Subskrypcja JoVE jest wymagana do oglądania tego materiału. Zaloguj się lub rozpocznij bezpłatny okres próbny.

Artykuł metodologiczny

Izolacja mikrobioty związanej z nasionami pomidora poprzez kontrolowane kiełkowanie i hodowle porównawcze

252 wyświetleń

⸱

DOI:

10.3791/72014

⸱

7 lipca 2026

 ,  ,  ,  , 

W tym artykule

Podsumowanie

Ten protokół łączy standaryzowaną sterylizację powierzchni nasion z kontrolowaną kiełkowaniem, aby umożliwić powtarzalne izolację mikrobioty związanej z nasionami pomidora podczas przejścia od nasiona do sadzonki. Podejście to poprawia odzyskiwanie hodowanych mikroorganizmów, które są niedostatecznie reprezentowane w suchych nasionach i wspiera porównawcze badania kulturowe podczas wczesnego rozwoju sadzonek.

Streszczenie

Sterylizacja powierzchniowa jest krytycznym, ale często nieoptymalizowanym etapem w badaniach mających na celu izolację mikroorganizmów związanych z nasionami, ponieważ zbyt surowocie traktowanie może zmniejszać lub zniekształcać endogenne populacje mikrobiomu. Ten protokół przedstawia powtarzalne podejście do izolacji hodowanych mikrobiomów związanych z nasionami pomidorów przy użyciu warunków sterylizacji powierzchniowej opartych na uprzednio zweryfikowanych metodologiach, w połączeniu z kontrolowaną kiełkowaniem nasion. Zamiast definiować uniwersalnie optymalne traktowanie sterylizacyjne, podejście to stosuje standaryzowane warunki, które można dostosować według cech nasion, minimalizując jednocześnie stronniczość i zachowując endogenne populacje mikrobiomu.

Aby zwiększyć odzyskiwanie hodowanych mikroorganizmów związanych z przejściem z nasion do siewek, protokół obejmuje kontrolowany etap kiełkowania przed izolacją mikrobiomu. W przeciwieństwie do konwencjonalnych podejść opartych na maceratowaniu suchych, niekiełkujących nasion, kontrolowane kiełkowanie promuje aktywację mikroorganizmów podczas przejścia z nasion do siewek w sterylnych warunkach. Porównawcze analizy jednostek tworzących kolonie (CFU) ekwiwalencyjnych replikat biologicznych, z których każda składa się ze zbiorczego materiału z 3–5 suchych nasion lub 3–5 kiełkujących siewek, ujawniły zauważalną zmianę w hodowanych społecznościach po kiełkowaniu. Rodzaje, które były słabo reprezentowane w suchych nasionach, wzbogaciły się po kiełkowaniu, podczas gdy inne taksony, które były bardziej obfite w suchych nasionach, zmniejszyły swoją względną reprezentację, co wspiera badania nad wczesnymi interakcjami roślina-mikrob w trakcie etapu rozwoju siewek.

W różnych replikatach biologicznych, rodzaje w tym Stutzerimonas, Stenotrophomonas oraz Priestia były konsekwentnie wzbogacone wśród izolaci pochodzących z kiełkujących siewek, podczas gdy Paenibacillus pozostawał obfity w różnych warunkach, ale wykazywał zauważalne zmiany w składzie na poziomie gatunków. Integrując standaryzowane warunki sterylizacji z kontrolowanym kiełkowaniem i porównawczą analizą materiału suchego i kiełkującego, ten protokół dostarcza solidnej i powtarzalnej ramy dla kulturowej izolacji mikrobiomu związanego z nasionami, o potencjalnym funkcjonalnym znaczeniu w wczesnym rozwoju siewek, i wspiera badania nad wczesnymi interakcjami roślina-mikrob w trakcie etapu rozwoju siewek.

Wprowadzenie

Nasiona są siedliskiem zróżnicowanych społeczności mikrobiologicznych składających się z bakterii i grzybów związanych zarówno z tkankami wewnętrznymi, jak i powierzchniami zewnętrznymi1,2,3. Mikroorganizmy te są coraz częściej uznawane za integralne elementy biologii roślin, ponieważ mogą one wpływać na kondycję rośliny już od najwcześniejszych etapów rozwoju, w tym na kiełkowanie, zakorzenianie się siewek oraz odpowiedzi na stresy biotyczne i abiotyczne1,2,3. Z perspektywy ekologic....

