Artykuł metodologiczny

Skuteczną i szybką metodę HPLC-QQQ-MS do ilościowego oznaczania alkaloidów tropanowych w roślinach leczniczych

DOI:

10.3791/70510

⸱

12 czerwca 2026

 ,  ,  ,  ,  ,  ,  , 
1College of Pharmacy, Chengdu University of Traditional Chinese Medicine, 2Innovative Institute of Chinese Medicine and Pharmacy, Chengdu University of Traditional Chinese Medicine

W tym artykule

Podsumowanie

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Niniejsze badanie opracowało metodę chromatografii cieczowej wysokiej rozdzielczości połączoną ze spektrometrią mas z potrójnym kwarcykiem (HPLC-QQQ-MS) w celu identyfikacji i ilościowego określania alkaloidów tropanowych (hioscyjamina, anizodamina, skopolamina) w Anisodus tanguticus. Metoda ta okazała się szybką, dokładną i niezawodną dla analizy wysokowydajnej roślin leczniczych.

Streszczenie

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Anisodus tanguticus to ważna tybetańska roślina lecznicza. Alkaloidy tropanowe (TA), takie jak hioscylamina, anizodamina i skopolamina, wykazują znaczne działanie przeciwbólowe i uspokajające, co sprawia, że ten gatunek jest cenny jako naturalne źródło do ekstrakcji tych aktywnych biologicznie związków. Jednak skład chemiczny A. tanguticus jest bardzo złożony. Obejmuje dużą liczbę związków o niewyjaśnionych strukturach, co sprawia, że systematyczna identyfikacja i charakterystyka strukturalna jego aktywnych składników jest szczególnie ważna. Mimo że chroma tograf ia cieczowa wysokiej rozdzielczości (HPLC) była szeroko stosowana do separacji ekstraktów z tej rośliny, wiele nieznanych składników nadal jest trudnych do dokładnego zidentyfikowania, nawet z wykorzystaniem dopasowywania do bazy danych spektralnej.

Niniejsze badanie ustanowiło metodę analityczną opartą na chroma tograf ii cieczowej wysokiej rozdzielczości skojarzonej z potrójnym spektrometr ie masowym z kwadrypolem (HPLC-QQQ-MS) do oznaczania alkaloidów tropanowych w A. tanguticus. Metoda obejmuje serię systematycznych procedur, w tym standaryzowane przygotowanie próbek, konfigurację parametrów spektrometrii masowej, wstępne równoważenie LC, ustanowienie metody, pozyskiwanie danych MS, skanowanie wieloetapowe spektrometrii masowej (MSⁿ) oraz ręczną interpretację danych. Stosując tę strategię, z powodzeniem zidentyfikowano trzy reprezentatywne alkaloidy tropanowe w A. tanguticus: hioscyaminę, anizodaminę i skopolamina. Ponadto waliduje się precyzję ustalonej metody HPLC-QQQ-MS, potwierdzając, że metoda jest szybka, wrażliwa, wykonalna i dokładna w ilościowym oznaczaniu alkaloidów tropanowych (TA) w A. tanguticus. Ustalona metoda wykazuje dobrą wszechstronność i niezawodność oraz nadaje się do wysokowydajnej identyfikacji i ilościowego oznaczania alkaloidów tropanowych w A. tanguticus i innych roślinach leczniczych.

Wprowadzenie

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Terapeutyczna skuteczność tradycyjnej medycyny chińskiej (TCM) w dużej mierze zależy od jej wtórnych metabolitów, takich jak alkaloidy, flawonoidy, terpenoidy i inne aktywne składniki1,2,3. W związku z tym, precyzyjna i wrażliwa analiza jakościowa i ilościowa określonych metabolitów docelowych w tych złożonych mieszaninach jest kluczowym etapem w zapewnieniu jakości TCM, wyjaśnianiu materialnej podstawy jej skuteczności i rozwijaniu współczesnych badań3. Jednak różnorodność i złożoność składników TCM, w połączeniu z niezwykle niskimi stężeniami wielu kluczowych aktywnych składników, stanowią znaczne wyzwania dla osiągnięcia wydajnego i dokładnego wykrywania.

