Name: Zakażenie wirusem krowianki i czasowa analiza ekspresji genów wirusa: część 3 (Wideo) | JoVE Journal
Uploaded: 2009-04-13T00:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 35 s
Description: Poznaj metodę etykietowania RNA z zakażonych komórek HeLa wirusem krowianki przy użyciu sprzęgania aminowoallilowego barwników. Technika ta umożliwia analizę mikromacierzową ekspresji genów.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Fundusze dla stypendystów Whitehead Institute

Część 1: znakowanie aRNA: sprzęganie barwników za pomocą grup aminoallylowych
<ol>
<li>Do probówek do mikrocentryfugi o pojemności 1,5mL przenieść 1µg próbek aRNA.</li>
<li>Próbki wysuszyć w pompie próżniowej przy niskiej temperaturze lub bez podgrzewania, aż będą całkowicie suche. Każdą probówkę zakręcić niezwłocznie po wysuszeniu – nie doprowadzić do nadmiernego wysuszenia!</li>
<li>Do każdej probówki dodać 9µl buforu sprzęgającego i resuspendować aRNA, delikatnie mieszając na wirówce typu vortex przez 1 minutę. Krótko odwirować, aby zebrać próbkę na dnie probówki, a następnie pozostawić próbkę na lodzie.</li>
<li>Do każdej probówki z barwnikiem Cy3 lub Cy5 dodać 22µl wysokiej jakości DMSO. Jedna probówka barwnika wystarcza na 2 próbki. Barwnik Cy3 służy do znakowania próbek referencyjnych, a barwnik Cy5 do znakowania próbek testowych.</li>
<li>Barwniki wymieszać dokładnie na wirówce typu vortex. Przechowywać barwniki w ciemności do momentu użycia. Nie przygotowywać barwnika wcześniej niż 1 godzinę przed zastosowaniem. Należy dopilnować, aby na żadnym etapie do mieszaniny barwnika/DMSO nie dostała się woda.</li>
<li>Do każdej próbki dodać 11µl przygotowanego roztworu DMSO/barwnik Cy. Dobrze wymieszać, delikatnie wirując na vortexie.</li>
<li>Inkubować przez 30-45 minut w temperaturze pokojowej. Próbki przykryć folią aluminiową lub przechowywać w szufladzie, aby zminimalizować ekspozycję na światło.</li>
<li>Po inkubacji do każdej próbki dodać 4,5µl hydroksyloaminy w celu zatrzymania reakcji. Dobrze wymieszać, delikatnie wirując na vortexie.</li>
<li>Inkubować przez kolejne 15 minut w temperaturze pokojowej. Próbki przykryć folią aluminiową lub przechowywać w szufladzie, aby zminimalizować ekspozycję na światło.</li>
</ol>
Część 2: Oczyszczanie znakowanego aRNA
<ol>
<li>Krótko wymieszaj kulki do wiązania RNA za pomocą vortexa, aby przed użyciem uzyskać jednorodną zawiesinę.</li>
<li>Przygotuj mieszaninę do wiązania aRNA (aRNA Binding Mix) w temperaturze pokojowej. (Tabela 1)</li>
<li>Wymieszaj dokładnie za pomocą vortexa.</li>
<li>Przenieś odpowiednią ilość buforu do eluowania aRNA (aRNA Elution Buffer) do probówki 1,5mL i inkubuj w temperaturze 50-60°C przez co najmniej 10 minut.</li>
<li>Dodaj 70µl mieszaniny do wiązania aRNA do każdej próbki i wymieszaj dokładnie, pipetując w górę i w dół 3-4 razy.</li>
<li>Przenieś próbki z płytki PCR do 96-dołkowej płytki z okrągłym dnem.</li>
<li>Dodaj 50µl 100% izopropanolu do każdej próbki i wymieszaj dokładnie, pipetując w górę i w dół 3-4 razy.</li>
