Transkryptomika odkrywcza identyfikuje szeroki program ekspresji związany z DFU
Zbiór GSE199939 posłużył jako kohorta odkrywcza i obejmował 10 próbek z DFU oraz 11 próbek kontrolnych (Rysunek 1A). Analiza głównych składowych ekspresji znormalizowanej metodą VST wykazała wyraźny podział grup; główne składowe 1 i 2 wyjaśniały odpowiednio 34,8% i 15,1% całkowitej wariancji (Rysunek 1B).
Użycie |log2 krotność zmiany > 1 i skorygowane metodą BH p < 0,05; analiza różnicowej ekspresji zidentyfikowała 3691 DEG, w tym 1247 genów o zwiększonej ekspresji w DFU oraz 2444 genów o zmniejszonej ekspresji w DFU (Rycina 1C). 50 najważniejszych DEG utworzyło wzorzec ekspresji o silnej strukturze grupowej (Rycina 1D). spośród sześciu genów wybranych w dalszej kolejności, MMP1 wykazało największą zmianę w kohorcie odkrywczej (log2 zmiana krotności (fold change) = 9,854; skorygowana p = 1.24 × 10-29).
Moduł koekspresji związany z DFU pokrywa się z DEG i genami związanymi z DPN
Analizę WGCNA przeprowadzono na 5 000 najbardziej zmiennych genach poddanych transformacji VST. Dla sieci podpisanej wybrano wartość miękkiego progu odcięcia (soft-thresholding power) równą 18, aby zrównoważyć dopasowanie do topologii bezskalowej i łączność (Rysunek 2A). Klasteryzacja hierarchiczna i dynamiczne wykrywanie modułów pozwoliły na zidentyfikowanie wielu modułów koekspresji (Rysunek 2B). Moduł niebieski wykazał najsilniejszą pozytywną korelację z DFU (Pearson r = 0,97, p = 5 × 10-13; Rysunek 2C). Odpowiednie podsumowania kontroli jakości dotyczące klasteryzacji próbek oraz wielkości modułów przedstawiono na Rysunku dodatkowym 1A,B.
W obrębie modułu niebieskiego 689 genów spełniło kryteria węzłów (hubs) |MM| > 0,8 oraz |GS| > 0.5 (Rycina 2D). Przecięcie 3691 DEG, 689 genów węzłowych modułu niebieskiego oraz 1062 genów związanych z DPN pozwoliło na wyłonienie 77 wspólnych genów kandydackich (Rycina 2E). Uproszczony widok sieci hubów modułu niebieskiego oraz statystyki najwyżej sklasyfikowanych hubów przedstawiono w Rycina uzupełniająca 2A, B.
Wielometodowa selekcja cech priorytetyzuje sześć genów, ale wykazuje przeuczenie w kohorcie odkrywczej
Analizę 77 wspólnych genów przeprowadzono przy użyciu metod LASSO, lasów losowych (random forest) oraz SVM-RFE. Metoda LASSO przy wybranej karze pozwoliła wyłonić siedem genów: MMP1, MMP13, TRPV2, CCL7, AURKA, MKI67i CHEK1 (Rycina 3A). Filtrowanie metodą lusu losowego (random forest) pozwoliło na zachowanie 41 genów o istotności równej lub wyższej od średniej, w tym pięciu członków końcowego panelu spośród najwyżej sklasyfikowanych cech (Rysunek 3B). Metoda SVM-RFE uzyskała wartość AUC równą 1,00 dla każdego ocenionego zagnieżdżonego podzbioru; zgodnie z regułą rozstrzygania remisów na rzecz najmniejszego rozmiaru, CHEK1 wybrano jako podzbiór jedno genowy (Rycina 3C), co budzi obawy dotyczące przeuczenia modelu oraz zbyt optymistycznej oceny w kohorcie odkrywczej. Odpowiednie wykresy ekspresji, mapa ciepła oraz krzywe ROC dla kohorty odkrywczej przedstawione są w Rycina uzupełniająca 3A–C.
Żaden gen nie został wybrany przez wszystkie trzy metody. Zachowanie genów wspartych przez co najmniej dwie metody pozwoliło wyłonić CCL7, CHEK1, MKI67, MMP1, MMP13 oraz TRPV2 (Rycyna 3D). Adnotacja GO tych sześciu genów wykazała funkcje związane z demontażem macierzy zewnątrzkomórkowej, procesami katabolicznymi i metabolicznymi kolagenu, kondensacją chromosomów oraz funkcjami metaloendopeptydazy (wszystkie p po korekcie BH < 0,05; Rycina 3E). Analiza KEGG zidentyfikowała sygnalizację interleukiny-17 (IL-17) (CCL7/MMP1/MMP13; skorygowane p = 1,81 × 10-4) oraz sygnalizację relaksyny (MMP1/MMP13; skorygowane p = 0,0175; Rycina 3F). Wyniki wzbogacenia zostały wykorzystane do scharakteryzowania funkcji biologicznych reprezentowanych przez panel sześciu genów.
