-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

PL

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

pl_PL

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Science Education
Environmental Sciences
Analiza populacji dżdżownic w glebie
Video Quiz
Analiza populacji dżdżownic w glebie
JoVE Science Education
Environmental Science
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
JoVE Science Education Environmental Science
Analysis of Earthworm Populations in Soil

1.15: Analiza populacji dżdżownic w glebie

17,457 Views
07:03 min
February 23, 2015
AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Overview

Źródło: Laboratoria Margaret Workman i Kimberly Frye - Depaul University

Używając musztardy, Lumbricus terrestris populacji dżdżownic można pobierać bezpośrednio z głębokości gleby bez zakłócania krajobrazu lub toksyczności. Dżdżownice można następnie policzyć do celów analizy danych i analizy statystycznej za pomocą wykresu słupkowego i testu t-Studenta.

Monitorowanie populacji dżdżownic jest istotną techniką dla naukowców zajmujących się ochroną środowiska, ponieważ wiele gatunków dżdżownic (w szczególności te z podrzędu Lumbricina) rozprzestrzenia się inwazyjnie w Ameryce Północnej i Ameryce Południowej. Egzotyczne dżdżownice można znaleźć na prawie każdej masie lądowej i w prawie każdym ekosystemie na planecie, a to, gdzie i kiedy te gatunki stają się inwazyjne, było przedmiotem międzynarodowych badań środowiskowych. 1

Inwazja ekologiczna zazwyczaj obniża różnorodność biologiczną ekosystemu poprzez bezpośrednią konkurencję, zagrożenie lub w inny sposób przyczynianie się do wyginięcia gatunków rodzimych. Jako inżynierowie ekosystemu, inwazyjne gatunki dżdżownic zmieniają obieg składników odżywczych poprzez tempo rozkładu materii organicznej na górnych poziomach gleby, gdzie korzenie roślin wydobywają składniki odżywcze. Inwazyjne gatunki Lumbricus wytępiły rodzime gatunki dżdżownic i wykazano, że zwiększają dostępne stężenie azotu i dawki azotu w zaatakowanych glebach. 2 W pętli dodatniego sprzężenia zwrotnego, przyspieszony poziom azotu sprawia, że system jest bardziej gościnny dla inwazyjnych gatunków roślin, które są przystosowane do wysokiego poziomu azotu w porównaniu z rodzimymi gatunkami roślin, i będzie konkurować z rodzimymi w zjawisku znanym jako "topnienie inwazji". Zaproponowano zależność między topnieniem inwazji a inwazyjnym gatunkiem dżdżownic Lumbricus terrestris (dżdżownica europejska) i inwazyjnym gatunkiem rośliny Rhamnus cathartica (kruszyna pospolita). 3

Procedure

1. Przygotowanie roztworu koncentratu musztardy

  1. Włącz wagę, umieść łódź do ważenia na górze i wyzeruj wagę.
  2. Odważ 38,1 g mielonej musztardy orientalnej do łódki wagowej i przenieś do plastikowego pojemnika z nakrętką.
  3. Odmierz 100 ml wody z kranu w cylindrze z miarką i dodaj do plastikowego pojemnika z musztardą.
  4. Zamocuj nakrętkę na pojemniku i energicznie potrząsaj, aż cała musztarda zostanie wymieszana z dna plastikowego pojemnika i rozpuszczona w wodzie z kranu.
  5. Pozostaw roztwór na 24 godziny, aby uzyskać maksymalną ekstrakcję kapsaicyny z musztardy.
  6. Napełnij dwa pojemniki na wodę o pojemności 8 l do połowy wodą z kranu (około 4 l wody do każdego pojemnika).
  7. Wstrząśnij koncentratem musztardy kilka razy, aby wymieszać, a następnie przenieś roztwór koncentratu musztardy do nośnika wodnego.
  8. Przenieść niewielką ilość roztworu z nośnika wody z powrotem do pojemnika na koncentrat i energicznie wstrząsnąć. Wlać z powrotem do nośnika wodnego, aby przenieść cały koncentrat do rozcieńczonego roztworu.
  9. Uszczelnij korek zbiornika wody, upewnij się, że zawór nasadowy jest w pozycji "OFF" i trzykrotnie odwróć nośnik wody, aby równomiernie wymieszać.

