Źródło: Peiman Shahbeigi-Roodposhti i Sina Shahbazmohamadi, Wydział Inżynierii Biomedycznej, University of Connecticut, Storrs, Connecticut
Skaningowy…
1. Przygotowanie próbki
2. Procedura obrazowania
Zaloguj się lub , aby uzyskać dostęp do pełnej treści. Dowiedz się więcej o dostępie Twojej instytucji do treści JoVE tutaj
Skaningowa mikroskopia elektronowa (SEM) jest często używana do obrazowania materiałów biologicznych w skali nano. Mikroskopy optyczne, które wykorzystują światło do obrazowania próbki, są intensywnie wykorzystywane do nieniszczącego obrazowania próbek biologicznych, jednak ich rozdzielczość i głębia ostrości są ograniczone, dlatego stosuje się SEM w celu osiągnięcia wyższej rozdzielczości do jednego nanometra.
W SEM wiązka elektronów jest skupiana przez szereg soczewek kondensatora, które następnie uderzają w próbkę. Kiedy wiązka uderza w próbkę, elektrony na powierzchni są rozpraszane i mierzone przez detektor.
W tym filmie omówimy, jak działa SEM, pokażemy, jak obrazować próbkę biologiczną w laboratorium, a na koniec przedstawimy niektóre techniki stosowane do obrazowania wrażliwych próbek.
Skaningowy mikroskop elektronowy wykorzystuje wiązkę elektronów o wysokiej energii, która jest generowana przez działo elektronowe wyposażone w katodę żarnika. Wygenerowane elektrony są kierowane w kierunku anody, a następnie skupiane za pomocą soczewek kondensatora przed wejściem do soczewki obiektywu. Soczewka obiektywu jest skalibrowana tak, aby skupiała wiązkę na próbce, gdzie jest skanowana raster na powierzchni. Oddziaływania elektronów z atomami w próbce są wykorzystywane do badania topografii, składu pierwiastkowego i krystaliczności próbki. Kiedy padająca wiązka elektronów uderza w powierzchnię, emituje elektrony wtórne i rozproszone wstecznie. Elektrony wtórne to elektrony o niskiej energii, które są emitowane z próbki blisko powierzchni i dostarczają informacji topograficznych.
Z drugiej strony elektrony rozproszone wstecznie odbijają się w kierunku przeciwnym do padającej wiązki. Intensywność oddziaływania wzrasta wraz ze wzrostem masy atomowej, umożliwiając użytkownikowi rozróżnienie różnic kompozycyjnych. Szczególną uwagę należy zwrócić na obrazowanie próbek biologicznych za pomocą SEM, ponieważ SEM wykorzystuje wysoką próżnię, dlatego próbki biologiczne, które zwykle mają wysoką zawartość wody, muszą być najpierw wysuszone. Może to spowodować zapadnięcie się struktury wrażliwych próbek, zwłaszcza komórek. W ten sposób komórki są traktowane utrwalaczem, płukane, a następnie powoli odwadniane poprzez przemywanie zwiększającymi się ilościami etanolu.
W przypadku sztywnych materiałów biologicznych, takich jak rusztowanie tkankowe kolagenowo-hydroksyapatytowe użyte w tej demonstracji, próbka jest suszona przez kilka dni w wysokiej próżni.
Wreszcie, ponieważ typowe obrazowanie SEM wymaga powierzchni przewodzącej, próbki biologiczne są często napylane cienką warstwą metalu przed obrazowaniem. Teraz, gdy omówiliśmy, jak działa SEM i jak przygotować próbkę biologiczną do obrazowania, przyjrzyjmy się, jak przygotować i zobrazować rusztowanie tkankowe kolagenowo-hydroksyapatytowe.
Najpierw zamontuj próbkę biomateriału na króćcu SEM za pomocą przewodzącej taśmy węglowej i upewnij się, że próbka jest sucha i nie ma zanieczyszczeń na powierzchni.