Ocena międzyzbiorowa wykazuje niejednorodne wsparcie dla MMP1
W połączonej macierzy GSE68183/GSE80178 (9 DFU i 6 kontroli), poziomy CCL7, MMP1 i MMP13 różniły się między grupami po korekcie BH dla sześciu genów (skorygowane p = odpowiednio 0,0168, 0,0159 i 0,0431; Rysunek 4A). CHEK1, MKI67 oraz TRPV2 nie osiągnęły skorygowanego progu istotności (skorygowane p = 0,259, 0,680 i 0,259). Analiza ROC dla pojedynczych genów wykazała wartości AUC wynoszące 0,944 dla CCL7 (95% CI, 0,825–1,000), 0,704 dla CHEK1 (0,403–1,000), 0,574 dla MKI67 (0,243–0,905), 0,981 dla MMP1 (0,930–1,000), 0,870 dla MMP13 (0,686–1,000) oraz 0,722 dla TRPV2 (0,447–0,997; Rysunek 4B). Wartości ROC uznano za wstępne, ponieważ procedura łączenia i korekty efektu serii (batch-correction) nie została w pełni udokumentowana.
W zbiorze GSE134431 (13 próbek DFU i 8 nieowrzodziałych próbek DFS), ekspresja MMP1 była wyższa w DFU niż w DFS w teście Wilcoxona przy nominalnym poziomie istotności (p = 0.0225), choć powiązanie to nie pozostało istotne po korekcie BH (skorygowane p = 0.135; Rycina 4C). Pozostałe pięć genów nie wykazało istotnych różnic między grupami. MMP1 wykazało również najwyższą opisową wartość AUC, wynoszącą 0.808 (95% CI, 0.589–1.000), podczas gdy wartości AUC dla pozostałych kandydatów mieściły się w zakresie od 0.529 do 0.635 (Rycina 4D). Ogólnie rzecz biorąc, MMP1 wykazało najbardziej spójny wzorzec opisowy spośród sześciu kandydatów, jednak replikacja statystyczna była niepełna.
Analiza pojedynczych komórek lokalizuje MMP1 przede wszystkim w fibroblastach
Zestaw danych z pojedynczych komórek zawierał 69 944 komórek z 24 próbek (14 DFU i 10 kontrolnych) i obejmował 10 adnotowanych typów komórek (Rycina 5A). Lokalna wizualizacja cech UMAP MMP1 ekspresja ograniczona do określonych obszarów komórkowych, zamiast jednorodnej ekspresji w całym atlasie (Rysunek 5B). Ogólnie 3799 komórek (5,43%) zostało znormalizowanych MMP1 ekspresja większa od zera. Fibroblasty wykazywały najwyższą średnią znormalizowaną ekspresję (0,181) oraz największą całkowitą MMP1frakcja dodatnia (7,88%; Rysunek 5C).
Na poziomie próbek średnia ekspresja MMP1 była wyższa w próbkach DFU niż w próbkach kontrolnych w keratynocytach, fibroblastach i komórkach śródbłonka. Po korekcie BH dla wszystkich badanych typów komórek, każde z tych porównań miało skorygowaną wartość p wynoszącą 0,0214 (keratynocyty: 9 próbek kontrolnych i 14 próbek DFU; fibroblasty: 10 i 14; komórki śródbłonka: 10 i 14; Rysunek 5D). Odsetek komórek wykazujących pozytywną ekspresję MMP1 wzrósł z 5,86% do 9,29% w fibroblastach, z 0,026% do 6,68% w keratynocytach oraz z 0,29% do 2,67% w komórkach śródbłonka (Rysunek 5E).
Korelacje wyników modułów na poziomie pojedynczych komórek były umiarkowane. Najsilniejszą dodatnią korelację zaobserwowano dla wyniku modułu starzenia/fenotypu wydzielniczego związanego ze starzeniem (SASP) (rho Spearmana = 0,274), a następnie dla przebudowy macierzy zewnątrzkomórkowej (rho = 0,240), ferroptozy (rho = 0,197) oraz aktywacji fibroblastów (rho = 0,170). Rycina 5F). Porównanie MMP1wysoki i MMP1- fibroblasty o niskiej ekspresji wykazywały wzbogacenie w zakresie organizacji macierzy zewnątrzkomórkowej, organizacji struktur zewnątrzkomórkowych, organizacji włókien kolagenowych, przetwarzania glikoprotein oraz terminów związanych z fałdowaniem białek (Rycina 5G). Te opisowe wyniki powiązały MMP1-wysoki stan fibroblastów w odniesieniu do procesów związanych z przebudową macierzy. Dodatkowe analizy UMAP na poziomie grup, podsumowania próbek dla wszystkich typów komórek oraz kontekst wyników funkcjonalnych znajdują się w Rycina uzupełniająca 4A–CPowiązania na poziomie pojedynczych komórek nie były traktowane jako dowody niezależne od dawcy.