2. Ekstrakcja dżdżownic

  1. Oznacz trzy kubki na próbki dla każdego miejsca pobrania.
  2. Udać się do miejsca pobierania próbek z jednym kwadratem, oznakowanymi kubkami do pobierania próbek z pokrywkami i nośnikiem wodnym z rozcieńczonym roztworem musztardy.
  3. W miejscu pobierania próbek usuń zarośla, liście lub ściółkę w jak największym stopniu, aby wyraźnie odsłonić ziemię.
  4. Umieść kwadrat losowo na ziemi w oczyszczonym miejscu.
  5. Odwróć jeden nośnik wody jeszcze trzy razy, aby wymieszać.
  6. Przekręć zawór nasadki nośnika wody do pozycji "ON" i wlej około jednej trzeciej (1,3 l) rozcieńczonego roztworu musztardy do kwadratu, koncentrując się na środku obszaru kwadratu. Jeśli gleba zostanie nasycona, a roztwór gromadzi się, przestań nalewać i poczekaj, aż kałużowy roztwór wniknie do gleby, zanim będziesz kontynuował nalewanie.
  7. Uważnie obserwuj obszar kwadratu pod kątem pojawienia się dżdżownic przez pięć minut, w tym obszar bezpośrednio pod bokami kwadratu.
  8. Użyj kleszczy, aby zebrać wszystkie dżdżownice, które pojawiają się w obszarze kwadratu, czekając, aż robaki całkowicie wyłonią się z ziemi przed przeniesieniem do pierwszego kubka na próbkę. Po pięciu minutach przykryj kubek na próbkę i przejdź do następnego miejsca pobierania próbek.
  9. Powtórz kroki pobierania dla wszystkich miejsc pobierania próbek, z trzema powtórzeniami na miejsce pobierania (łącznie 6 powtórzeń)

3. Porównanie gęstości populacji dżdżownic między miejscami skupu

  1. Policz liczbę dżdżownic zebranych dla każdej próbki i oblicz średnią oraz odchylenie standardowe dla każdego miejsca pobrania.
  2. Aby porównać zagęszczenie dżdżownic między miejscami zbiórki, utwórz wykres słupkowy ze średnich i użyj odchyleń standardowych, aby utworzyć słupki błędów na wykresie.

Monitorowanie populacji dżdżownic ma kluczowe znaczenie dla naukowców zajmujących się ochroną środowiska, ponieważ inwazyjne egzotyczne dżdżownice można znaleźć w prawie każdym ekosystemie na naszej planecie. Inwazja ekologiczna zazwyczaj obniża różnorodność biologiczną ekosystemu poprzez bezpośrednią konkurencję, zagrożenie lub przyczynienie się do wytępienia lub lokalnego wyginięcia gatunków rodzimych.

Lumbricus terrestris gatunek europejskiej dżdżownicy, zwany także nightcrawlerem, jest niezwykle powszechny w Ameryce Północnej, ale nie jest rodzimy. W rezultacie znacznie wytępił rodzime gatunki dżdżownic. Lumbricus terrestris zmienia obieg składników odżywczych poprzez rozkład materii organicznej w górnych warstwach gleby, gdzie korzenie roślin wydobywają składniki odżywcze, zmieniając w ten sposób strukturę warstwy gleby. Ponadto warstwa szczątków organicznych, zawierająca większość rozkładającego się materiału, który dostarcza składników odżywczych, jest całkowicie tracona.

