$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Wszystkie dane wykorzystane w niniejszym badaniu zostały uzyskane z publicznie dostępnych baz danych (TCGA, GEO i METABRIC). Nie było zaangażowanych ludzkich uczestników ani zwierząt; dlatego zatwierdzenie przez komitet etyczny instytucji i pisemna zgoda nie były wymagane.
Zbieranie i przetwarzanie danych
Dane ekspresji genów związane z opornością na tamoksyfen zostały pobrane z bazy danych Gene Expression Omnibus (GEO)10. Zbiór danych GSE67916 (Affymetrix Human Genome U133 Plus 2.0 Array) zawiera 18 próbek komórek raka piersi: 8 nieleczonych próbek kontrolnych i 10 próbek opornych na tamoksyfen wygenerowanych poprzez długotrwałą ekspozycję na lek. Dane sekwencjonowania RNA i odpowiednie informacje o dalszym przebiegu leczenia dla kohorty Rak Inwazyjny Piersi (TCGA-BRCA) zostały pobrane z The Cancer Genome Atlas (TCGA)11.
Surowe pliki CEL mikroarray przetwarzano w R (wersja 4.4.2) przy użyciu pakietu affy. Korekta tła i normalizacja zostały wykonane za pomocą algorytmu Robust Multi-array Average (RMA), w tym transformacja log2 i normalizacja kwantylowa. ID sond zostały przypisane do symboli genów za pomocą plików adnotacji platformy; dla genów z wieloma sondami użyto średniej wartości ekspresji. Dla danych TCGA RNA-seq wartości wartości transkryptów na milion (TPM) zostały przekształcone log2 [log2(TPM + 1)]. Próbki z niekompletnymi informacjami o przeżyciu lub brakującymi zmiennymi klinicznymi zostały wykluczone.
Identyfikacja różnicowej ekspresji genów
Różnicową ekspresję między próbkami opornymi na tamoksyfen a próbkami kontrolnymi oceniono za pomocą pakietu R limma12 z empiryczną moderacją Bayesa. Geny o wartości |log2 fold change| > 1 i wartości P skorygowanej < 0,05 (Benjamini-Hochberg FDR) zdefiniowano jako geny o różnicowej ekspresji (DEG).
Analiza wzbogacania funkcjonalnego
Analizy Gene Ontology (GO)13 i Kyoto Encyclopedia of Genes and Genomes (KEGG)14 przeprowadzono za pomocą pakietu R clusterProfiler15. Kategorie GO obejmowały proces biologiczny (BP), komponent komórkowy (CC) i funkcję molekularną (MF). Wartości P skorygowanego < 0,05 uważano za istotne.
Selekcja cech oparta na uczeniu maszynowym
Zastosowano trzy algorytmy uczenia maszynowego w celu zidentyfikowania genów hub: (1) regresja LASSO16 (pakiet glmnet) z 10-krotną walidacją krzyżową w celu wybrania optymalnego parametru kary (lambda.min); (2) Maszyna wektorowa - eliminacja rekurencyjna funkcji (SVM-RFE)17 (pakiet e1071) z pięciokrotną walidacją krzyżową w celu zidentyfikowania minimalnego podzbioru genów o najniższym błędzie klasyfikacji; (3) Las losowy (RF)18 (pakiet randomForest) z 500 drzewami (ntree = 500); geny zostały sklasyfikowane według MeanDecreaseGini. Geny zidentyfikowane za pomocą wszystkich trzech metod zdefiniowano jako geny hub.
Konstrukcja modelu ryzyka prognostycznego
Model prognostycznego ryzyka wielogenowego został skonstruowany na podstawie ekspresji genów TCGA-BRCA i danych dotyczących przeżycia. Geny związane z przeżyciem zostały przesięte za pomocą regresji Cox jednoczynnikowej, a następnie regresji Cox wieloczynnikowej w celu opracowania ostatecznego podpisu. Formuła wyniku ryzyka została obliczona jako: Wynik ryzyka = (0,01297 × CAMK1D) + (0,03021 × CHAC1) + (0,02018 × KIAA0513) + (0,00647 × MED13) + (0,00108 × NDRG1) + (0,04551 × STXBP5). Pacjenci zostali podzieleni na grupy wysokiego i niskiego ryzyka na podstawie średniej wartości wyniku ryzyka.
Ocena i walidacja modelu prognostycznego
Różnice w przeżyciu całkowitym między grupami oceniono za pomocą analizy Kaplan-Meier i testu log-rank. Wynik predykcyjny oceniono za pomocą krzywych ROC (pakiet pROC) i analizy ROC zależnej od czasu (pakiet timeROC). Nomograf integrujący wyniki ryzyka i zmienne kliniczne skonstruowano za pomocą pakietu rms. Wynik kalibracji oceniał zgodność między przewidywanymi a obserwowanymi prawdopodobieństwami przeżycia. Walidację zewnętrzną przeprowadzono w niezależnej kohorcie Molecular Taxonomy of Breast Cancer International Consortium (METABRIC)19 przy użyciu tej samej formuły i granicy.
Analiza infiltracji immunologicznej
Infiltrację komórek immunologicznych oszacowano za pomocą CIBERSORT20 z 1000 permutacjami na podstawie danych TCGA. Włączono próbki o wartości P < 0,05. Różnice w składzie komórek immunologicznych między grupami wysokiego i niskiego ryzyka oceniono za pomocą testu Wilcoxona-Manna-Whitneya, a korelacje między