Wszystkie eksperymenty na zwierzętach zostały zatwierdzone przez Komitet ds. Opieki i Wykorzystania Zwierząt Uniwersytetu Chińskiego w Pekinie (BUCM-2024110107-4103).
Zbieranie aktywnych składników i celów
YGP składa się z Rehmannia glutinosa, Aconitum carmichaelii, Cinnamomum cassia, Dioscorea opposita, Cornus officinalis, Cuscuta chinensis, Angelica sinensis, Eucommia ulmoides, Cervi cornus colla oraz Lycium barbarum. Nazwy tych ziół zostały wprowadzone do tradycyjnej bazy danych farmakologii i analiz medycyny chińskiej (TCMSP), aby odzyskać ich związki. Związki aktywne były badane według biodostępności doustnej (OB ≥ 30%) oraz podobności do leku (DL ≥ 0,18) według kryteriów19, 20, 21. Odpowiadające cele każdego związku zostały uzyskane z TCMSP i ustandaryzowane do symboli genów przy użyciu bazy UniProt. Cele związane z zapaleniem prostaty zostały pobrane z bazy GeneCards przy użyciu słowa kluczowego "zapalenie prostaty", a do badania wybrano geny o wyższym wskaźniku relewancji niż średnia.
Budowa sieci regulacyjnej YGP przeciwko zapaleniu prostaty
Zidentyfikowano i zdefiniowano przecięcie celów związanych z YGP a zapaleniem prostaty jako zestaw potencjalnych celów terapeutycznych. Cele te zostały zaimportowane do Cytoscape (wersja 3.9.1), aby stworzyć sieć złożoną-cel-choroba. Analiza topologii sieci została przeprowadzona za pomocą wtyczki CytoHubba, a kluczowe komponenty zidentyfikowano na podstawie maksymalnej centralności kliki (MCC)22.
Analiza sieci interakcji białko-białko (PPI)
Nakładające się cele zostały zaimportowane do bazy danych STRING (wersja 11.5), z organizmem ustawionym na Homo sapiens. Minimalny wymagany wynik interakcji został ustawiony na ≥ 0,7, a niepołączone węzły były ukrytena 23. Dane interakcji zostały wyeksportowane w formacie TSV i zwizualizowane w Cytoscape. Geny hubów zostały dalej zidentyfikowane za pomocą wtyczki CytoHubba na podstawie centralności stopni.
Analiza wzbogacenia ścieżki KEGG i GO
Wspólne cele zostały przesłane na platformę Metascape do analizy szlaków Kyoto encyclopedia of genes and genomes (KEGG). Gatunki wejściowe i analizowe zostały ustawione na Homo sapiens. Przeprowadzono analizę wzbogacenia szlaku KEGG. Szlaki były dodatkowo filtrowane na podstawie ich związku z zapaleniem prostaty, co określano na podstawie opublikowanej literatury i adnotacji baz danych. Pozostałe ścieżki zostały uszeregowane według wartości Log P. Wzbogacone szlaki KEGG zostały zwizualizowane za pomocą wykresów bąbelkowych.
Dokowanie molekularne
Kluczowe cele zostały wybrane z sieci PPI na podstawie centralności stopnia, a związki aktywne zidentyfikowano z sieci regulacyjnej YGP-prostatitis na podstawie wartości MCC do późniejszej analizy dokowania. Struktury białek zostały uzyskane z bazy danych AlphaFold Protein Structure Database w formacie PDB, a struktury ligandów pobrano z TCMSP w formacie mol224. Dokowanie molekularne przeprowadzono za pomocą platformy onlineCB-Dock2 25. Przed dokowaniem struktury białek były automatycznie wstępnie przetwarzane poprzez usuwanie cząsteczek wody, dodawanie atomów wodoru oraz uzupełnianie brakujących reszt. Rejestrowano powinowactwa wiązania, a mapy ciepła generowano za pomocą GraphPad Prism (wersja 10.1.2). Trójwymiarowe struktury kompleksów ligand-białko o najniższych wynikach Vina zostały zwizualizowane za pomocą ChimeraX, a dwuwymiarowe diagramy interakcji wygenerowano za pomocą LigPlus.