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Protokół

1. Przygotowanie odczynników, pożywek i materiałów sterylnych

  1. Przygotować 70% (v:v) roztwór etanolu, używając sterylnej wody destylowanej.
  2. Przygotować 20% (v:v) roztwór roboczy z komercyjnego wybielacza zawierającego 5% dostępnego podchlorynu sodu poprzez rozcieńczenie 20 mL wybielacza w 80 mL sterylnej wody destylowanej.
  3. Przygotować sterylną wodę destylowaną do etapów płukania.
  4. Przygotować sterylną 0,45% NaCl do homogenizacji i rozcieńczeń seryjnych i konsekwentnie stosować ten roztwór w całym procesie.
  5. Przygotować pożywkę agarową Luria Bertani (LB) (na litr: 10 g tryptonu, 5 g ekstraktu z drożdży, ....

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Wyniki

Przeprowadzenie sterylizacji powierzchniowej i kontrola kontaminacji zewnętrznej
Sterylizacja powierzchniowa w znormalizowanych warunkach, oparta na wcześniej zwalidowanych metodologiach, doprowadziła do skutecznej redukcji zewnętrznej kontaminacji mikrobiologicznej przy jednoczesnym zachowaniu możliwości odzyskania drobnoustrojów zdolnych do hodowli z materiału pochodzącego z nasion. Posiew końcowej wody płuczącej nie wykazał wykrywalnego wzrostu kolonii, co wskazuje na skuteczne usunięcie drobnoust.......

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Dyskusja

Przedstawione tutaj wyniki pokazują, że integracja standaryzowanej sterylizacji powierzchni z kontrolowanym kiełkowaniem nasion zapewnia solidne ramy dla kulturomicznej izolacji mikrobioty związanej z nasionami. Kluczowym wynikiem tego protokołu jest zdolność do zbilansowania skutecznego usuwania zewnętrznych zanieczyszczeń z zachowaniem endogennych populacji mikroorganizmów. Bilans ten jest krytyczny w badaniach opartych na hodowlaniach, gdzie zbyt rygorystyczna sterylizacja może zmniejszyć odzyskiwanie mikroorganizmów,.......

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

Autorzy deklarują, że nie mają żadnych konkurencyjnych interesów finansowych ani konfliktów interesów związanych z tą pracą. W niniejszej publikacji wykorzystano ilustracje koncepcyjne przygotowane przy użyciu sztucznej inteligencji.

Podziękowania

Autorzy dziękują ITQB NOVA (Uniwersytet NOVA w Lizbonie, Oeiras, Portugalia) oraz GREEN-IT Research Unit za dostęp do obiektów szklarniowych i infrastruktury wspierającej. Autorzy dziękują również firmie Semillas Fitó za uprzejme dostarczenie nasion pomidorów użytych w tym badaniu, z szczególnymi podziękowaniami dla dr. Narváez (technolog nasion, Semillas Fitó). Praca ta była wspierana przez FCT - Fundację dla Nauki i Technologii, I.P., poprzez jednostkę badawczo-rozwojową Green-it Bioresources for Sustainability (UID/04551/2025, DOI: 10.54499/UID/04551/2025; UID/PRR/04551/2025, DOI: 10.54499/UID/PRR/04551/2025) oraz związane laboratorium LS4FUTURE (LA/P/0087/2020, DO....