Te inwazyjne robaki zwiększają również dostępne stężenie azotu w zaatakowanych glebach. Z kolei zmieniające się warstwy gleby i wysoki poziom azotu sprawiają, że gleba jest bardziej przyjazna dla inwazyjnych gatunków roślin, takich jak kruszyna pospolita, które są lepiej przystosowane do wysokiego poziomu azotu w porównaniu z rodzimymi gatunkami roślin. Zjawisko to znane jest jako "krach inwazyjny"

Topnienie roślin w wyniku inwazji dżdżownic europejskich i egzotycznych roślin, takich jak kruszyna pospolita, ma kluczowe znaczenie, ponieważ dramatycznie zmniejsza różnorodność roślin leśnych w Ameryce Północnej.

Film ten zademonstruje monitorowanie dżdżownic europejskich w różnych obszarach parków w celu oceny ich podatności na inwazję kruszyny.

Aby określić populacje dżdżownic na zaatakowanych obszarach, robaki są bezpośrednio ekstrahowane z gleby za pomocą roztworu kapsaicyny.

W tym eksperymencie kapsaicyna jest ekstrahowana z ostrej musztardy i wylewana bezpośrednio na glebę w obszarze określonym przez wstępnie zwymiarowany kwadrat lub kwadrat. Następnie przenika przez matrycę glebową do miejsca, w którym przebywają dżdżownice.

Roztwór kapsaicyny powoduje podrażnienie błon śluzowych dżdżownicy. Dżdżownice reagują na podrażnienie, przemieszczając się na powierzchnię gleby, aby uciec z roztworu kapsaicyny. Po wynurzeniu na powierzchnię zbiera się dżdżownice i analizuje gęstość zaludnienia.

Poniższy eksperyment pokaże ekstrakcję dżdżownic z gleby i analizę ich populacji.

Najpierw przygotuj roztwór kapsaicyny co najmniej 24 godziny wcześniej, ważąc 38 g mielonej ostrej musztardy orientalnej i przenosząc ją do plastikowego pojemnika z nakrętką. Dodaj 100 ml wody z kranu do plastikowego pojemnika zawierającego musztardę. Załóż nakrętkę na pojemnik i energicznie potrząsaj, aż cała musztarda rozpuści się w wodzie.

Pozostaw roztwór na 24 godziny, aby uzyskać maksymalną ekstrakcję kapsaicyny z musztardy. Po zakończeniu ekstrakcji kapsaicyny rozcieńczyć roztwór musztardy 4 l wody w 8-litrowym nośniku wodnym. Wstrząśnij kilkakrotnie roztworem musztardy, aby wymieszać i przenieś go do nośnika wody. Opłucz resztki musztardy rozcieńczonym roztworem.

Uszczelnij korek zbiornika wody i upewnij się, że zawór jest w pozycji "OFF". Odwróć nośnik wody trzy razy, aby równomiernie wymieszać. Przygotować jeden pojemnik z roztworem kapsaicyny dla każdego miejsca testowego.

Udać się do miejsca pobierania próbek z kwaratem i nośnikiem wodnym zawierającym rozcieńczony roztwór musztardy. Przynieś również trzy kubki na próbki na miejsce. Powinny one być odpowiednio oznakowane dla trzech powtórzeń na miejsce pobierania próbek.

Umieść kwadrat losowo na ziemi w oczyszczonym miejscu. Usuń zarośla, liście i ściółkę tak bardzo, jak to możliwe, aby wyraźnie odsłonić glebę. Ponownie wymieszaj rozcieńczony roztwór, a następnie ustaw zawór nasadowy w pozycji ON.

Wlej około jednej trzeciej rozcieńczonego roztworu musztardy do kwadratu, koncentrując większość płynu w środku obszaru kwadratu. Jeśli gleba zostanie nasycona i utworzy kałuże, przerwij nalewanie i poczekaj, aż kałużowy roztwór przeniknie do gleby, zanim przejdziesz dalej.

Obserwuj uważnie obszar kwadratu przez 5 minut, szukając pojawienia się dżdżownic. Pamiętaj, aby zajrzeć bezpośrednio pod boki kwadratu.