Anisodus tanguticus (Maxim.) Pascher reprezentuje główne botaniczne źródło alkaloidów tropanowych (TA)4, znane z bogatego zawartości farmakologicznie aktywnych związków tropanowych5. Kluczowe charakterystyczne alkaloidy obejmują anizodaminę, skopolaminę i hioscyjaminę, które mają wspólną rdzeń tropanową, ale wykazują odmienne podstawienia grup funkcyjnych (Rysunek 1), co prowadzi do różnych profili farmakologicznych6,7,8. Chociaż ich podobieństwa strukturalne komplikują rozdzielanie chromatograficzne, oferują również wartościowy model do porównawczych badań fitochemicznych i metabolicznych. Ostatnie badania zbadają skład chemiczny i zróżnicowanie geograficzne A. tanguticus przy użyciu podejść metabolomiki i farmakologii sieciowej9,10. Obecne metody analityczne dla metabolitów A. tanguticus polegają głównie na chromatografii cieczowej wysokiej efektywności (HPLC)11. Niemniej jednak, poziomy alkaloidów tropanowych w siewkach A. tanguticus mogą być tak niskie jak 0,01% (jedna część na dziesięć tysięcy), a konwencjonalne metody HPLC są często ograniczone przez ograniczoną rozdzielczość, wrażliwość i przepustowość analityczną. Te ograniczenia utrudniają pełne rozdzielenie strukturalnie podobnych homologów alkaloidów i utrudniają wykrywanie śladowych składników, w ten sposób ograniczając dokładność analityczną i ograniczając wsparcie dla bardziej zaawansowanych zastosowań badawczych. W ostatnich latach postępy w HPLC połączone z tandemową spektrometrią masową dostarczyły potężnych narzędzi do rozwiązania tych węzłów analitycznych. Chromatografia cieczowa wysokiej efektywności z triple spektrometrią masową kwadrupolów (HPLC-QQQ-MS) oferuje znacznie lepszą rozdzielczość chromatograficzną, wydajność rozdzielania i wyjątkową wrażliwość12,13,14. Ta technologia stała się najnowocześniejszą platformą do badania wtórnych metabolitów w TCM, umożliwiając wydajne i dokładne kwalifikacje oraz ilościowe określenie śladowych analitów docelowych w złożonych macierzach biologicznych11,15,16,17. W związku z tym, zapewnia solidne techniczne podstawy dla kompleksowego profilowania chemicznego i oceny jakości roślin leczniczych, takich jak A. tanguticus. W niniejszym badaniu podejmujemy trwałe wyzwania w wykrywaniu alkaloidów tropanowych w A. tanguticus, ze szczególnym uwzględnieniem dokładnej identyfikacji i ilościowego określania składników na poziomie śladowym. Poprzez systematyczną optymalizację warunków chromatograficznych i spektrometrii mas, opracowałeśmy i zweryfikowaliśmy nową metodę HPLC-QQQ-MS do jednoczesnego określania wielu głównych alkaloidów tropanowych. Zoptymalizowane podejście znacznie poprawia wrażliwość, selektywność i solidność metodologiczną, przez co zwalcza typowe ograniczenia związane z konwencjonalnymi badaniami spektrometrii masowej - takimi jak nieodpowiednia wrażliwość, efekty matrycowe i interferencje współelujących - często spotykane podczas analizy śladowych związków alkaloidowych.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Protokół

