What are the main advantages of oral dosing through drinking water or food?

Oral dosing via water or food is non-invasive, administers the compound continuously, and mimics human oral drug administration. However, it lacks precision because compound intake depends on animal acceptance of food or water, compound stability, and the number of animals in the cage. This method is best for animal welfare when exact dosing is not critical.

How does oral gavage differ from other oral administration methods?

Oral gavage deposits the compound directly into the stomach at a specific time and volume, providing precise dosing unlike water or food methods. However, it requires proper training because improper technique can cause serious damage to the animal. The procedure must be performed on conscious animals with intact swallowing reflexes to prevent accidental placement into the trachea.

What needle specifications are needed for oral gavage in mice versus rats?

For mice, use 20-25 gauge straight or curved dosing needles that are 1.5 inches long. For rats, select 18-20 gauge straight or curved dosing needles that are 2-3 inches long. Needle gauge and syringe selection also depend on the volume and viscosity of the compound being administered.

What is the proper restraint technique for performing oral gavage in mice?

Grasp the skin at the base of the head and hold the scruff tightly to minimize side-to-side head movement. Suspend the body in a straight line from head to tail, and stabilize the hindquarters to prevent body rotation. Proper handling and restraining techniques are critical because any twisting impedes needle placement into the esophagus.

What factors determine the absorption of topical agents applied to animal skin?

Topical agent absorption depends on skin condition, surface area utilized, substance concentration, duration of contact, and the lipid solubility of the agent. Topical agents are typically intended to affect only the applied area, but they can be absorbed into the bloodstream either intentionally or unintentionally depending on these factors.

What preparation steps are required before applying a topical compound to an anesthetized animal?

First, anesthetize the animal using a fast-acting inhalant for quick recovery. Remove all fur from the application area using a hair clipper with its flat surface against the skin, shaving opposite to hair growth direction. Clean the skin with water and dry it with gauze. Apply several thin layers of the substance using a cotton-tipped applicator for best results.

How should animals be managed after topical compound application to prevent ingestion?

Place a small collar or shield on the animal to prevent it from reaching the affected body part and ingesting the topically applied compound through grooming. Additionally, house treated animals individually to prevent allogrooming from cage mates, which could transfer the compound to other animals or cause unintended exposure.

Podawanie związków II

0 wyświetleń09:38 min

1. Aplikacja miejscowa

Przed nałożeniem jakichkolwiek maści i kremów usuń całą sierść z tego obszaru za pomocą kremu do depilacji lub golenia.
Dokładnie oczyść i osusz skórę.
Substancję należy nanosić bezpośrednio na skórę za pomocą aplikatora z bawełnianą końcówką lub za pomocą bezpośrednio umieszczonej kropli, aby uniknąć kontaktu z technikiem.
Aby uzyskać najlepsze rezultaty, nałóż kilka cienkich warstw maści lub kremu, zamiast jednorazowego nakładania grubej warstwy.
Nałóż płyn, rozdzielając włosy i nakładając kroplę na odsłoniętą skórę.
W przypadku stosowania substancji miejscowo istnieje ryzyko wchłaniania ogólnoustrojowego ze względu na pielęgnację obszaru przez zwierzę. Należy podjąć środki zapobiegawcze w celu uniknięcia przypadkowego spożycia lub przedwczesnego usunięcia substancji. Dostępne są małe obroże lub tarcze, aby zapobiec dotarciu zwierzęcia do dotkniętych części ciała. Może być również wymagane indywidualne trzymanie, aby zapobiec przebywaniu w pomieszczeniach ze strony współwięźniów z klatki.

Rysunek 1. Stosowanie miejscowe u myszy.

2. Dawkowanie doustne

W przypadku podawania zwierzętom związków chemicznych w postaci paszy lub wody, należy obliczyć minimalną dawkę dobową w oparciu o masę ciała. Średnia waga szczepu myszy lub szczura użytego w doświadczeniu może być wykorzystana do dokonania obliczeń, chyba że określono konieczność zważenia każdego zwierzęcia i obliczenia dawki dla każdego osobnika.
W przypadku protokołów, które wymagają, aby spożycie pokarmu i/lub wody było dokładnie mierzone, zwierzęta muszą być trzymane indywidualnie.
Specjalistyczne karmy lub smakołyki mogą być produkowane w celu zaspokojenia potrzeb eksperymentalnych.
1. Zastąp standardową dietę dietą opracowaną w formule, która pozwala zwierzętom spożywać ten związek przez cały dzień.
2. Żywność może wymagać częstszej wymiany niż standardowa żywność ze względu na niestabilność związku.
Substancje mogą być również podawane poprzez rozpuszczenie ich w wodzie pitnej, co pozwala zwierzętom na otrzymywanie związku przez cały dzień
1. Do wody dodaje się niewielką ilość cukru, aby była smaczna. Dokładna ilość, którą należy dodać, zależy od przyjęcia wody przez myszy. Użyj najmniejszego możliwego przyrostu.
2. Częstotliwość wymiany wody zależy od stabilności związku. Niektóre substancje mogą być wrażliwe na światło lub wytrącać się z czasem.