Poczekaj, aż wszystkie dżdżownice wyłonią się z gleby w obszarze kwadratu, a następnie zbierz je kleszczami. Po 5 minutach zamknij kubek na próbkę i przejdź do następnego miejsca pobierania próbek.

Powtórz kroki pobierania dla wszystkich miejsc pobierania próbek. Wróć do każdej lokacji i wykonaj 3 replikacje na lokację. Policz liczbę dżdżownic zebranych dla każdej próbki, a następnie oblicz średnią i odchylenie standardowe dla każdego miejsca pobrania.

Utwórz wykres słupkowy, aby porównać średnią gęstość populacji dżdżownic między miejscami zbiórki. Użyj odchylenia standardowego, aby utworzyć słupki błędów. Teren pierwszy jest parkiem zarządzanym i dlatego jest bardziej gościnny dla populacji dżdżownic ze względu na zakłócenia, takie jak napowietrzanie i nawozy. Stanowisko drugie jest niezagospodarowane i dlatego jest mniej gościnne dla populacji dżdżownic.

Egzotyczne dżdżownice i kruszyna pospolita zostały zamieszane w "krach inwazyjny", do którego doszło, zwłaszcza w środkowo-zachodnich Stanach Zjednoczonych. Śledzenie populacji dżdżownic może pomóc w wyjaśnieniu relacji między tymi dwoma gatunkami inwazyjnymi i umożliwić naukowcom opracowanie metod zapobiegania dalszemu rozprzestrzenianiu się.

Właśnie obejrzałeś wprowadzenie JoVE do ekstrakcji i analizy populacji dżdżownic. Powinieneś teraz zrozumieć zasady ekstrakcji dżdżownic z gleby i porównania między miejscami pobierania próbek. Dzięki za oglądanie!

Transcript

Monitorowanie populacji dżdżownic ma kluczowe znaczenie dla naukowców zajmujących się ochroną środowiska, ponieważ inwazyjne egzotyczne dżdżownice można znaleźć w prawie każdym ekosystemie na naszej planecie. Inwazja ekologiczna zazwyczaj obniża różnorodność biologiczną ekosystemu poprzez bezpośrednią konkurencję, zagrożenie lub przyczynienie się do wytępienia lub lokalnego wyginięcia gatunków rodzimych.

Gatunek Lumbricus terrestris dżdżownicy europejskiej, zwanej także nightcrawlerem, jest niezwykle powszechny w Ameryce Północnej, ale nie jest rodzimy. W rezultacie znacznie wytępił rodzime gatunki dżdżownic. Lumbricus terrestris zmienia obieg składników odżywczych poprzez rozkład materii organicznej w górnych warstwach gleby, gdzie korzenie roślin wydobywają składniki odżywcze, zmieniając w ten sposób strukturę warstwy gleby. Ponadto warstwa szczątków organicznych, zawierająca większość rozkładającego się materiału, który dostarcza składników odżywczych, jest całkowicie tracona.

Te inwazyjne robaki zwiększają również dostępne stężenie azotu w zaatakowanych glebach. Z kolei zmieniające się warstwy gleby i wysoki poziom azotu sprawiają, że gleba jest bardziej przyjazna dla inwazyjnych gatunków roślin, takich jak kruszyna pospolita, które są lepiej przystosowane do wysokiego poziomu azotu w porównaniu z rodzimymi gatunkami roślin. Zjawisko to znane jest jako "krach inwazyjny".

Topnienie roślin w wyniku inwazji dżdżownic europejskich i egzotycznych roślin, takich jak kruszyna pospolita, ma kluczowe znaczenie, ponieważ dramatycznie zmniejsza różnorodność roślin leśnych w Ameryce Północnej.

Film ten zademonstruje monitorowanie dżdżownic europejskich w różnych obszarach parków w celu oceny ich podatności na inwazję kruszyny.

Aby określić populacje dżdżownic na zaatakowanych obszarach, robaki są bezpośrednio ekstrahowane z gleby za pomocą roztworu kapsaicyny.