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

1. Przygotowanie próbki

  1. Przygotowanie roztworów standardowych
    1. Dokładnie odważyć po 10,0 mg standardów odniesienia hyoscyaminy, hydrobromku anizodaminy i hydrobromku skopolamina za pomocą analitycznej wagi o dokładności jednej setnej tysiącznej i umieścić je odpowiednio w osobnych 10 mL kolbach objętościowych.
    2. Dodać metanol o klasie chromatograficznej do linii oznaczenia i dokładnie rozpuścić standardy za pomocą leczenia ultradźwiękowego w celu przygotowania pojedynczych roztworów standardowych o stężeniu 1,0 mg/mL.
    3. Przenieść roztwory macierzyste do brązowych butelek reagentów, przechowywać je w temperaturze 4 °C w ciemności.
      UWAGA: Stosowanie alkaloidów jest wysoce toksyczne. Podczas manipulacji próbkami standardowymi należy zachować ostrożność. Wszystkie roztwory były przygotowywane świeżo przed analizą i przechowywane w temperaturze 4 °C w ciemności, aby uniknąć degradacji.
  2. Przygotowanie mieszanych roztworów roboczych
    1. Przenieść po 100 μL każdego wspomnianego roztworu macierzystego do 10 mL kolby objętościowej i rozcieńczyć do linii oznaczenia metanolem o klasie chromatograficznej w celu przygotowania mieszanego standardowego roztworu pośredniego o stężeniu 10 μg/mL.
    2. Zgodnie z wymaganiami zakresu liniowego dalsze rozcieńczać roztwór pośredni etapami metanolem w celu uzyskania serii mieszanych roztworów roboczych.
    3. Przenieść po 50 μL, 200 μL i 500 μL odpowiednio. Uzyskać stężenia 0,5 μg/mL, 2 μg/mL, 5 μg/mL i 10 μg/mL. Przygotowywać świeże przed użyciem.
    4. Przenieść 100 μL pośredniego roztworu 10 μg/mL do 1 mL kolby objętościowej w celu przygotowania 1 μg/mL roztworu rozcieńczonego.
    5. Następnie przenieść 100 μL 1 μg/mL roztworu do kolejnej 1 mL kolby objętościowej i rozcieńczyć do objętości metanolem.
  3. Przygotowanie próbki
    1. Przeprowadzić liofilizację świeżych materiałów Sophora flavescens, a następnie zmielenić do jednorodnego proszku za pomocą szybkotarzącego młynka.
    2. Przesiewać proszek przez standardową sitę próbkową o średnicy 0,25 mm. Dokładnie odważyć 20 mg tego proszku, przenieść go do 100 mL kolby objętościowej i dodać metanol o klasie chromatograficznej prawie do linii oznaczenia.
    3. Przeprowadzić ekstrakcję ultradźwiękową w temperaturze pokojowej przez 30 min. Po ekstrakcji wyjąć kolbę objętościową, pozwolić jej ostygnąć do 25 °C w temperaturze pokojowej, uzupełnić metanol o klasie chromatograficznej do linii oznaczenia 100 mL i mieszać 2 min w wirówce.
    4. Przenieść 1 mL powyższego ekstraktu do 100 mL kolby objętościowej i rozcieńczyć do linii oznaczenia metanolem (100-krotne rozcieńczenie). Po dokładnym przemieszaniu służy jako roztwór macierzysty do wstrzyknięcia HPLC (Rysunek 2).
      UWAGA: Podczas obsługi szybkotarzącego młynka należy zakładać okulary ochronne i maskę antykurzową; kontrolować ilość i czas mielenia, aby zapobiec przegrzaniu.
  4. Filtracja i przechowywanie próbek
    1. Przygotować 1 mL jednorazowej strzykawki bez igły (specjalistycznej do chromatografii, nieadsorbującej) i 0,22 μm mikroporowaną membranę fazy organicznej.
    2. Napełnić 1,2 mL roztworu macierzystego do wstrzyknięcia i powoli przepuścić go przez filtr.
    3. Zbierać kolejny filtrat do 2 mL fiolki próbkowej z wewnętrznym wkładem i szczelnie zamykać korkiem.
      UWAGA: Częstotliwość ultradźwiękowego oczyszczacza jest ustalona na 40 kHz. Unikać luzowania korka kolby objętościowej podczas ekstrakcji, aby zapobiec lotności rozpuszczalnika. Dostosować czynnik rozcieńczenia zgodnie z odpowiedzią szczytu próbki w preeksperymencie, aby upewnić się, że obszar docelowego szczytu znajduje się w zakresie liniowym krzywej standardowej. Wszystkie próbki należy natychmiast przechowywać w lodówce w temperaturze 4 °C.