<li>Delikatnie wstrząśnij płytką na wytrząsarce orbitalnej przez co najmniej 2 minuty, aby dokładnie wymieszać próbki.</li>
<li>Umieść płytkę na statywie magnetycznym w celu wychwycenia kulek magnetycznych. Pozostaw płytkę na statywie do momentu, aż mieszanina stanie się przezroczysta, a kulki wiążące osiądą na dnie.</li>
<li>Ostrożnie odessij nadsącz za pomocą aspiratora próżniowego, nie naruszając kulek magnetycznych. Alternatywnie, ostrożnie usuń nadsącz pipetą i go wylej. Na tym etapie nadsącz powinien mieć jaskraworóżowy lub jaskrawoniebieski kolor ze względu na nieprzyłączone cząsteczki barwnika.</li>
<li>Zdejmij płytkę ze statywu magnetycznego.</li>
<li>Dodaj 100µl roztworu do przemywania aRNA (aRNA Wash Solution) do każdego dołka i wstrząśnij płytką przez 1 minutę na wytrząsarce orbitalnej z umiarkowaną prędkością. Na tym etapie kulki mogą nie ulec całkowitemu rozproszeniu.</li>
<li>Umieść płytkę na statywie magnetycznym w celu wychwycenia kulek magnetycznych.</li>
<li>Ostrożnie odessij nadsącz za pomocą aspiratora próżniowego, nie naruszając kulek magnetycznych. Alternatywnie, ostrożnie usuń nadsącz pipetą i go wylej.</li>
<li>Zdejmij płytkę ze statywu magnetycznego.</li>
<li>Powtórz przemywanie po raz 2nd z użyciem 100µl roztworu do przemywania aRNA.</li>
<li>Po 2nd przemywaniu osusz kulki, wstrząsając płytką przez 1 minutę na wytrząsarce orbitalnej z maksymalną prędkością. Nie doprowadź do nadmiernego wysuszenia próbek!</li>
<li>Eluuj aRNA z kulek, dodając 20µl podgrzanego buforu do eluowania aRNA do każdej próbki.</li>
<li>Intensywnie wstrząśnij płytką na wytrząsarce orbitalnej przez 3 minuty, a następnie sprawdź, czy kulki magnetyczne są całkowicie rozproszone. Jeśli nie, kontynuuj wstrząsanie.</li>
<li>Gdy kulki magnetyczne zostaną całkowicie rozproszone, umieść płytkę na statywie magnetycznym w celu ich wychwycenia. Nadsącz zawiera oczyszczone i znakowane próbki aRNA i powinien mieć kolor bladoróżowy lub bladoniebieski.</li>
<li>Ostrożnie przenieś eluat aRNA do nowej płytki PCR (lub probówek PCR).</li>
<li>(Krok opcjonalny) Sprawdź stężenie RNA oraz ilość barwnika w próbkach, mierząc 1,5µl na spektrofotometrze NanoDrop z wykorzystaniem modułu Microarray.</li>
<li>Natychmiast przeprowadź hybrydyzację znakowanego aRNA na wybranej platformie mikromacierzy lub alternatywnie przechowuj znakowane aRNA w temperaturze –80°C do czasu rozpoczęcia hybrydyzacji.</li>
</ol>
Tabela 1 Mieszanina wiążąca aRNA
<table border="1">
<tbody >
<tr>
<td>Odczynnik</td>
<td>Ilość na 1 reakcję</td>
</tr>
<tr>
<td>Kuleczki do wiązania RNA*</td>
<td>10µl</td>
</tr>
<tr>
<td>Roztwór do resuspensji kuleczek*</td>
<td>4µl</td>
</tr>
<tr>
<td>100% izopropanol**</td>
<td>6µl</td>
</tr>
<tr>
<td>Koncentrat buforu do wiązania aRNA</td>
<td>50µl</td>
</tr>
</tbody>
</table>
*Najpierw wymieszać koraliki do wiązania RNA z roztworem do resuspensji koralików **Dodać izopropanol i dobrze wymieszać przed dodaniem koncentratu buforu do wiązania aRNA.