W tym eksperymencie kapsaicyna jest ekstrahowana z ostrej musztardy i wylewana bezpośrednio na glebę w obszarze określonym przez wstępnie zwymiarowany kwadrat lub kwadrat. Następnie przenika przez matrycę glebową do miejsca, w którym przebywają dżdżownice.

Roztwór kapsaicyny powoduje podrażnienie błon śluzowych dżdżownicy. Dżdżownice reagują na podrażnienie, przemieszczając się na powierzchnię gleby, aby uciec z roztworu kapsaicyny. Po wynurzeniu na powierzchnię zbiera się dżdżownice i analizuje gęstość zaludnienia.

Poniższy eksperyment pokaże ekstrakcję dżdżownic z gleby i analizę ich populacji.

Najpierw przygotuj roztwór kapsaicyny co najmniej 24 godziny wcześniej, ważąc 38 g mielonej ostrej musztardy orientalnej i przenosząc ją do plastikowego pojemnika z nakrętką. Dodaj 100 ml wody z kranu do plastikowego pojemnika zawierającego musztardę. Załóż nakrętkę na pojemnik i energicznie potrząsaj, aż cała musztarda rozpuści się w wodzie.

Pozostaw roztwór na 24 godziny, aby uzyskać maksymalną ekstrakcję kapsaicyny z musztardy. Po zakończeniu ekstrakcji kapsaicyny rozcieńczyć roztwór musztardy 4 l wody w 8-litrowym nośniku wodnym. Wstrząśnij kilkakrotnie roztworem musztardy, aby wymieszać i przenieś go do nośnika wody. Opłucz resztki musztardy rozcieńczonym roztworem.

Uszczelnij korek zbiornika wody i upewnij się, że zawór jest w pozycji "OFF". Odwróć nośnik wody trzy razy, aby równomiernie wymieszać. Przygotować jeden pojemnik z roztworem kapsaicyny dla każdego miejsca testowego.

Udać się do miejsca pobierania próbek z kwaratem i nośnikiem wodnym zawierającym rozcieńczony roztwór musztardy. Przynieś również trzy kubki na próbki na miejsce. Powinny one być odpowiednio oznakowane dla trzech powtórzeń na miejsce pobierania próbek.

Umieść kwadrat losowo na ziemi w oczyszczonym miejscu. Usuń zarośla, liście i ściółkę tak bardzo, jak to możliwe, aby wyraźnie odsłonić glebę. Ponownie wymieszaj rozcieńczony roztwór, a następnie ustaw zawór nasadowy w pozycji ON.

Wlej około jednej trzeciej rozcieńczonego roztworu musztardy do kwadratu, koncentrując większość płynu w środku obszaru kwadratu. Jeśli gleba zostanie nasycona i utworzy kałuże, przerwij nalewanie i poczekaj, aż kałużowy roztwór przeniknie do gleby, zanim przejdziesz dalej.

Obserwuj uważnie obszar kwadratu przez 5 minut, szukając pojawienia się dżdżownic. Pamiętaj, aby zajrzeć bezpośrednio pod boki kwadratu.

Poczekaj, aż wszystkie dżdżownice wyłonią się z gleby w obszarze kwadratu, a następnie zbierz je kleszczami. Po 5 minutach zamknij kubek na próbkę i przejdź do następnego miejsca pobierania próbek.

Powtórz kroki pobierania dla wszystkich miejsc pobierania próbek. Wróć do każdej lokacji i wykonaj 3 replikacje na lokację. Policz liczbę dżdżownic zebranych dla każdej próbki, a następnie oblicz średnią i odchylenie standardowe dla każdego miejsca pobrania.

Utwórz wykres słupkowy, aby porównać średnią gęstość populacji dżdżownic między miejscami zbiórki. Użyj odchylenia standardowego, aby utworzyć słupki błędów. Teren pierwszy jest parkiem zarządzanym i dlatego jest bardziej gościnny dla populacji dżdżownic ze względu na zakłócenia, takie jak napowietrzanie i nawozy. Stanowisko drugie jest niezagospodarowane i dlatego jest mniej gościnne dla populacji dżdżownic.