Pokrycie sieci priorytetyzuje składniki powiązane z MMP1 oraz zioła kandydackie
Przefiltrowana tabela relacji zioło-składnik-cel zawierała 561 unikalnych rekordów łączących 99 ziół, 14 składników oraz pięć z sześciu potencjalnych celów. Najczęstszym celem był MMP1 z 156 rekordami, a następnie CHEK1 (120), MMP13 (102), MKI67 (100) oraz TRPV2 (83; Rysunek 6A). Wśród składników kwercetyna i luteolina wykazywały najszerszy zakres występowania w ziołach, będąc powiązanymi odpowiednio z 83 i 62 ziołami. Berberyna była powiązana z 10 ziołami; te trzy składniki zostały wykorzystane jako składniki kluczowe w regule priorytetyzacji (Rysunek 6B).
Wskaźnik pokrycia najwyżej sklasyfikował wspólnie Guanhuangbo, Mahuang i Niuxi (wynik = 38 dla każdego; Rysunek 6C). Każdy z nich obejmował wszystkie pięć dostępnych celów i zawierał dwa składniki powiązane z MMP1. Macierz składnik-cel wykazała, że kwercetyna zapewniała najszersze pokrycie w panelu celów, podczas gdy luteolina i berberyna dostarczyły dodatkowej łączności skoncentrowanej wokół MMP1 (Rysunek 6D). Skoncentrowana sieć powiązała wiodące zioła z reprezentatywnymi składnikami oraz pięcioma dostępnymi celami (Rysunek 6E). Wyniki te pozwoliły zidentyfikować kombinacje zioło-składnik-cel o wysokim pokryciu w bazach danych do dalszej oceny. Uzupełniające macierze pokrycia zioło-cel i składnik-rdzeń przedstawiono na Rysunku uzupełniającym 5A,B.
Wstępne testy na sparowanych tkankach wykazują wyższą zawartość mRNA i białka MMP1
Analiza Western blot wykazała wyższą zawartość MMP1 w próbkach z DFU niż w odpowiadających im nieowrzodziałych próbkach z otoczenia rany (Rycyna 7A,B). Dla trzech dopasowanych par średnia różnica (DFU minus otoczenie rany) w stosunku MMP1/kofilin wyniosła 0,3553 (95% CI, 0,1959–0,5147; obustronny sparowany test t, t(2) = 9,592, p = 0,0107). Pomiary sparowane dla każdego pacjenta przedstawiono na Rycynie 7B. Po uśrednieniu pięciu powtórzeń technicznych dla każdego genu w każdej próbce, qPCR wykazała wyższą znormalizowaną zawartość mRNA MMP1 w każdej z czterech próbek z DFU w porównaniu z odpowiadającą im próbką z otoczenia rany (Rycyna 7C). Średnia różnica ΔCq wewnątrz pacjenta (DFU minus otoczenie rany) wyniosła −2,6035 (95% CI, −2,8024 do −2,4046; obustronny sparowany test t, t(3) = −41,663, p = 3,04 × 10−5), co odpowiada geometrycznej średniej zwiększonej 6,08-krotnie (95% CI, 5,30–6,98). Te obserwacje przy małej próbie mają charakter wstępny i nie potwierdzają efektu funkcjonalnego.
W zbiorach danych z etapu odkryć oraz zewnętrznych zbiorach danych masowych, MMP1 wykazywał najbardziej spójny wzorzec opisowy spośród sześciu priorytetowych genów, choć replikacja statystyczna była niepełna. Podsumowania z analizy pojedynczych komórek wykazały najwyższą średnią ekspresję w fibroblastach, a sparowane pomiary WB od trzech pacjentów oraz sparowane pomiary qPCR od czterech pacjentów wykazały wyższą obfitość MMP1. Obserwacje te wskazują na MMP1 jako kandydata związanego z DFU do dalszych badań. Cały schemat oceny od analizy obliczeniowej do analizy tkankowej został podsumowany na Rysunku uzupełniającym 6.