Następnie umieść zamontowaną próbkę w komorze napylarki, przepompuj w dół komory i napylaj próbkę przez około 40 sekund, aby uzyskać cienką powłokę metalu o grubości od czterech do sześciu nanometrów, w tym przypadku złota, o odpowiednim pokryciu. Po pokryciu usuń próbkę i użyj taśmy przewodzącej, aby połączyć króciec z górną częścią próbki, która jest teraz pokryta przewodzącym metalem.
Na koniec zamontuj króciec na stoliku SEM i dokręć śrubę z boku. Teraz próbka jest gotowa do obrazowania za pomocą SEM. Najpierw załaduj stolik do komory SEM i uszczelnij drzwi, a następnie naciśnij przycisk przenoszenia, aby otworzyć przejście z komory załadowczej do próżni. Po otwarciu drzwi wewnętrznych wkręć metalowy pręt w stolik i wepchnij próbkę do komory próżniowej, a następnie odkręć metalowy pręt i całkowicie wsuń go do komory załadunkowej, a następnie naciśnij magazyn, aby zamknąć komorę próżniową.
Teraz zobrazujmy próbkę za pomocą SEM.
Najpierw przesuń stolik za pomocą kontrolera i nawiguj próbkę w polu widzenia, a następnie przesuń próbkę w pionie, aż odległość robocza wyniesie od pięciu do 10 milimetrów. Włącz wiązkę elektronów i wybierz detektor elektronów wtórnych, początkowo ustaw wiązkę na pięć kiloelektronowoltów, a następnie zwiększ do 20 do 30 kiloelektronowoltów w razie potrzeby. Jeśli obraz nie jest wyraźny, obracaj pokrętłami ostrości, jasności i kontrastu, aż pojawi się wyraźny obraz.
Użyj nawigacji na stole montażowym oraz wskazówek X i Y, aby zlokalizować nowe miejsce na próbce, a następnie zwiększaj powiększenie, aż pożądane cechy będą widoczne. Dostosuj ostrość, kontrast i jasność zgodnie z potrzebami, aby poprawić jakość obrazu. Może być konieczne zmniejszenie szybkości skanowania i włączenie uśredniania liniowego w celu uzyskania lepszego obrazu, a następnie zapisanie obrazu.
Obrazy SEM ukazują wysoce trójwymiarową i porowatą strukturę o elementach włóknistych mniejszych niż 25 mikronów. Cechy te byłyby trudne do uwidocznienia za pomocą mikroskopii optycznej, ponieważ mikroskopia optyczna ma znacznie mniejszą głębię ostrości.
Istnieje wiele wyzwań związanych z obrazowaniem struktur biologicznych za pomocą SEM, w tym zapadanie się struktury lub uszkodzenie przez wiązkę elektronów o wysokiej energii. Przyjrzyjmy się teraz, w jaki sposób ogólna technika SEM jest stosowana do tego typu wrażliwych próbek. Delikatne struktury biologiczne, takie jak młode tkanki roślinne lub te o dużej zawartości wody, muszą być poddane procesowi utrwalania przed obrazowaniem.
Te merystemy kwiatowe zostały natychmiast potraktowane świeżo przygotowanym roztworem utrwalającym formalinę/kwas octowy. Utrwalona tkanka została wycięta w etanolu, umieszczona w siatkowym pojemniku i odwodniona za pomocą serii etanolu 70%, 80%, 90% i 100% etanolu. Na koniec tkanki roślinne wysuszono za pomocą suszarki w punkcie krytycznym, zamontowano i napylono cienką metalową powłoką.
Po obrazowaniu SEM jasne jest, że nieobrobione struktury zostały poważnie uszkodzone w procesie suszenia i wykazały znaczne zapadnięcie się struktury, podczas gdy te, które zostały utrwalone, zachowały swoją naturalną strukturę. Alternatywnie, komórki i inne próbki o wysokiej zawartości wody mogą być obrazowane za pomocą środowiskowego SEM lub ESEM. ESEM wykorzystuje wiązkę elektronów o wysokiej energii, która jest skanowana rastrowo nad próbką, podobnie jak w przypadku konwencjonalnego SEM, jednak umożliwia obrazowanie próbek mokrych lub niepowlekanych poprzez utrzymanie środowiska gazowego w komorze.
