, F., Braccini, G., Staderini, F., Cianchi, F., Coratti, F. Fluorescent lymphography for thoracic duct identification: initial experience of a simplified ICG administration. Int J Med Robot. 18 (3), e2380(2022).
  21. Coratti, F., Barbato, G., Cianchi, F. Thoracic duct identification with indocyanine green fluorescence: a simplified method. Dis Esophagus. 34 (3), 1(2021).

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Przedruki i uprawnienia

Poproś o pozwolenie na ponowne wykorzystanie tekstu lub ilustracji tego artykułu JoVE

Poproś o pozwolenie

Tagi

Procedura ezofagektomiiwizualizacja przewodu piersiowegowyciek ch onkilimfadenektomia r dpiersiaobrazowanie w bliskiej podczerwieniw z y ch onne pachwinoweezofagektomia transtorakalnamapowanie limfatyczne
Film wkrótce dostępny

Powiązane artykuły