DOSTĘPNOŚĆ DANYCH:
Publiczne zbiory danych transkryptomicznych są dostępne w bazie NCBI Gene Expression Omnibus pod numerami dostępu GSE199939, GSE68183, GSE80178, GSE134431 oraz GSE165816. Dostępne skrypty do analizy i generowania rycin, przetworzone tabele ekspresji i wyników, ilościowe tabele źródłowe do rycin, tabele wyników statystycznych, oryginalny arkusz roboczy i projekt instrumentu qPCR oraz dostarczone nieprzycięte obrazy western blot znajdują się w Pliku uzupełniającym 1. Archiwum zawiera również wyodrębnione metadane komórek i historię poleceń z odzyskanego obiektu pojedynczych komórek, raporty weryfikacji typów macierzy oraz manifest plików. Plik uzupełniający 1 zawiera historyczne pliki źródłowe oraz folder R2_Updates, w którym znajdują się poprawione tabele źródłowe dla analiz sparowanych, wyniki statystyczne, kod do generowania rycin oraz skorygowany spis parametrów. Pełny przeanalizowany plik Seurat RDS jest wskazany w dokumentacji archiwum, ale nie został dołączony do tego uzupełniającego pliku ZIP. Pełna historia łączenia próbek bulk, oryginalne ustawienia filtrowania i adnotacji pojedynczych komórek oraz szczegóły oryginalnego odejmowania tła z blotów i kwantyfikacji ścieżek nie są w pełni dostępne; ograniczenia te opisano w protokole i dyskusji. Lokalnie odzyskany plik RDS nie został przekazany do publicznego repozytorium.

Rysunek 1: Transkryptomika odkrywcza identyfikuje program ekspresji związany z DFU. (A) Przegląd schematu obliczeniowego, obejmujący konstrukcję zestawu genów DPN i analizę odkrywczą GSE199939, integrację sieci i uczenia maszynowego, ocenę w próbkach bulk oraz w pojedynczych komórkach, a także przewidywanie zależności składnik-cel-zioło w TCM. (B) Analiza głównych składowych dla profili ekspresji GSE199939 ze stabilizacją wariancji z 10 próbek DFU i 11 próbek kontrolnych. Elipsy wskazują 90% obszary grup; procenty oznaczają wariancję wyjaśnioną przez każdą składową. (C) Wykres wulkaniczny wyników różnicowej ekspresji DESeq2 dla DFU w stosunku do kontroli. Punkty czerwone i turkusowe oznaczają geny odpowiednio z zwiększoną ekspresją w DFU i kontroli, przy zastosowaniu |log2 fold change| > 1 i skorygowanej wartości p według metody BH < 0,05; punkty szare nie spełniły obu progów. (D) Mapa ciepła wyników z-score dla wierszy dla 50 genów z najniższymi skorygowanymi wartościami p. Kolumny przedstawiają próbki biologiczne, a pasek adnotacji oznacza grupę. DEGs, geny różnicowo eksponowane; DFU, stopa cukrzycowa; DPN, cukrzycowa polineuropatia obwodowa; VST, transformacja stabilizująca wariancję. Końcowa ocena eksperymentalna jest opisana w protokole i na Rysunku 7. qPCR, ilościowa reakcja polimerazy łańcuchowej; TCM, tradycyjna medycyna chińska; RF, lasy losowe; LASSO, operator najmniejszego bezwzględnego kurczenia i selekcji; SVM-RFE, rekurencyjna eliminacja cech z wykorzystaniem maszyny wektorów wspierających. Aby zobaczyć powiększoną wersję tego rysunku, kliknij tutaj.

Rysunek 2: WGCNA i wcześniejsza wiedza na temat DPN wskazują na 77 genów kandydackich. (A) Ocena progu miękkiego podpisanej sieci dla 5 000 najbardziej zmiennych genów po transformacji VST. Wybrana potęga wyniosła beta = 18; linia przerywana oznacza docelowe dopasowanie topologii bezskalowej na poziomie 0,85. (B) Dendrogram genów z wiązaniem średnim z dynamicznym przypisaniem kolorów modułów. (C) Korelacje Pearsona między eigengenami modułów a binarną cechą DFU. Każda komórka przedstawia współczynnik korelacji i odpowiadającą mu dwustronną wartość p; kolor wskazuje kierunek i wielkość. (D) Istotność genu (GS) dla DFU w stosunku do przynależności do modułu (MM) w module niebieskim. Niebieskie punkty spełniają warunek |module membership| > 0,8 i |gene significance| > 0,5; n = 689 genów hub. (E) Przecięcie trzech zbiorów: 3 691 DEG, 689 genów hub modułu niebieskiego oraz 1 062 genów związanych z DPN, co dało 77 wspólnych kandydatów. DFU, stopa cukrzycowa; DPN, cukrzycowa polineuropatia obwodowa; GS, istotność genu; MM, przynależność do modułu; WGCNA, ważona analiza sieci współekspresji genów. Kohorta odkrywcza zawierała 21 próbek (10 DFU i 11 kontrolnych). Adnotacja na Rysunku 2D wykorzystuje |MM| > 0,8 i |GS| > 0,5, co odpowiada kryterium wartości bezwzględnej zweryfikowanemu w oryginalnym kodzie selekcji. Kliknij tutaj, aby wyświetlić powiększoną wersję tego rysunku.