Odbywa się to poprzez oddzielenie komory wysokiej próżni zawierającej działo elektronowe od komory na próbki za pomocą dwóch otworów. Wiązka elektronów ponosi znaczne straty z powodu rozpraszania przez cząsteczki gazu, ale zazwyczaj jest wystarczająco wysoką energią do obrazowania. W tym przypadku komórki hodowano na chipie krzemowym, funkcjonalizowano kropkami kwantowymi i utrwalano za pomocą protokołu utrwalania aldehydu glutarowego. Komórki zostały zobrazowane w wodzie i pokazują niezapadniętą strukturę komórki z pojedynczymi kropkami kwantowymi widocznymi na powierzchni komórki.
Właśnie obejrzałeś wprowadzenie JoVE do wizualizacji biomateriałów za pomocą SEM. Powinieneś teraz zrozumieć, jak działa SEM, jak próbki biologiczne są przygotowywane i obrazowane, a także jakie są zastosowania tej techniki dla wrażliwych struktur.
Dzięki za oglądanie!
View the full transcript and gain access to JoVE Science Education videos
Q1: Why is SEM better than optical microscopy for imaging biological samples?
SEM achieves resolution down to 0.5 nanometers, compared to optical microscopy's 200 nanometer limit. This superior resolution results from the electron beam's 1 nanometer wavelength versus visible light's 500 nanometer wavelength. SEM also provides greater depth of field, making it ideal for visualizing three-dimensional biological structures and nanostructures that optical microscopes cannot clearly resolve.
Q2: What happens when an electron beam hits a biological sample in SEM?
The electron beam causes two types of electron emissions: secondary electrons and backscattered electrons. Secondary electrons are low-energy electrons emitted from the sample surface, providing topographical information about structure. Backscattered electrons reflect opposite to the incident beam and increase in intensity with atomic weight, enabling compositional analysis and distinguishing material differences.
Q3: Why must biological samples be dried before SEM imaging?
SEM operates in a high vacuum environment, which is incompatible with the high water content of biological samples. Water evaporates rapidly in vacuum, causing sample structures to collapse, especially in delicate cells. Samples are treated with fixatives, rinsed, and slowly dehydrated using increasing ethanol concentrations to preserve native structure while removing water.
Q4: What is sputter coating and why is it necessary for SEM imaging?
Sputter coating deposits a thin metal layer, typically gold four to six nanometers thick, onto biological samples. Since biological materials are non-conductive, this metal coating prevents charge accumulation from the electron beam, which would distort images. The conductive surface enables accurate electron detection and improved image quality during SEM analysis.
Q5: How does environmental SEM differ from conventional SEM for imaging sensitive samples?
Environmental SEM (ESEM) maintains a gaseous environment in the specimen chamber, allowing imaging of wet or uncoated samples without drying. Two apertures separate the high vacuum electron gun chamber from the specimen chamber. Although gas molecules scatter the electron beam, the beam energy remains sufficient for imaging, preserving uncollapsed cellular structures and enabling visualization of hydrated biological specimens.
Q6: What preparation steps are critical for imaging delicate biological structures like plant tissues?
Delicate tissues require fixation with solutions like formalin/acetic acid to stabilize structure. Tissues are then dissected in ethanol, placed in mesh containers, and dehydrated through an ethanol series of 70%, 80%, 90%, and 100%. Finally, critical point drying removes remaining solvent without causing collapse, followed by sputter coating with metal before SEM imaging.
Q7: What information can SEM reveal about biological materials that other techniques cannot?
SEM reveals three-dimensional, porous structures with fibrous features smaller than 25 microns, which are difficult to visualize with imaging biological samples with optical and confocal microscopy due to limited depth of field. SEM also provides topographical detail, elemental composition, and crystallinity information through secondary and backscattered electron analysis, enabling comprehensive characterization of nano and microstructures.