<ol><li>Rubins, K. H., Hensley, L. E., Bell, G. W., Wang, C., Lefkowitz, E. J., Brown, P. O., Relman, D. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Comparative+analysis+of+viral+gene+expression+programs+during+poxvirus+infection%3A+a+transcriptional+map+of+the+vaccinia+and+monkeypox+genomes%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+ONE%22%5BJournal%5D)">Comparative analysis of viral gene expression programs during poxvirus infection: a transcriptional map of the vaccinia and monkeypox genomes.</a> PLoS ONE. 3 (7), e2628-e2628 (2008).</li>
<li>Assarsson, E., Greenbaum, J. A., Sundström, M., Schaffer, L., Hammond, J. A., Pasquetto, V., Oseroff, C., Hendrickson, R. C., Lefkowitz, E. J., Tscharke, D. C., Sidney, J., Grey, H. M., Head, S. R., Peters, B., Sette, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Kinetic+analysis+of+a+complete+poxvirus+transcriptome+reveals+an+immediate-early+class+of+genes%5BTitle%5D)+AND+%22Proc.+Natl.+Acad.+Sci%22%5BJournal%5D)">Kinetic analysis of a complete poxvirus transcriptome reveals an immediate-early class of genes.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. 105 (6), 2140-2145 (2008).</li>
<li>Satheshkumar, P. S., Moss, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Poxvirus+transcriptome+analysis%5BTitle%5D)+AND+%22Proc.+Natl.+Acad.+Sci.+U.S.A%22%5BJournal%5D)">Poxvirus transcriptome analysis.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 105, E62-E62 (2008).</li>
<li>Assarsson, E., Greenbaum, J. A., Sundström, M., Schaffer, L., Hammond, J. A., Pasquetto, V., Oseroff, C., Hendrickson, R. C., Lefkowitz, E. J., Tscharke, D. C., Sidney, J., Grey, H. M., Head, S. R., Peters, B., Sette, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A.+Reply+to+Satheshkumar+and+Moss%3A+Poxvirus+transcriptome+analysis%5BTitle%5D)+AND+%22Proc.+Natl.+Acad.+Sci.+U.S.A%22%5BJournal%5D)">A. Reply to Satheshkumar and Moss: Poxvirus transcriptome analysis.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 105, E63-E64 (2008).</li>
<li>Guerra, S., López-Fernández, L. A., Pascual-Montano, A., Muñoz, M., Harshman, K., Esteban, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cellular+gene+expression+survey+of+vaccinia+virus+infection+of+human+HeLa+cells%5BTitle%5D)+AND+%22J+Virol%22%5BJournal%5D)">Cellular gene expression survey of vaccinia virus infection of human HeLa cells.</a> J Virol. 77 (11), 6493-6506 (2003).</li>
<li>Guerra, S., López-Fernández, L. A., Conde, R., Pascual-Montano, A., Harshman, K., Esteban, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Microarray+analysis+reveals+characteristic+changes+of+host+cell+gene+expression+in+response+to+attenuated+modified+vaccinia+virus+Ankara+infection+of+human+HeLa+cells%5BTitle%5D)+AND+%22J+Virol%22%5BJournal%5D)">Microarray analysis reveals characteristic changes of host cell gene expression in response to attenuated modified vaccinia virus Ankara infection of human HeLa cells.</a> J Virol. 78 (11), 5820-5824 (2004).</li>
<li>Guerra, S., López-Fernández, L. A., Pascual-Montano, A., Nájera, J. L., Zaballos, A., Esteban, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Host+response+to+the+attenuated+poxvirus+vector+NYVAC%3A+upregulation+of+apoptotic+genes+and+NF-kappaB-responsive+genes+in+infected+HeLa+cells%5BTitle%5D)+AND+%22J+Virol%22%5BJournal%5D)">Host response to the attenuated poxvirus vector NYVAC: upregulation of apoptotic genes and NF-kappaB-responsive genes in infected HeLa cells.</a> J Virol. 80 (2), 985-998 (2006).</li>
<li>Guerra, S., Nájera, J. L., González, J. M., López-Fernández, L. A., Climent, N., Gatell, J. M., Gallart, T., Esteban, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Distinct+gene+expression+profiling+after+infection+of+immature+human+monocyte-derived+dendritic+cells+by+the+attenuated+poxvirus+vectors+MVA+and+NYVAC%5BTitle%5D)+AND+%22%22%5BJournal%5D)">Distinct gene expression profiling after infection of immature human monocyte-derived dendritic cells by the attenuated poxvirus vectors MVA and NYVAC.</a> 81 (16), 8707-8721 (2007).</li>
</ol>