Rysunek 3: Priorytetyzacja cech przy użyciu wielu metod prowadzi do wyłonienia panelu sześciu genów. (A) Krzywa pięciokrotnej walidacji krzyżowej dla binomialnej regresji LASSO. Pionowe linie przerywane oznaczają lambda.min oraz lambda.1se; wybrano cechy niezerowe przy lambda.1se, chyba że ta kara nie wskazała żadnej cechy. (B) Średni spadek indeksu Gini w lasach losowych dla 20 najwyżej ocenionych genów z modelu składającego się z 1 000 drzew. Czerwone słupki identyfikują członków końcowego panelu sześciu genów; linia przerywana oznacza średnią istotność użytą jako próg retencji dla całego zestawu kandydatów. (C) AUC LOOCV dla liniowego SVM-RFE w zagnieżdżonych podzbiorach cech. Wszystkie rozmiary podzbiorów dały AUC = 1.00; CHEK1 został wybrany zgodnie z zasadą najmniejszego rozmiaru w przypadku remisu, co wskazuje na przeuczenie (overfitting) w kohorcie odkrywczej. (D) Macierz wsparcia metod dla CCL7, CHEK1, MKI67, MMP1, MMP13 oraz TRPV2. Kropki oznaczają wybór przez LASSO, lasy losowe lub SVM-RFE; ostatnia kolumna podaje liczbę metod wspierających. (E) Wybrane terminy Gene Ontology wzbogacone wśród sześciu genów. Położenie punktu wskazuje stosunek genów, etykiety punktów wskazują liczbę zmapowanych genów, kolor wskazuje -log10 skorygowanej metodą BH wartości p, a boczny pasek oznacza ontologię. (F) Szlaki KEGG wzbogacone wśród zmapowanych genów. Położenie punktu wskazuje krotność wzbogacenia, etykiety rozmiaru punktów wskazują liczbę zmapowanych genów, a kolor rozróżnia szlaki. Wzbogacenie wymagało nominalnej wartości p < 0.05 oraz skorygowanej metodą BH wartości p < 0.05. AUC, pole pod krzywą charakterystyki operacyjnej odbiornika; BH, Benjamini-Hochberg; BP, proces biologiczny; CC, komponent komórkowy; KEGG, Kyoto Encyclopedia of Genes and Genomes; LOOCV, walidacja krzyżowa z pominięciem jednej próbki; MF, funkcja molekularna; SVM-RFE, rekurencyjna eliminacja cech z wykorzystaniem maszyn wektorów nośnych. LASSO, operator najmniejszego bezwzględnego kurczenia i selekcji. Panele A–D wykorzystują 21 próbek odkrywczych (10 DFU i 11 kontroli). W panelu A słupki błędów oznaczają błąd standardowy błędu walidacji krzyżowej. Kliknij tutaj, aby wyświetlić większą wersję tego rysunku.

Rycina 4: Międzyzbiorowa ocena bulk-transkryptomiczna panelu sześciu genów. (A) Ekspresja sześciu genów w połączonej macierzy GSE68183/GSE80178 (6 kontroli i 9 próbek DFU). (B) Odpowiadające im krzywe ROC dla pojedynczych genów wraz z wartościami AUC; 95% przedziały ufności podano w tabeli danych źródłowych. Ze względu na niepełną dokumentację procesu łączenia danych i korekty efektu serii (batch correction), wyniki te zinterpretowano jako wstępne. (C) Ekspresja log2(RPKM + 1) w GSE134431 (8 próbek DFS bez owrzodzeń i 13 próbek DFU). (D) Odpowiadające im krzywe ROC i wartości AUC. Na wykresach (A) i (C) pola reprezentują medianę i rozstęp międzykwartylny, wąsy sięgają 1,5-krotności rozstępu międzykwartylnego, a punkty reprezentują próbki biologiczne. Gwiazdki oznaczają istotność nominalną z dwustronnych testów sum rang Wilcoxona (*p < 0.05, **p < 0.01); wartości p skorygowane metodą BH dla sześciu genów podano w tekście i tabeli danych źródłowych. Kierunek ROC został wybrany automatycznie przez pROC. AUC, pole pod krzywą charakterystyki operacyjnej odbiornika; DFS, nieowrzodzona skóra stopy cukrzycowej; DFU, owrzodzenie stopy cukrzycowej; RPKM, liczba odczytów na kilobazę na milion zmapowanych odczytów; ROC, charakterystyka operacyjna odbiornika. Kliknij tutaj, aby wyświetlić powiększoną wersję tej ryciny.