2. Przygotowanie do HPLC, ustanowienie metody i akwizycja MS

  1. Przygotowanie faz ruchomych
    1. Przygotować fazę ruchomą A: Odmiar 1000 mL ultraczystej wody, dodanie 1,0 mL chromatograficznego kwasu mrówkowego (udział objętościowy: 0,1% v/v) i mieszanie jednorodnie za pomocą rusztu magnetycznego przez 10 min.
    2. Przygotować fazę ruchomą B: Stosować bezpośrednio metanol o klasie chromatograficznej bez dodatkowego przetwarzania.
    3. Wlać fazy ruchome A i B odpowiednio do urządzeń do ultradźwiękowego odgazowania i przeprowadzić ultradźwiękowe odgazowanie o częstotliwości 40 kHz przez 15 min.
    4. Natychmiast po odgazowaniu przenieść odgazowaną fazę ruchomą do butelek z rozpuszczalnikami, uszczelnić je i podłączyć do odpowiednich linii rozpuszczalników A i B układu HPLC.
      UWAGA

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Wyniki

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

HPLC-QQQ-MS chromatographic separation and identification of TAs
Typowy chromatogram MRM uzyskany w analizie mieszaniny standardowej i ekstraktu z korzeni A.tanguticus przedstawiono na Rysunku 3 oraz Rysunku 4. W zoptymalizowanych warunkach HPLC, wszystkie trzy docelowe alkaloidy tropanowe: hioscyjamina, anizodamina i skopolamina, zostały pomyślnie oddzielone w ciągu 20 minut, co wykazało wysoką efe...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Dyskusja

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Wraz ze wzrostem zainteresowania metabolitami wtórnymi roślin, techniki analityczne do wykrywania alkaloidów zyskały znaczną uwagę. Podczas gdy podstawowy system chromatograficzny do analizy alkaloidów tropanowych (TA) został ustalony18, ostatnie osiągnięcia, takie jak przyjęcie elektroforezy kapilarnej (CE), ulepszona wydajność instrumentów w GC–MS i HPLC–MS oraz identyfikacja nowych związków strukturalnych, w tym konwolwiny i topinonowych toksyn podobnych do tropinonów, podkreślają potrzebę syst...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Autorzy nie mają żadnych sporów interesów do ujawnienia.

Podziękowania

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

To dzieło jest wspierane przez Prowincjonalną Administracji Medycyny Tradycyjnej Chińskiej w Syczuanie (nr 2024MS562) oraz Xinglin Talent Program Uniwersytetu Medycyny Tradycyjnej Chińskiej w Chengdu (nr MPRC2022035). Bardzo cenimy sobie wsparcie Innowacji Instytutu Medycyny Chińskiej i Farmacji, Uniwersytetu Medycyny Tradycyjnej Chińskiej w Chengdu.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
Agilent MassHunter softwareAgilent Technologies
Agilent ZORBAX SB-C18 columnAgilent Technologies880975-902C18 reversed-phase column, 4.6 × 250 mm, 5 μm
Anisodamine hydrobromideChengdu glip Biotechnology Co., Ltd101-31-5HPLC>98%
Formic AcidSigma-Aldrich5.33002
freeze dryerEYELA, Tokyo, JapanFDU-2110
High-speed universal grinderTaisite Instrument Co., Ltd., Tianjin, China6010210100FW-100,24,000 rpm, 100 g capacity, 80 mesh
HyoscyamineChengdu glip Biotechnology Co., Ltd55449-49-5HPLC>98%
MethanolThermo Fisher Scientific022909.K2
Microporous Membrane 0.22μmMilliporeSLGV033RB
Milli-Q Direct 8 water systemMilliporeSigma, Burlington, MA, USAZRQSVP0JP
Scopolamine hydrobromideChengdu glip Biotechnology Co., Ltd114-49-8HPLC>98%