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
AgarSigma-Aldrich01916-500GSkładnik agaru LB; 15 g/L.
AutoklawLab1st SV120HSłuży do sterylizacji instrumentów/materiałów lub walidacji sterylizacji.
Zestaw do ekstrakcji DNA bakteriiPromocellPK-MB708-206-100Ekstrakcja DNA 
Ustawienia do liczenia/rejestrowania koloniiOCSB079Y5W57NPotrzebne do rejestrowania CFU, morfotypów i różnic między płytkami; w manuskrypcie nie określono licznika/modelu.
Fiołki do kriokonserwacjiSigma-AldrichZ359033Zakładany do przechowywania szczepów glicerynowych w -80 °C; nie zostały wymienione bezpośrednio, ale są potrzebne do etapu konserwacji.
System rejestracji izolacji cyfrowychNie określono w manuskrypcieNie dotyczySłuży do rejestracji meta danych izolacji: pochodzenie, replika, warunki, leczenie sterylizacyjne, data izolacji, środowisko płytkowe, morfologia, status identyfikacji.
EtanolVWR83813440Służy do przygotowania 70% v/v roztworu etanolu do sterylizacji powierzchni nasion.
Papier filtracyjnyFisher Scientific11718772Opcjonalne alternatywne podłoże do kiełkowania.
Pincety/szczypceSigma-Aldrich930229Służą do przenoszenia nasion i zbierania wykiełkowanych sadzonek.
Zestaw do ekstrakcji DNA genomowegoPromoCellPK-MB708-206-100Służy do ekstrakcji DNA genomowego z oczyszczonych kultur bakteryjnych; dokładny zestaw/metoda nie została określona.
Glicerol, sterylny 80%VWR24388364Mieszany 1:1 v/v z kulturą płynną do przygotowania kriostocku.
Kopuła przepływu laminarnego Bio48FasterLAB-CAP-22Wymagana do aseptycznego obchodzenia się z nasionami, transferów sterylizacyjnych i przygotowania sterylnych materiałów.
Medium agar LBVWR846495000Standardowe medium stosowane do porównawczej hodowliwania; na litr: 10 g tryptyzy, 5 g ekstraktu drożdżowego, 10 g NaCl, 15 g agaru.
Rurki mikrowirówkoweRatiolabRATI5615000Służą do sterylizacji nasion i przetwarzania próbek.
Medium MSSigmaM0404-10LWspomniane jako sterylne podłoże do kiełkowania w hodowli wolnej od bakterii.
NZYTaq II 2× Master mixNzytechMB35803Mieszanka PCR do amplifikacji
ParafilmParafilm/MerckHS234526ASłuży do uszczelniania płytek kiełkowych, zmniejszając jednocześnie zakażenie.
Miszki PetriegoLabboxPDIP-E9N-500Służą do ustawienia do kiełkowania, nakładania i obsługi wysterylizowanych nasion.
PhytoagarDuchefa Biochemie9002-18-0Wspomniane jako opcjonalne alternatywne sterylne podłoże do kiełkowania.
Zestaw pipet i końcówekMerckEP3123000918-1EASłużą do usuwania roztworów sterylizacyjnych, mycia, rozcieńczania i nakładania.
Medium agar R2AHI-MEDIAM1743-500GOpcjonalne dodatkowe medium do rozszerzonych przepływów kulturowych.
Chlorku sodu, NaClFisher Chemical10040460Służy do przygotowania sterylnego 0,45% NaCl do homogenizacji i rozcieńczeń szeregowych; jest również częścią medium LB.
Podchloryn soduCarlo Erba370323Służy do przygotowania 20% v/v roztworu podchlorynu sodu do sterylizacji powierzchni nasion. Materiał żrący; wymaga środków ochrony osobistej.
Sterylne jednorazowe tłuczkiEppendorfEP0030120973Służą do homogenizacji suchych nasion i wykiełkowanych sadzonek.
Mikser wirowyFisher Scientific15901137Służy do resuspendowania komórek mikrobiowych z homogenatów.

Bibliografia

  1. Barret M, et al. Emergence shapes the structure of the seed microbiota. Appl Environ Microbiol. 2015;81(4):1257-66.
  2. Nelson EB. The seed microbiome: Origins, interactions, and impacts. Plant Soil. 2018;422(1):7-34.
  3. Shade A, Jacques MA, Barret M. Ecological patterns of seed microbiome diversity, transmission, and assembly. Curr Opin Microbiol. 2017;37:15-22.
  4. Truyens S, Weyens N, Cuypers A, Vangronsveld J. Bacterial seed endophytes: Genera, vertical transmission and interaction with plants. Environ Microbiol Rep. 2015;7(1):40-50.
  5. Torres-Cortés G, et al. Differences in resource use lead to coexistence of seed-transmitted microbial population....

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Przedruki i uprawnienia

Przeglądaj więcej artykułów

BiologiaNumer 233Numer 233Wartość pustaNumerMikrobiom nasionKulturomikaSterylizacja powierzchniowaEndofityIzolacja drobnoustrojówInterakcje roślina-mikroorganizm