Rysunek 5: Lokalizacja w pojedynczych komórkach wiąże MMP1 z sygnałami fibroblastów i przebudowy macierzy. (A) UMAP z 69 944 komórek z 24 próbek (10 kontrolnych i 14 próbek DFU), pokolorowany według 10 adnotacji typów komórek wyznaczonych przez SingleR. (B) Wykresy cech UMAP pokazujące znormalizowaną ekspresję MMP1 w komórkach kontrolnych i DFU. (C) Podsumowanie typów komórek dla średniej znormalizowanej ekspresji MMP1; rozmiar punktów i etykiety oznaczają całkowitą frakcję komórek MMP1-dodatnich, zdefiniowaną jako ekspresja znormalizowana > 0. (D) Średnia ekspresja MMP1 na poziomie próbek w komórkach śródbłonka, fibroblastach i keratynocytach. Pudełka przedstawiają medianę i rozstęp międzykwartylny; punkty to próbki biologiczne. Dwustronne testy sum rang Wilcoxona zostały uzupełnione korekcją BH dla wszystkich testowanych typów komórek. Dostępna liczba próbek wynosiła 10 kontrolnych i 14 DFU dla komórek śródbłonka i fibroblastów oraz 9 kontrolnych i 14 DFU dla keratynocytów. (E) Frakcje komórek MMP1-dodatnich w zależności od grupy i typu komórek. (F) Korelacje Spearmana na poziomie pojedynczych komórek między ekspresją MMP1 a wynikami modułów funkcjonalnych. (G) Wzbogacenie procesów biologicznych GO wśród genów upregulowanych w fibroblastach z wysoką ekspresją MMP1 w porównaniu do fibroblastów z niską ekspresją MMP1. BH, Benjamini-Hochberg; DFU, stopa cukrzycowa; ECM, macierz zewnątrzkomórkowa; GO, Gene Ontology; HSC, hematopoetyczne komórki macierzyste; UMAP, uniform manifold approximation and projection. Korelacje na poziomie komórkowym oraz wzbogacenie uwarunkowane ekspresją w panelach F i G są opisami eksploracyjnymi, bez potwierdzającego wnioskowania uwzględniającego dawcę. Niezależność na poziomie próbek wymaga weryfikacji identyfikatorów dawców. Kliknij tutaj, aby wyświetlić większą wersję tego rysunku.

Rysunek 6: Przewidywanie składników-celów-ziół TCM w oparciu o stopień pokrycia, skoncentrowane na MMP1. (A) Liczba przefiltrowanych rekordów z bazy danych dla par zioło-składnik-cel dla każdego dostępnego kandydata na cel. (B) Liczba powiązanych ziół dla najczęstszych składników; kolor morski oznacza składniki powiązane z MMP1. (C) Główne zioła uszeregowane według wyniku pokrycia; złote słupki wskazują trzy najwyższe wspólne wyniki. (D) Macierz składnik-cel dla reprezentatywnych składników o wysokim stopniu pokrycia. Wartości w komórkach wskazują liczbę powiązanych ziół; puste komórki oznaczają brak rekordu w przefiltrowanej tabeli relacji. (E) Skoncentrowana sieć łącząca reprezentatywne, wysoko sklasyfikowane zioła, składniki i kandydatów na cele. Kolor węzła oznacza typ encji; szare krawędzie zioło-składnik oznaczają zawartość, a morskie krawędzie składnik-cel oznaczają powiązania w bazie danych. Przefiltrowana tabela relacji zawierała 561 unikalnych rekordów, 99 ziół, 14 składników i pięć celów z kwalifikującymi się powiązaniami; CCL7 został przedstawiony jako odizolowany szósty węzeł kandydujący. TCM, tradycyjna medycyna chińska. Kliknij tutaj, aby wyświetlić powiększoną wersję tego rysunku.