Egzotyczne dżdżownice i kruszyna pospolita zostały zamieszane w "krach inwazyjny", do którego doszło, zwłaszcza w środkowo-zachodnich Stanach Zjednoczonych. Śledzenie populacji dżdżownic może pomóc w wyjaśnieniu relacji między tymi dwoma gatunkami inwazyjnymi i umożliwić naukowcom opracowanie metod zapobiegania dalszemu rozprzestrzenianiu się.

Właśnie obejrzałeś wprowadzenie JoVE do ekstrakcji i analizy populacji dżdżownic. Powinieneś teraz zrozumieć zasady ekstrakcji dżdżownic z gleby i porównania między miejscami pobierania próbek. Dzięki za oglądanie!

Explore More Videos

Populacje dżdżownic analiza gleby inwazyjne dżdżownice egzotyczne różnorodność biologiczna Lumbricus terrestris nightcrawler rodzime gatunki dżdżownic obieg składników odżywczych struktura warstwy gleby warstwa szczątków organicznych stężenie azotu inwazyjne gatunki roślin kruszyna pospolita topnienie inwazyjne różnorodność lasów

Related Videos

Identyfikacja drzewa: jak używać klucza dychotomicznego

Identyfikacja drzewa: jak używać klucza dychotomicznego

Environmental Science

89.0K Wyświetlenia

Pomiar drzew: metoda pobierania próbek w ćwiartkach wyśrodkowanych na punkcie

Pomiar drzew: metoda pobierania próbek w ćwiartkach wyśrodkowanych na punkcie

Environmental Science

50.9K Wyświetlenia

Wykorzystanie systemu GIS do badania leśnictwa miejskiego

Wykorzystanie systemu GIS do badania leśnictwa miejskiego

Environmental Science

14.4K Wyświetlenia

Ogniwa paliwowe z membraną do wymiany protonów

Ogniwa paliwowe z membraną do wymiany protonów

Environmental Science

23.4K Wyświetlenia

Biopaliwa: produkcja etanolu z materiału celulozowego

Biopaliwa: produkcja etanolu z materiału celulozowego

Environmental Science

56.6K Wyświetlenia

Testy na żywność modyfikowaną genetycznie

Testy na żywność modyfikowaną genetycznie

Environmental Science

92.5K Wyświetlenia

Zmętnienie i całkowita zawartość substancji stałych w wodach powierzchniowych

Zmętnienie i całkowita zawartość substancji stałych w wodach powierzchniowych

Environmental Science

37.3K Wyświetlenia

Tlen rozpuszczony w wodach powierzchniowych

Tlen rozpuszczony w wodach powierzchniowych

Environmental Science

58.5K Wyświetlenia

Składniki odżywcze w ekosystemach wodnych

Składniki odżywcze w ekosystemach wodnych

Environmental Science

40.9K Wyświetlenia

Pomiar ozonu troposferycznego

Pomiar ozonu troposferycznego

Environmental Science

27.7K Wyświetlenia

Oznaczanie NO<sub>x</sub> w spalinach samochodowych za pomocą spektroskopii UV-VIS

Oznaczanie NO<sub>x</sub> w spalinach samochodowych za pomocą spektroskopii UV-VIS

Environmental Science

31.8K Wyświetlenia

Analiza ołowiu gleby za pomocą atomowej spektroskopii absorpcyjnej

Analiza ołowiu gleby za pomocą atomowej spektroskopii absorpcyjnej

Environmental Science

130.6K Wyświetlenia

Analiza węgla i azotu w próbkach środowiskowych

Analiza węgla i azotu w próbkach środowiskowych

Environmental Science

30.9K Wyświetlenia

Analiza składników odżywczych gleby: azot, fosfor i potas

Analiza składników odżywczych gleby: azot, fosfor i potas

Environmental Science

219.5K Wyświetlenia

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • JoVE Newsroom
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code