Autorzy nie mają żadnych konfliktów interesów do ujawnienia.

Kluczowe etapy
Podczas przeprowadzania sprzęgania aminowego z allylem kluczowe jest ponowne rozpuszczenie barwnika w DMSO krótko (mniej niż 1 godzinę) przed sprzęganiem oraz upewnienie się, że do mieszaniny barwnika i DMSO nie dostanie się woda, ponieważ weszłaby ona w reakcję z grupą aktywną barwnika. Nie należy nadmiernie wysuszać RNA (można je zredukować do 1-2uL zamiast całkowitego wysuszenia) i należy je dokładnie rozpuścić w buforze do sprzęgania. Podczas reakcji sprzęgania należy przecho...

<table><tbody><tr><td>Zestaw reaktywnych barwników CyDye do znakowania post-hoc</td><td>Odczynnik</td><td>GE Healthcare</td><td>RPN5661</td><td>Zawiera barwniki Cy3 i Cy5</td></tr><tr><td>Spektrofotometr UV-VIS NanoDrop ND-1000</td><td>Inne</td><td>NanoDrop</td><td>ND-1000</td><td>Lub równoważny spektrofotometr</td></tr></tbody></table>

infekcja wirusem vaccinia i analiza czasowa ekspresji genów wirusowych: część 3

Vaccinia Virus Infection &amp; Temporal Analysis of Virus Gene Expression: Part 3

RodzinaPoxviridaeskłada się z wirusów zawierających duże dwuniciowe DNA, które replikują się wyłącznie w cytoplazmie zainfekowanych komórek. Przedstawiciele tejorthopoxrodzaj obejmuje variolę, czynnik etiologiczny ospy prawdziwej u ludzi, ospę małpią oraz vaccinię (VAC), która jest prototypowym przedstawicielem rodziny wirusów. W stosunkowo dużym genomie vaccinii (~ 200 kb) zakodowane są trzy klasy genów: wczesne, pośrednie i późne. Choć wszystkie trzy klasy są transkrybowane przez wirusowe polimerazy RNA, każda z nich pełni inną funkcję w cyklu życiowym wirusa. Poxwirusy wykorzystują wiele strategii w celu modulacji środowiska komórkowego gospodarza podczas infekcji. Aby zrozumieć regulację ekspresji genów zarówno gospodarza, jak i wirusa, zastosowaliśmy podejścia genomowe do analizy obfitości transkrypcyjnej z komórek wirusa i gospodarza. W niniejszej pracy przedstawiamy przebieg infekcji komórek HeLa wirusem vaccinii oraz pobieranie RNA w kilku punktach czasowych po infekcji. Całkowite RNA gospodarza i wirusa jest izolowane i amplifikowane w celu hybrydyzacji z mikromacierzami do analizy ekspresji genów.

Protokół infekcji komórek HeLa wirusem Vaccinia oraz analizy ekspresji genów gospodarza i wirusa. Część 3 opisuje proces znakowania fluorescencyjnego namnożonego RNA z próbek gospodarza i wirusa poprzez sprzęganie barwników za pomocą grup aminoallilowych. Część 3 z 3.

Infekcja wirusem vaccinia i analiza czasowa ekspresji genów wirusowych: Część 3

Rodzina Poxviridae składa się z dużych wirusów zawierających dwuniciowy DNA, które replikują się wyłącznie w cytoplazmie zainfekowanych komórek. Przedstawiciele...