Rysunek 7: Wstępna ocena ekspresji MMP1 w tkankach pacjentów z DFU za pomocą qPCR i western blot. (A) Reprezentatywny western blot przedstawiający zawartość białka MMP1 w nieowrzodziałej tkance okołorannej oraz tkance DFU, z kofiliną jako kontrolą ładunku. (B) Stosunki MMP1 do kofiliny odzyskane z oryginalnego projektu wykresów. Symbole przedstawiają poszczególne pomiary biologiczne z trzech par pacjentów; linie łączą dopasowane próbki z obszaru okołorannego i DFU. Dwustronny test t dla prób zależnych wykazał t(2) = 9,592 i p = 0,0107. (C) Względna zawartość mRNA MMP1 w czterech potwierdzonych przez autorów dopasowanych parach pacjentów: NC–DFU, NC1–DFU1, NC2–DFU2 oraz NC3–DFU3. Średnie z pięciu technicznych dołków ACTB oraz pięciu technicznych dołków MMP1 obliczono oddzielnie dla każdej próbki przed wyznaczeniem ΔCq. Ekspresję względną obliczono metodą 2−ΔΔCq, przyjmując średnie ΔCq dla tkanki okołorannej jako wspólny kalibrator. Każdy symbol reprezentuje jedną próbkę biologiczną; linie łączą dopasowane tkanki. Dwustronny test t dla prób zależnych przeprowadzono na wartościach ΔCq na poziomie próbki (t(3) = −41,663; p = 3,04 × 10−5), a nie na krotnościach zmian z dołków technicznych. Nie zastosowano gwiazdek istotności. Dołki techniczne nie są powtórzeniami biologicznymi. Kontrola oznacza nieowrzodziałą tkankę okołoranną. Cq, cykl kwantyfikacji. Wartości p dla analizy tkankowej są nominalne i mają charakter eksploracyjny. Kliknij tutaj, aby wyświetlić większą wersję tego rysunku.
| Gen | Numer dostępu RefSeq | Starter forward 5' do 3' | Starter reverse 5' do 3' |
| MMP1 | NM_002421 | ATGAAGCAGCCCAGATGTGGAG | TGGTCCACATCTGCTCTTGGCA |
| ACTB | NM_001101.5 | CACCATTGGCAATGAGCGGTTC | AGGTCTTTGCGGATGTCCACGT |
Tabela 1: Sekwencje starterów do ilościowej walidacji PCR dla MMP1. Podano sekwencje oligonukleotydów bezpośrednich i odwrotnych (5′–3′) oraz numery dostępowe transkryptów NCBI RefSeq dla ludzkich genów MMP1 (NM_002421) oraz ACTB (NM_001101.5). ACTB (β-aktyna) służył jako gen referencyjny dla względnej ekspresji MMP1.
Rycina uzupełniająca 1: Podsumowania kontroli jakości WGCNA. (A) Hierarchiczna analiza skupień z zastosowaniem średniego wiązania dla próbek GSE199939 na podstawie 5 000 genów o najwyższej zmienności po stabilizacji wariancji. Etykiety próbek są pokolorowane według grup; przerywana pozioma linia to pomocniczy wskaźnik wysokości dendrogramu dla 95. percentyla, używany do wizualnej oceny wartości odstających. (B) Liczba genów przypisanych do każdego modułu WGCNA. Słupki w kolorze morskim oznaczają osiem modułów innych niż szary, które spełniły kryterium powiązania z DFU; słupki szare oznaczają pozostałe moduły. DFU, stopień cukrzycowy; VST, transformacja stabilizująca wariancję; WGCNA, analiza ważonej sieci koekspresji genów. Kliknij tutaj, aby pobrać ten plik.
Rycina uzupełniająca 2: Wsparcie dla koekspresji modułu niebieskiego. (A) Uproszczona sieć koekspresji 25 najwyżej sklasyfikowanych genów hubowych modułu niebieskiego. spośród korelacji parzystych z |r| > 0,70, wyświetlona sieć zawiera sumę dwóch najsilniejszych powiązań każdego genu. Wielkość węzła oznacza stopień w tej wyświetlonej, rzedkiej sieci, a wypełnienie węzła oznacza istotność genu dla DFU. (B) Istotność genów i przynależność do modułu niebieskiego dla 15 najwyżej sklasyfikowanych hubów. Podzbiór krawędzi został wybrany w celu zwiększenia czytelności i nie reprezentuje wszystkich kwalifikujących się korelacji. DFU, stopa cukrzycowa; GS, istotność genu; MM, przynależność do modułu. Kliknij tutaj, aby pobrać ten plik.