Bibliografia

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Ji, P., Yang, X., Zhao, X. Application of metabolomics in quality control of traditional Chinese medicines: a review. Front Plant Sci. 15, 1463666(2024).
  2. Li, S. -S., et al. Phytochemical variation among the traditional Chinese medicine mu dan pi from Paeonia suffruticosa (tree peony). Phytochemistry. 146, 16-24 (2018).
  3. Wang, N., et al. Pinelliae rhizoma alleviated acute lung injury induced by lipopolysaccharide via suppressing endoplasmic reticulum stress-mediated NLRP3 inflammasome. Front Pharmacol. 13, 883865(2022).
  4. Pughaih, T., et al. Tropane Alkaloids: Sources, Chemistry, Pharmacology and Biotechnology. , Nature, Springer. Singapore. (2025).
  5. Chen, C., Wang, B., Xiao, Y., Xiong, F., Zhou, G. Geographical origin discrimination of Anisodus tanguticus (Maxim.): chemometrics methods applied to ICP-OES analysis. Arab J Chem. 17 (5), 105730(2024).
  6. Cardillo, R., et al. Scopolamine, anisodamine and hyoscyamine production by Brugmansia candida hairy root cultures in bioreactors. Process Biochem. 45 (9), 1577-1581 (2010).
  7. Yuan, B., Zheng, C., Teng, H., You, T. Simultaneous determination of atropine, anisodamine, and scopolamine in plant extract by nonaqueous capillary electrophoresis coupled with electrochemiluminescence and electrochemistry dual detection. J Chromatogr A. 1217 (1), 171-174 (2010).
  8. Zhang, P., et al. Simultaneous determination of atropine, scopolamine, and anisodamine from Hyoscyamus niger L. in rat plasma by high-performance liquid chromatography with tandem mass spectrometry and its application to a pharmacokinetics study: liquid chromatography. J Sep Sci. 37 (19), 2664-2674 (2014).
  9. Chen, C., Wang, B., Li, J., Xiong, F., Zhou, G. Multivariate statistical analysis of metabolites in Anisodus tanguticus (Maxim.) Pascher to determine geographical origins and network pharmacology. Front Plant Sci. 13, 927336(2022).
  10. Chen, C., et al. Multivariate statistical analysis of tropane alkaloids in Anisodus tanguticus (Maxim.) Pascher from different regions to trace geographical origins. Acta Chromatogr. 34 (4), 422-429 (2022).
  11. Sawabe, Y., et al. Rapid determination of atropine and scopolamine content in Scopolia extract powder by HPLC. J Nat Med. 65 (2), 395-399 (2011).
  12. Baj, J., et al. Application of HPLC-QQQ-MS/MS and new RP-HPLC-DAD system utilizing the chaotropic effect for determination of nicotine and its major metabolites cotinine,and trans-3′-hydroxycotinine in human plasma samples. Molecules. 27 (3), 682(2022).
  13. Chen, D., et al. Qualitative and quantitative analysis of the major constituents in Shexiang tongxin dropping pill by HPLC-Q-TOF-MS/MS and UPLC-QqQ-MS/MS. Molecules. 20 (10), 18597-18619 (2015).
  14. Huang, Y. -F., et al. Simultaneous determination of twenty-nine active compounds in Fuzhengjiedu granules by HPLC-QQQ-MS/MS. Heliyon. 9 (2), e13675(2023).
  15. Zhang, K. -X., et al. Improved quality control method for prescriptions of Polygonum capitatum through simultaneous determination of nine major constituents by HPLC coupled with triple quadruple mass spectrometry. Molecules. 18 (10), 11824-11835 (2013).
  16. Ding, M., et al. Comprehensive chemical profiling and quantification of Shexiang xintongning tablets by integrating liquid chromatography-mass spectrometry and gas chromatography-mass spectrometry. Arab J Chem. 16 (3), 104527(2023).
  17. Zhu, L., et al. The QuEChERS method coupled to HPLC-QQQ-MS/MS for the determination of 25 banned pesticide residues in ethnic medicines. Res Sq. , (2022).
  18. Cinelli, M. A., Cline, J., Watson, T. Applications of liquid chromatography-tandem mass spectrometry in natural products research: Tropane alkaloids as a case study. J Vis Exp. (205), e66620(2024).
  19. Pang, Y., Huang, Y. -K., Li, F., Yang, F. -Q., Xia, Z. -N. Rapid screening and evaluation of antioxidants in alkaloid natural products by capillary electrophoresis with chemiluminescence detection. Anal Methods. 8 (35), 6545-6553 (2016).
