Subskrypcja JoVE jest wymagana do oglądania tego materiału. Zaloguj się lub rozpocznij bezpłatny okres próbny.

Artykuł metodologiczny

Model niedotlenienia i niedokrwienia mózgu w perinatalnym niedokrwieniu

35.8K wyświetleń

DOI:

10.3791/955

19 listopada 2008

W tym artykule

Podsumowanie

Postnatalny model niedotlenienia i niedokrwienia mózgu u szczura jest uznanym modelem ludzkiej noworodkowej encefalopatii niedotlenieniowo-niedokrwiennej (HIE). W niniejszym artykule opisujemy model HIE u postnatalnych szczurząt.

Streszczenie

Encefalopatia niedotlenowo- Niedokrwienna (HIE) jest następstwem układowej asfiksji występującej podczas narodzin. Dwudziestu pięciu procent noworodków z HIE rozwija ciężkie i trwałe następstwa neuropsychologiczne, w tym opóźnienie w rozwoju intelektualnym, mózgowe porażenie dziecięce oraz epilepsję. Skutki HIE są wyniszczające i nieodwracalne, co sprawia, że krytyczne staje się zidentyfikowanie i opracowanie strategii terapeutycznych mających na celu zmniejszenie uszkodzeń mózgu u noworodków z HIE. W tym celu opracowano szczurzy model noworodkowy uszkodzenia mózgu wskutek niedotlenienia i niedokrwienia, aby modelować ten stan u ludzi. Model HIE został po raz pierwszy zwalidowany przez Vannucciego i wsp. 1, a od tego czasu jest szeroko stosowany do identyfikacji mechanizmów uszkodzenia mózgu wynikających z okołoporodowego niedotlenienia i niedokrwienia 2 oraz do testowania potencjalnych interwencji terapeutycznych 3,4. Model HIE jest procesem dwuetapowym i polega na podwiązaniu lewej tętnicy szyjnej wspólnej, a następnie wystawieniu na środowisko hipoksyjne. Przepływ krwi mózgowej (CBF) w półkuli ipsilateralnej względem podwiązanej tętnicy szyjnej nie ulega zmniejszeniu ze względu na krążenie oboczne przez krąg Willisa; jednak przy niższym ciśnieniu tlenu CBF w półkuli ipsilateralnej znacznie spada, co prowadzi do jednostronnego uszkodzenia niedokrwiennego. Zastosowanie chlorku 2,3,5-trifenylotetrazolu (TTC) do barwienia i identyfikacji niedokrwiennej tkanki mózgowej zostało pierwotnie opracowane dla dorosłych modeli niedokrwienia mózgu u gryzoni 5 i jest wykorzystywane do oceny zakresu zawału mózgu we wczesnych punktach czasowych do 72 godzin po wystąpieniu niedokrwienia 6. W tym filmie demonstrujemy model uszkodzenia niedotlenowo-niedokrwiennego w postnatalnym mózgu szczura oraz ocenę wielkości zawału przy użyciu barwienia TTC.

Protokół

Protokół ten został zatwierdzony przez Instytucjonalny Komitet ds. Opieki i Korzystania ze Zwierząt na Uniwersytecie Stanforda i jest zgodny z wytycznymi Narodowych Instytutów Zdrowia (NIH) dotyczącymi wykorzystywania zwierząt doświadczalnych.

Model HIE u noworodka szczura

  1. Szczury Sprague-Dawley w 7. dobie po urodzeniu (PND 7; Charles River Laboratories, Inc., Wilmington, MA) są w pełni znieczulane izofluranem (Aerrane, Baxter, Deerfield, IL; 3-4% do indukcji i 1-2% do podtrzymania znieczulenia).
  2. W okolicy szyi wykonuje się małe nacięcie (Extra Thin Iris Scissors #14088-10, Fine Science Tools Inc, Foster City, CA), aby odsłonić lewą wspólną tętnicę szyjną (CCA).
  3. Tętnicę CCA podwiązuje się jedwabną nicią 5-0 (5-0 silk, Ethicon, Somer, NJ).
  4. Nacięcie zamyka się klejem cyjanoakrylowym (Elmers Products Inc, Columbus, OH). Nacięcie zostaje zaklejone taśmą, a znieczulenie jest przerywane. Szczury są zwracane do matki i pozostawione do rekonwalescencji na 1-2 godziny.
  5. Następnie szczury są umieszczane w komorze hipoksycznej zawierającej 8% tlenu zrównoważonego z 92% azotem na 100 minut w temperaturze 37°C. Gaz składający się z 8% tlenu i 92% azotu (Airgas, Sacramento, CA) przepływa przez rurkę do klatki z plastikową pokrywą. Pokrywa jest dopasowana do klatki i posiada dwa otwory o średnicy 2 cm, z których jeden służy do wprowadzenia rurki podłączonej do butli z 8% tlenem, a drugi umożliwia odpływ gazu. Komora jest umieszczana w łaźni wodnej i rozgrzewana przed użyciem; termometr wewnątrz komory musi wskazać 37°C przed rozpoczęciem hipoksji.
  6. Po 100 minutach hipoksji szczury są ponownie zwracane do matki w celu regeneracji.
  7. 24 godziny po zakończeniu hipoksji szczury są uśmiercane poprzez głębokie znieczulenie izofluranem. Tkanka mózgowa jest perfundowana zimną solą fizjologiczną, a następnie roztworem zimnego 1% TTC w soli fosforanowej (PBS), pH 7.4 (Sigma Chemical Co, St Louis, MO). TTC musi być przechowywane w ciemności.
  8. Mózgi są usuwane i chłodzone przez 1-2 minuty na lodzie, a następnie wycina się cztery przekroje wieńcowe w odstępach 3 mm (poziomy 1-4), zaczynając od strony rostralnej na poziomie skrzyżowania wzrokowego i lejka, co odpowiada poziomowi 1,8 ~ 2,0 mm od bregmy w mózgu dorosłej myszy.
  9. Plastry mózgu są zanurzone w roztworze TTC i inkubowane w 37°C przez 8 minut, a następnie utrwalane w 4% paraformaldehydzie w PBS przez noc. Ze względu na światłoczułość TTC, plastry należy chronić przed światłem w tym czasie.
  10. Przekroje zabarwione TTC są skanowane i digitalizowane. Za pomocą programu Image J (NIH, Bethesda, MD) dla każdego poziomu mierzy się: obszar zawału (obszar niezabarwiony), powierzchnię półkuli ipsilateralnej oraz powierzchnię półkuli kontralateralnej. Procent obszaru zawału na plaster oblicza się jako: (powierzchnia zawału/powierzchnia półkuli ipsilateralnej) lub A1, A2, A3 i A4. Procentowa objętość zawału jest obliczana jako suma (A1 + A2 + A3 + A4) * 3mm. Powierzchnie uszkodzeń kory lub prążkowia mogą być również osobno ilościowo określone w podobny sposób.