Przygotowanie ekstraktu wodnego YGP
Składniki ziołowe YGP przygotowywano według tradycyjnego stosunku formułowania, w tym 24 g przetworzonego korzenia Rehmannia glutinosa (Shudihuang), 6 g przetworzonego bocznego korzenia Aconitum carmichaelii (Fuzi), 6 g kory Cinnamomum cassia (Rougui), 12 g kłącza Dioscorea przeciwległego (Shanyao), 9 g owocu Cornus officinalis (Shanzhuyu), 12 g nasion Cuscuta chinensis (Tusizi), 12 g przetworzonej żelatyny z poroża Cervi Cornus Colla (Lujiaojiao), 12 g owocu Lycium barbarum (Gouqi), 9 g korzenia Angelica sinensis (Danggui) oraz 12 g kory Eucommia ulmoides (Duzhong). Wszystkie zioła oprócz Aconitum carmichaelii i Cervi Cornus Colla były moczone w 6-krotnie większej masie wody destylowanej przez 30 minut, podczas gdy Aconitum carmichaelii było moczone osobno w 6 razy większej ilości wody destylowanej niż ona. Aconitum carmichaelii był najpierw wydekowany za pomocą elektrycznego urządzenia grzewczego przez 1 godzinę, po czym dodawano pozostałe zioła, z wyjątkiem Cervi Cornus Cola, i wydekowano je dwukrotnie przez 1 godzinę w każdym cyklu. Cervi Cornus Colla był następnie topiony w kąpieli wodnej w temperaturze 60–70 °C, aż do całkowitego rozpuszczenia i włączenia do ekstraktu. Po ostygnięciu wywar był filtrowany przez gazę dwuwarstwową, alicytatowany, zamrażany w -20 °C przez 48 godzin i liofilizowany, aby uzyskać ekstrakt w proszku.
Model zwierzęcy i projektowanie eksperymentalne
Samce szczurów Sprague-Dawley (8 tygodni, 200–220 g) były trzymane w określonych warunkach wolnych od patogenów, z 12-godzinnym cyklem światła/ciemności oraz swobodnym dostępem do jedzenia i wody. Po tygodniu aklimatyzacji szczury zostały losowo podzielone na trzy grupy (n = 6 na grupę): grupę kontrolną, modelową i YGP. Przewlekłe zapalenie prostaty wywołało wstrzyknięcie roztworu 3% karagenanu26 wewnątrzprostaty. Krótko szczury były znieczulone izofluranem (3–4% podczas indukcji i 1,5–2% w trybie utrzymywania), a następnie wykonano nacięcie środkowe brzucha, aby odsłonić prostatę. Do każdego płata brzusznego prostaty wstrzykiwano łącznie 25 μL roztworu 3% karagenu. Grupa kontrolna otrzymała jedynie zastrzyk soli fizjologicznej (roztwór fizjologiczny) wyłącznie wewnątrzprostaty. Penicylina pooperacyjna (2,5 × 10 5 U/kg) była podawana domięśniowo przez 3 dni.
Z wywaru przygotowano proszek z ekstraktu liofilizowanego YGP i zrekonstytuowano w 0,9% sterylnej soli fizjologicznej, aby uzyskać jednolitą zawiesinę do doustnej dawki (10,54 g/kg/dzień). Szczury z grupy YGP otrzymały doustne podawanie ekstraktu YGP (10 mL/kg), natomiast grupy kontrolne i modelowe otrzymały równoważną ilość 0,9% bezpłodnej soli fizjologicznej. Po 4 tygodniach szczury były znieczulone pentobarbitalem sodowym (50 mg/kg, zastrzyk dootrzewnowkowy), a tkanki prostaty pobierano po poświęceniu zgodnie z wytycznymi etycznymi.
Badanie histopatologiczne
Tkanki prostaty były utrwalane w 4% paraformaldehydu przez 24 godziny, odwodnione przez etanol klasyfikowany (75% alkoholu przez 4 godziny, 85% alkoholu przez 2 godziny, 90% alkoholu przez 2 godziny, 95% alkoholu przez 1 godzinę, absolutny etanol przez 1 godzinę), oczyszczane w ksylenie i osadzane w parafinie. Sekcje (4–5 μm) były następnie poddawane barwieniu HE zgodnie ze standardowymi procedurami27. Krótko przekroje były deparafinizowane, nawilżane, barwione hematoksyliną, zróżnicowane i przeciwbarwione eozyną. Po odwodnieniu i zamontowaniu cięcia obserwano pod mikroskopem świetlnym w celu oceny histopatologicznej.