  20. Voeten, R. L. C., Ventouri, I. K., Haselberg, R., Somsen, G. W. Capillary electrophoresis:trends and recent advances. Anal Chem. 90 (3), 1464-1481 (2018).
  21. Pellati, F., Benvenuti, S. Chromatographic and electrophoretic methods for the analysis of phenetylamine alkaloids in Citrus aurantium. J Chromatogr A. 1161 (1), 71-88 (2007).
  22. Cirlini, M., et al. A sensitive UHPLC-ESI-MS/MS method for the determination of tropane alkaloids in herbal teas and extracts. Food Control. 105, 285-291 (2019).
  23. Wojakowska, A., et al. Structural analysis and profiling of phenolic secondary metabolites of Mexican lupine species using LC-MS techniques. Phytochemistry. 92, 71-86 (2013).
  24. Shimizu, T., Watanabe, M., Fernie, A. R., Tohge, T. Targeted LC-MS analysis for plant secondary metabolites. Methods Mol Biol. 1778, 171-181 (2018).
  25. Mennickent, S., De Diego, M. Analytical Method Validation as the First Step in Drug Quality Control. Quality Management and Quality Control - New Trends and Developments. , IntechOpen. London, UK. (2019).
  26. Yang, S. H., Wang, J., Zhang, K. Validation of a two-dimensional liquid chromatography method for quality control testing of pharmaceutical materials. J Chromatogr A. 1492, 89-97 (2017).
  27. Zhang, X., et al. HPLC with chiral stationary phase for separation and kinetics study of aspartic acid epimerization in peroxiredoxin 2 active site peptide. J Pharm Biomed Anal. 247, 116247(2024).
  28. Lu, W., et al. Metabolite measurement: pittfalls to avoid and practices to follow. Annu Rev Biochem. 86, 277-304 (2017).
  29. Leopold, J., Popkova, Y., Engel, K. M., Schiller, J. Recent developments of useful MALDI matrices for the mass spectrometric characterization of lipids. Biomolecules. 8 (4), 173(2018).
  30. Parasuraman, S., et al. An overview of liquid chromatography-mass spectroscopy instrumentation. Pharm Methods. 5 (2), 47-55 (2014).
  31. Alanazi, S. Recent advances in liquid chromatography–mass spectrometry (LC–MS) applications in biological and applied sciences. Anal Sci Adv. 6 (1), e70024(2025).
  32. Cortese, M., et al. Compensate for or minimize matrix effects? Strategies for overcoming matrix effects in liquid chromatography-mass spectrometry technique: A tutorial review. Molecules. 25 (13), 30-47 (2020).
  33. Wang, L., et al. The interplay between herbal medicines and gut microbiota in metabolic diseases. Front Pharmacol. 14, 1105405(2023).
  34. Musharraf, S. G., et al. Screening of inhibitors of angiotensin-converting enzyme (ACE) employing high performance liquid chromatography-electrospray ionization triple quadrupole mass spectrometry (HPLC-ESI-QqQ-MS). Eur J Pharm Sci. 101, 182-188 (2017).
  35. Liu, H., et al. Integrating qualitative and quantitative assessments of Yougui pill, an effective traditional Chinese medicine, by HPLC-LTQ-orbitrap-MSn and UPLC-QqQ-MS/MS. Anal Methods. 9 (23), 3485-3496 (2017).
  36. Parks, H. M., et al. Redirecting tropane alkaloid metabolism reveals pyrrolidine alkaloid diversity in Atropa belladonna. New Phytol. 237 (5), 1810-1825 (2023).
  37. Yan, Z., et al. Triterpenoid saponins profiling by adducts-targeted neutral loss triggered enhanced resolution and product ion scanning using triple quadrupole linear ion trap mass spectrometry. Anal Chim Acta. 819, 56-64 (2014).
  38. Sosa-Ferrera, Z., Mahugo-Santana, C., Santana-Rodríguez, J. J. Analytical methodologies for the determination of endocrine disrupting compounds in biological and environmental samples. Biomed Res Int. 2013, 674838(2013).
  39. Heyde, B. J., Barthel, A., Siemens, J., Mulder, I. A fast and robust method for the extraction and analysis of quaternary alkyl ammonium compounds from soil and sewage sludge. PLoS One. 15 (8), e0237020(2020).

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Przedruki i uprawnienia

Poproś o pozwolenie na ponowne wykorzystanie tekstu lub ilustracji tego artykułu JoVE

Poproś o pozwolenie

Tagi

Anisodus tanguticusoznaczanie ilo ciowe hioscyjaminywykrywanie anisodaminyanaliza skopolaminyprzygotowanie pr bekpotr jna spektrometria mas z analizatorem kwadrupolowymmonitorowanie wielu reakcji

Powiązane artykuły