Rycina dodatkowa 3: Wyświetlenia uczenia maszynowego dla wewnętrznej kohorty odkrywczej. (A) Skalowana ekspresja CCL7, CHEK1, MKI67, MMP1, MMP13 oraz TRPV2 w kohorcie odkrywczej GSE199939. Prostokąty reprezentują medianę i rozstęp międzykwartylny, a punkty reprezentują próbki biologiczne. (B) Mapa ciepła z-score dla wierszy na poziomie próbek dla tych samych sześciu genów. Skrócone etykiety próbek są przypisane do identyfikatorów GEO w kluczu danych źródłowych. (C) Krzywa ROC dopasowanego wielogenowego modelu kohorty odkrywczej. Wartość AUC wynosząca 1.00 została uzyskana poprzez dopasowanie i ocenę modelu na tych samych 21 próbkach, co wskazuje na przeuczenie w kohorcie odkrywczej. AUC, pole powierzchni pod krzywą charakterystyki operacyjnej odbiornika; ROC, charakterystyka operacyjna odbiornika. Kohorta odkrywcza zawierała 21 próbek (10 DFU i 11 kontroli). Prosimy kliknąć tutaj, aby pobrać ten plik.
Rycina uzupełniająca 4: Kontekst ekspresji w pojedynczych komórkach. (A) UMAP 69 944 komórek z podziałem na grupę kontrolną i grupę DFU. (B) Średnia ekspresja MMP1 na poziomie próbek biologicznych dla wszystkich 10 przypisanych typów komórek; punkty reprezentują próbki, a oś X wykorzystuje transformację pierwiastkową w celu wizualizacji. (C) Mapa ciepła wyników modułów funkcjonalnych podsumowanych dla komórek w obrębie każdego przypisanego typu komórek i zestandaryzowanych wewnątrz każdego modułu. DFU, diabetic foot ulcer (stopa cukrzycowa); UMAP, uniform manifold approximation and projection. Prosimy kliknąć tutaj, aby pobrać ten plik.
Rycina dodatkowa 5: Pomocnicze macierze pokrycia TCM. (A) Liczba rekordów zbazy danych dla ziół i celów dla 18 najwyżej sklasyfikowanych ziół z pokryciem powiązanym z MMP1 oraz pięciu potencjalnych celów przedstawionych w przefiltrowanej tabeli relacji. (B) Liczba rekordów w bazie danych łączących te same zioła z głównymi składnikami: kwercetyną, luteoliną i berberyną. Wartości w komórkach oznaczają unikalne rekordy bazy danych po usunięciu duplikatów. TCM, tradycyjna medycyna chińska. Kliknij tutaj, aby pobrać ten plik.
Rysunek uzupełniający 6: Schemat analizy obliczeniowej i oceny tkankowej. Schemat podsumowuje dane wejściowe do analizy odkrywczej, przecięcie DEG/WGCNA, eksploracyjny wybór cech, zewnętrzną ocenę bulk, kontekst jednokomórkowy, rozszerzenie TCM oraz ocenę ekspresji w dopasowanych tkankach. Do qPCR wykorzystano cztery dopasowane pary pacjentów, a do western blotting trzy dopasowane pary pacjentów. Liczba kandydatów oraz zgłoszone wyniki obliczeniowe zostały zachowane z oryginalnej analizy. Ograniczeniami pozostają: dane TPM w przepływie odkrywania opartym na liczbach, niekompletne oryginalne zapisy preprocessingu jednokomórkowego oraz małe kohorty w badaniach tkankowych. Schemat nie sugeruje, że analizy odkrywcze zostały ponownie zwalidowane. Kliknij tutaj, aby pobrać ten plik.
Tabela uzupełniająca 1: Inwentarz oprogramowania analitycznego, baz danych, parametrów i ograniczeń. Niniejszy arkusz dokumentuje 26 kroków analizy, zawierając opis kroku analitycznego, narzędzia lub bazy danych, zgłoszoną wersję, dane wejściowe, główne parametry, dane wyjściowe oraz brakujące informacje lub ograniczenia. Obejmuje on transkryptomikę odkrywczą, WGCNA, screening genów i wybór cech, analizę wzbogacenia, zewnętrzne analizy bulk i single-cell, analizę sieci TCM oraz raportowanie wyników badań tkankowych. Tabela rejestruje dostępne informacje metodologiczne i sama w sobie nie ustanawia niezależnej powtarzalności. Prosimy kliknąć tutaj, aby pobrać ten plik.
Plik uzupełniający 1: Archiwum danych, kodu analitycznego oraz źródeł postaci i analiz. Archiwum to zawiera dostępne skrypty do analizy i generowania postaci, przetworzone tabele ekspresji i wyników, postaci ilościowe oraz źródłowe dane statystyczne, oryginalny arkusz roboczy i projekt instrumentu qPCR, dostarczone nieprzycięte obrazy western blot, wyekstrahowane metadane i historię poleceń z poziomu pojedynczych komórek, raporty weryfikacji typu macierzy oraz manifest plików. Zachowano pliki historyczne; folder R2_Updates zawiera poprawioną analizę testów sparowanych, zaktualizowane źródła postaci oraz zrewidowany spis parametrów. Kliknij tutaj, aby pobrać ten plik.