Histopatologiczne zapalenie oceniano za pomocą półilościowego systemu punktacji opartego na infiltracji komórek zapalnych, proliferacji fibroblastów, morfologii acynaru oraz stanie wydzielania. Infiltracja komórek zapalnych została oceniona jako 0 (brak infiltracji), 2 (łagodne przeniknięcie), 4 (umiarkowane przeniknięcie) oraz 6 (ciężka infiltracja). Proliferacja fibroblastów oceniono jako 0 (nieobecna), 1 (łagodna), 2 (umiarkowana) i 3 (ciężka). Morfologia acjarów oceniono jako 0 (duży lumen acinarny), 1 (umiarkowanie zmniejszony rozmiar lumenu), 2 (wyraźnie zmniejszony rozmiar lumenu) oraz 3 (zatkanie lub zniknięcie acynary). Status wydzieliny ocenzono jako 0 (obfita wydzielina), 1 (umiarkowana wydzielina), 2 (niewielka wydzielina) i 3 (brak wydzieliny). Całkowity wynik histopatologiczny został obliczony jako suma wszystkich czterech parametrów, przy czym wyższe wyniki wskazują na poważniejsze uszkodzenie tkanki brzuszowej i stan zapalny28.
ELISA
Tkanki prostaty (100 mg) były płukane lodowato solą fizjologiczną z buforem fosforanowym (PBS) i homogenizowane w buforze lizy uzupełnionej inhibitorami proteazy. Homogenity były inkubowane w temperaturze 4 °C przez 30–120 minut i wirowane w 5000 × g przez 15 minut w 4 °C, aby zebrać supernatanty. Poziomy białka TNF-α i IL-6 mierzono za pomocą zestawów ELISA zgodnie z instrukcjami producenta. Standardy i próbki dodawano do płytek 96-dołkowych i inkubowano w temperaturze 37 °C, po czym następowała sekwencyjna inkubacja z biotinylowanymi przeciwciałami i sprzężonymi enzymami. Po umyciu dodawano roztwór podłoża do wywoływania koloru, a reakcję kończyno roztworem stopowym. Absorpcję zmierzono na 450 nm za pomocą czytnika mikropłyt. Stężenia cytokin były obliczane na podstawie standardowych krzywych.
qRT-PCR
Całkowite RNA zostało wyekstrahowane z tkanek prostaty metodą opartą na kolumnie i zmierzone przez pomiar absorpcji na 260 i 280 nm w celu oceny czystości. Próbki RNA zostały przepisane odwrotnie do cDNA w temperaturze 42 °C przez 15 minut przy użyciu zestawu do transkrypcji odwróconej. qRT-PCR wykonano za pomocą termocyklera w następujących warunkach: początkowa denaturacja w 95 °C przez 3 minuty, następnie 40 cykli 95 °C przez 10 s i 60 °C przez 30 s. Sekwencje pierwsze użyte w tym badaniu są wymienione w Tabeli Uzupełniającej 1. Sygnały fluorescencji zbierano podczas etapu wyżarzania/przedłużania. Poziomy ekspresji TNF-α i IL-6 zostały znormalizowane do wewnętrznego genu referencyjnego GAPDH. Relatywną ekspresję genów obliczono metodą 2−ΔΔCt .
Analiza statystyczna
Wszystkie dane prezentowane są jako średnia ± odchylenie standardowe (SD). Analizy statystyczne przeprowadzano za pomocą oprogramowania GraphPad Prism (wersja 10.1.2). Rozkład danych został oceniony pod kątem prawidłowości przed analizą. Różnice między wieloma grupami analizowano za pomocą jednokierunkowej analizy wariancji (ANOVA), a następnie testu post hoc Tukeya dla wielu porównań. Wartość p < 0,05 uznano za statystycznie istotną.