Method Article

Protokół izolacji neutrofili

DOI:

10.3791/745

July 23rd, 2008

In This Article

Summary

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Neutrofile są jednymi z pierwszych komórek, które docierają do miejsca zapalnej odpowiedzi immunologicznej, a ich funkcje i mechanizmy były intensywnie badane in vitro. Demonstrujemy standardową metodę separacji gradientu gęstości w celu wyizolowania ludzkich neutrofili z krwi pełnej przy użyciu dostępnych na rynku pożywek separacyjnych.

Abstract

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
Granulocyty wielojądrzaste neutrofilów (PMN) są najliczniejszymi leukocytami u ludzi i jednymi z pierwszych komórek, które docierają do miejsca zapalnej odpowiedzi immunologicznej. Ze względu na ich kluczową rolę w zapaleniu, funkcje neutrofili, takie jak lokomocja, produkcja cytokin, fagocytoza i walka komórek nowotworowych, są szeroko badane. Aby scharakteryzować specyficzne funkcje neutrofili, w badaniach in vitro pożądana jest czysta, szybka i niezawodna metoda oddzielania ich od innych komórek krwi, zwłaszcza że neutrofile są krótkotrwałe i powinny być zużyte w ciągu 2-4 godzin od pobrania. Tutaj demonstrujemy standardową metodę separacji gradientu gęstości w celu wyizolowania ludzkich neutrofili z krwi pełnej przy użyciu dostępnych na rynku pożywek separacyjnych, które są mieszaniną metrizoinianu sodu i dekstranu 500. Procedura polega na nałożeniu warstwy krwi pełnej na podłoże o gradiencie gęstości, odwirowaniu, oddzieleniu warstwy neutrofili i lizie pozostałych erytrocytów. Komórki są następnie przemywane, zliczane i ponownie zawieszane w buforze do pożądanego stężenia. Wykazano, że przy prawidłowym wykonaniu metoda daje próbki >95% neutrofili o żywotności >95%.

Protocol

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

 Protokół izolacji neutrofili

  1. Doprowadź wszystkie odczynniki do temperatury pokojowej.
  2. Zebrać 5,0 ml pożywki do izolacji neutrofili w probówce wirówkowej. Ostrożnie nałożyć 5,0 ml krwi na podłoże separacyjne. Wykonaj ten krok powoli i ostrożnie, trzymając końcówkę pipety blisko powierzchni pożywki, aby uniknąć mieszania się krwi z podłożem.
  3. Wirować przy 500 RCF przez 35 minut w temperaturze 20-25°C. Krew powinna rozdzielić się na 6 odrębnych prążków: osocze, monocyty, pożywki izolacyjne, neutrofile, więcej pożywek izolacyjnych i osad krwinek czerwonych (ryc. 1). Jeśli te pasma nie są wyraźne, oznacza to, że proces separacji nie był czysty i będzie musiał zostać powtórzony.
  4. Ostrożnie usuń trzy górne warstwy (osocze, monocyty i pożywkę izolacyjną) za pomocą pipety. Pozbądź się tych warstw.
  5. Ostrożnie odpipetować warstwę neutrofili i wszystkie pożywki izolacyjne znajdujące się pod neutrofilami. Umieść roztwór w czystej probówce wirówkowej.
  6. Rozcieńczyć roztwór neutrofili do 10 ml HBSS bez Ca2+/Mg2+. Odwróć rurkę kilka razy, aby zawiesić komórki.
  7. Odwirować roztwór neutrofili o stężeniu 350 RCF przez 10 minut. Na dnie probówki powinna znajdować się czerwona osadka zawierająca neutrofile i resztkowe krwinki czerwone (RBC). Ostrożnie usunąć supernatant za pomocą pipety, aby nie naruszyć osadu.
  8. Aby zlizować resztki krwinek czerwonych, dodaj do probówki 2 ml buforu do lizy krwinek czerwonych. Aby ponownie zawiesić osad, należy przemieszać fiolkę z nastawem 3-4. Unikaj zwiększania ustawienia wiru powyżej 4, ponieważ może to spowodować aktywację neutrofili. Może być konieczne wirowanie przez kilka sekund lub "pulsowanie" wiru w celu rozpuszczenia granulki.
  9. Odwirować probówkę o temperaturze 250 RCF przez 5 minut. Usunąć supernatant za pomocą pipety. W razie potrzeby powtórz proces lizy.
  10. Do każdej probówki dodać 500 μl HBSS bez Ca2+/Mg2+. Ponownie przekręć wir, aby ponownie zawiesić granulkę w ustawieniu 3-4. Rozcieńczyć do 10 ml HBSS bez Ca2+/Mg2+.
  11. Odwirować probówki o temperaturze 250 RCF przez 5 minut. Odessać supernatant i wyrzucić.
  12. Zawiesić osad w 250 μl roztworu HBSS/HSA (2% HSA). Komórki można następnie policzyć i dostosować do pożądanego stężenia.

 

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Discussion

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Metoda separacji w gradionym gradiencie gęstości służy do izolowania ludzkich neutrofili z krwi pełnej przy użyciu mieszaniny metrizoinianu sodu i dekstranu 500. Metoda ta opiera się na metodzie rozdzielania leukocytów jednojądrzastych przez Bojuma (1968), która została zmodyfikowana do separacji neutrofili przez Ferrante i Thonga (1980).

Po pobraniu od dawcy krew pełna może być antykoagulowana EDTA, cytrynianem lub heparyną. Ponieważ są krótkotrwałe, neutrofile należy zużyć w ciągu 2-4 godzin...

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Acknowledgements

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Finansowanie z NIH R01 HL56621.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
Odczynnik Lymphocyte Poly(R)ReagentCedarlane LabsPolymorphprepTM może być stosowany jako alternatywa
Hank' s Zrównoważony roztwór soli bez odczynnika chlorku wapniaOdczynnikInvitrogen
Odczynnikbuforowy do lizy czerwonych krwinek
Narzędzie
PolymorphprepTMOdczynnikAxis-ShieldAlternatywny odczynnik do filtra strzykawkowego z limfocytów i poli(R)
InneEMD MilliporeSLGV033RSMillex-GV, 0,22 μ m, PVDF, 33 mm, Hank' ze sterylizacją promieniową
s Równoważący roztwór soli z odczynnikiem chlorku wapniaInvitrogen
albuminy ludzkiej surowicy bioplazmy Narzędzie do wirówki Grupy Roche Narzędzie do wirowania Pipety Pasteura i żarówka

References

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Boyum, A. Separation of leucocytes from blood and bone marrow. Scand. J. Clin. Invest. 21, Suppl 97. 77-83 (1968).
  2. England, J. M., Rowan, R. M. The assignment of values to fresh blood used for calibrating automated blood cell counters. Clin. Lab. Haemat. 10, 203-212 (1988).
  3. Garcia, A. Comparison of two leukocyte extraction methods for cytomegalovirus antigenemia assay. J. Clin. Microbiol. 34, 182-184 (1996).
  4. Ferrante, A., Thong, Y. H. Optimal conditions for simultaneous purification of mononuclear and polymorphonuclear leucocytes from human peripheral blood by the Ficoll-Hypaque method. J. Immunol. Methods. 36, 109-109 (1980).

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Tags

Neutrophil IsolationDensity Gradient SeparationWhole Blood CentrifugationRed Blood Cell LysisHBSS Solution PreparationHuman Serum AlbuminNeutrophil Viability AssessmentCell Washing ProtocolCentrifuge OperationBlood Sample Handling

Related Articles