3. Procedura zgłębnika

Proste lub zakrzywione igły dozujące o rozmiarze 20-25 x 1,5 cala są używane dla myszy. W przypadku szczurów stosuje się proste lub zakrzywione igły dozujące o rozmiarze 18-20 x 2-3 cale. Są one dostępne jako igły wielokrotnego użytku ze stali nierdzewnej lub jako igły jednorazowe. Igły jednorazowe mogą mieć metalowy lub elastyczny plastikowy trzonek z silikonową końcówką.

Podłączyć igłę dozującą do strzykawki wybranej na podstawie objętości i lepkości badanego roztworu. Do dozowania gęstych płynów preferowana jest strzykawka typu Luer lock. Są one ogólnie dostępne od rozmiaru 3 cm³ z podziałką 100 μl. Może to nie być odpowiednie dla mniejszych objętości lub gdy istnieje potrzeba dokładnych objętości dawek w mniejszych przyrostach.
Przymocować strzykawkę do igły w taki sposób, aby podziałki na cylindrze można było odczytać bez obracania igły. Po umieszczeniu igły w przełyku, każde obroty mogą spowodować pęknięcie przełyku, powodując śmierć zwierzęcia.
Napełnić strzykawkę odpowiednią objętością artykułu do podania (optymalna objętość = 5 ml/kg i maksymalna objętość = 20 ml/kg)⁴
Odpowiednie unieruchomienie jest niezbędne do tej procedury. ⁷
1. Ręcznie krępuj myszy, chwytając skórę u podstawy głowy i potrząsając nimi. Ważne jest, aby ciało było trzymane w taki sposób, aby było zawieszone w linii prostej od głowy do ogona. Jakiekolwiek skręcenie ciała utrudni umieszczenie igły do zgłębnika w przełyku.
2. Chwyć mocno kark, aby głowa miała minimalny ruch na boki. Kończyny tylne muszą być ustabilizowane, aby zapobiec rotacji ciała.
3. Aby złapać szczura, chwyć go za ramiona za pomocą palca wskazującego i środkowego po obu stronach szyi, a dłoni po grzbiecie zwierzęcia. Kciuk, trzeci i czwarty palec powinny otaczać klatkę piersiową, aby zwierzę nie mogło poruszać się do przodu lub do tyłu. Ułożenie palców po obu stronach szyi zapobiega obracaniu głowy przez szczura.
4. Ważne jest, aby ciało było w linii prostej i nie było skręcone, aby pomóc w umieszczeniu igły do zgłębnika bez uszkodzenia jamy ustnej, gardła, przełyku lub żołądka.
5. Upewnij się, że głowa nie ma nadmiernych ruchów na boki.
6. Kończyny tylne mogą być ustabilizowane, aby zapobiec rotacji ciała. Osiąga się to, pozwalając tylnym stopom spoczywać na blacie lub klatce.
Podawanie substancji
1. Ustawić igłę tak, aby krzywizna była skierowana w dół i zrównała się z naturalną krzywizną szyi. Wprowadzić igłę do jamy ustnej z prawej lub lewej strony, między siekacze i zęby trzonowe pod kątem w kierunku tylnej części gardła.
2. Gdy igła znajdzie się w jamie ustnej, odchyl głowę do tyłu za pomocą igły do zgłębnika, aż nos będzie skierowany do góry. Jest to szczególnie ważne w przypadku używania prostych igieł. Igła powinna łatwo wsunąć się do przełyku. Nie wciskać igły na siłę. Jeśli wyczujesz jakikolwiek opór, wycofaj igłę i spróbuj ponownie.
3. Gdy igła znajdzie się na swoim miejscu w żołądku, delikatnie odłóż związek.
4. Wyjąć igłę, upewniając się, że nie następuje obrót zakrzywionej igły.
5. Jeśli zwierzę zacznie się szarpać, wyjmij igłę dozującą i mocniej unieruchomij zwierzę.
6. W trakcie wykonywania zabiegu, jeśli zwierzę wykazuje objawy sinicy lub niewydolności oddechowej lub jeśli z jego pyska wypływa roztwór, należy natychmiast wyjąć igłę dozującą i wypuścić zwierzę do klatki.
7. Ogólnie rzecz biorąc, podczas zgłębnikowania szczurów i myszy, szczególnie z substancją żrącą, zalecaną praktyką jest downętrzne dostarczenie niewielkiej ilości – w celu zbadania kaszlu – przed podaniem całej objętości. W ten sposób, jeśli igła zostanie nieprawidłowo umieszczona, objętość dostarczana do płuc będzie mniejsza, a zwierzę ma większe szanse na wyzdrowienie.