Reprezentatywne wyniki

Postęp urazu mózgu myszy, schemat eksperymentu; badanie poziomów uszkodzeń od 1 do 4 w tkance mózgowej.
Rysunek 1. Reprezentatywne poziomy coronalne 1-4 w HIE barwione TTC.

Przekroje koronalne barwione TTC wykazują obszar zawału (na biało).

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Dyskusja

Gryzoniowy model postnatalnego HIE (encefalopatii niedotlenieniowo-ischemicznej) jest uznanym modelem, który odzwierciedla niedotlenienie mózgu występujące w okresie okołoporodowym u noworodków. Obszerne badania charakterystyki histologicznej i immunocytochemicznej wykazały, że 7-dniowe gryzonie wykazują dojrzałość mózgu analogiczną do ludzkiego płodu w trzecim trymestrze 7. Model HIE u gryzoni dostarczył cennych informacji na temat mechanizmów uszkodzenia mózgu w wyniku niedotlenienia okołoporodowego 2

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Podziękowania

Finansowane przez American Heart Association oraz March of Dimes.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
szczury Sprague-Dawley (młode)ZwierzęCharles River Laboratories
izofluranChirurgiaBaxter Internationl Inc.
mieszanka gazowa 8% tlenu / 92% azotuChirurgiaAirgas
chlorek 2,3,5-trifenylotetrazoliumOdczynnikSigma-AldrichT8877
bufor fosforanowy (PBS) pH 7.4OdczynnikGIBCO, by Life Technologies
paraformaldehydOdczynnikSigma-AldrichP6148

Bibliografia

  1. Rice, J. E. 3rd, Vannucci, R. C., Brierley, J. B. The influence of immaturity on hypoxic-ischemic brain damage in the rat. Annals of neurology. 9 (2), 131-141 (1981).
  2. Vannucci, R. C., Vannucci, S. J. Perinatal Hypoxic-Ischemic Brain Damage: Evolution of an Animal Model. Dev Neurosci. 27 (2-4), 81-86 (2005).
  3. Bona, E., Hagberg, H., Loberg, E. M. Protective effects of moderate hypothermia after neonatal hypoxia-ischemia: short- and long-term outcome. Pediatric research. 43 (6), 738-738 (1998).
  4. Trescher, W. H., Ishiwa, S., Johnston, M. V. Effects of hypothermia and hyperthermia on attentional and spatial learning deficits following neonatal hypoxia-ischemic insult in rats. Behavioural brain research. 151 (1-2), 209-209 (2004).
  5. Mishima, K., Ikeda, T., Yoshikawa, T. Brief post-hypoxic-ischemic hypothermia markedly delays neonatal brain injury. Brain development. 19 (5), 326-326 (1997).
  6. Young, R. S., Olenginski, T. P., Yagel, S. K. The effect of graded hypothermia on hypoxic-ischemic brain damage: a neuropathologic study in the neonatal rat. Stroke; a journal of cerebral circulation. 14 (6), 929-929 (1983).
  7. Bederson, J. B., Pitts, L. H., Germano, S. M., et al. Evaluation of 2,3,5-triphenyltetrazolium chloride as a stain for detection and quantification of experimental cerebral infarction in rats. Stroke; a journal of cerebral circulation. 17 (6), 1304-1304 (1986).
  8. Cai, J., Kang, Z., Liu, W. W. Hydrogen therapy reduces apoptosis in neonatal hypoxia-ischemia rat model. Neuroscience letters. 441 (2), 167-167 (2008).
  9. Grow, J., Barks, J. D. Pathogenesis of hypoxic-ischemic cerebral injury in the term infant: current concepts. Clinics in perinatology. 29 (4), 585-585 (2002).
  10. Aden, U., Halldner, L., Lagercrantz , H., et al. Aggravated brain damage after hypoxic ischemia in immature adenosine A2A knockout mice. Stroke; a journal of cerebral circulation. 34 (3), 739-739 (2003).

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Przedruki i uprawnienia

Tagi

Noworodkowy model szczurapodwiązanie tętnicy szyjnejekspozycja w komorze hipoksyjnejbarwienie TTCanaliza zawału mózgumózgowe przepływy krwisiódmy dzień postnatalnyszczur Sprague Dawleyanaliza w programie Image J