Witajcie, nazywam się Judy Y i pracuję w laboratorium Kate Rubins w Whitehead Institute for Biomedical Research. W niniejszym materiale demonstrujemy sposób znakowania próbek antysensownego RNA pobranych zarówno z zakażonych wirusem vaccinia komórek HeLa, jak i z samego wirusa, przy użyciu sprzęgania barwników metodą amino-allyl LEO. Następnie pokazujemy, jak oczyścić znakowane RNA oraz przygotować je do hybrydyzacji w celu analizy ekspresji genów za pomocą mikromacierzy.Poprzednie filmy JoVE przedstawiają sposób przeprowadzania infekcji wirusowych, izolacji całkowitego RNA oraz etapów amplifikacji RNA. Przejdźmy zatem do pracy. Aby rozpocząć znakowanie RNA, najpierw należy przenieść 1 µg próbek RNA do probówek do mikrocentryfugi o pojemności 1,5 ml.Próbki należy wysuszyć w próżni w niskiej temperaturze lub bez podgrzewania, aż będą całkowicie suche. Każdą probówkę należy zakapslować natychmiast po wyschnięciu. Ważne jest, aby nie doprowadzić do nadmiernego wysuszenia próbek po tym, jak już wyschną.Do każdej probówki należy dodać 9 µL buforu sprzęgającego, a następnie zawiesić RNA A, delikatnie mieszając na wirówce typu vortex przez jedną minutę. Próbki należy krótko odwirować, aby zebrać je na dnie probówki, a następnie pozostawić w lodzie. Następnie do każdej probówki z barwnikiem Cy3 lub Cy5 należy dodać 22 µL wysokiej jakości DMSO; jedna probówka z barwnikiem wystarcza dla dwóch próbek. Barwniki Cy3 służą do znakowania próbek referencyjnych, natomiast barwniki Cy5 służą do znakowania próbek badawczych.Wymieszaj barwniki za pomocą wstrząsarki vortex, aby uzyskać jednorodny roztwór. Pamiętaj, aby przechowywać barwniki w ciemności do momentu użycia. Nie przygotowuj barwnika wcześniej niż na godzinę przed zastosowaniem i dopilnuj, aby na żadnym etapie do mieszaniny barwnika z DMSO nie dostała się woda.Następnie dodaj 11 µL przygotowanej mieszaniny barwnika D-M-S-O-S do każdej próbki i dokładnie wymieszaj za pomocą wortexa. Inkubuj delikatnie przez 30 do 45 minut w temperaturze pokojowej. Próbki przykryj folią aluminiową lub przechowuj w szufladzie, aby zminimalizować ekspozycję na światło.Po inkubacji dodaj 4,5 µL hydroksylaminy do każdej próbki, aby zatrzymać reakcję, a następnie wymieszaj całość za pomocą wortexa. Inkubuj delikatnie przez kolejne 15 minut w temperaturze pokojowej. Przykryj próbki folią aluminiową lub przechowuj je w szufladzie, aby zminimalizować ekspozycję na światło.Aby oczyścić etykietę, należy wymieszać w wirówce RNA oraz kuleczki do wiązania RNA. W celu uzyskania jednorodnej mieszaniny przed użyciem, przygotować mieszaninę A do wiązania RNA w temperaturze pokojowej. Dobrze wymieszać mieszaninę wiążącą za pomocą wirówki, odmierzyć alikwot buforu A do elucji RNA do probówki o pojemności 1,5 ml i inkubować w temperaturze 50 do 60 °C przez co najmniej 10 minut.Do każdej próbki należy dodać 70 µL mieszaniny wiążącej RNA A i dokładnie wymieszać, pipetując roztwór w górę i w dół od trzech do czterech razy. Po wymieszaniu próbki należy przenieść z płytki PCR do płytki 96-dołkowej z okrągłym dnem. Następnie do każdej próbki dodaje się 50 µL stuprocentowego izopropanolu i dokładnie miesza, pipetując w górę i w dół od trzech do czterech razy. Płytkę należy delikatnie wstrząsać na wytrząsarce orbitalnej przez co najmniej dwie minuty.Aby dokładnie wymieszać próbki. Przenieś płytkę na statyw magnetyczny. Aby wyłapać kuleczki magnetyczne.Pozostaw płytkę na stojaku, aż mieszanina stanie się przezroczysta, a kulki wiążące osadzą się na dnie. Ostrożnie odessij nadsącz za pomocą aspiratora próżniowego, uważając, aby nie poruszyć kulek magnetycznych. Alternatywnie, ostrożnie usuń nadsącz za pomocą pipety i go wylej.Na tym etapie nadosad powinno mieć jasnoróżowy lub jasnoniebieski kolor ze względu na nieprzyłączone cząsteczki barwnika. Po odlaniu nadosadu należy zdjąć płytkę z podstawy magnetycznej. Następnie do każdego dołka należy dodać 100 µL roztworu do płukania RNA i inkubować płytkę przez jedną minutę na wytrząsarce orbitalnej przy umiarkowanej prędkości.Na tym etapie kuleczki mogą nie rozproszyć się całkowicie, w takim przypadku należy ponownie umieścić płytkę na statywie magnetycznym, aby przechwycić kuleczki magnetyczne. Ostrożnie odessać nadsącz za pomocą aspiratora próżniowego, nie naruszając kuleczek magnetycznych.Alternatywnie, ostrożnie usuń nadsącz za pomocą pipety i go wylej. Wyjmij płytkę ze statywu magnetycznego. Powtórz płukanie po raz drugi, używając 100 µL roztworu do płukania RNA A.Po drugim płukaniu. Osusz kulki, potrząsając płytką przez jedną minutę na wytrząsarce orbitalnej z maksymalną prędkością. Nie doprowadzać do nadmiernego osuszenia próbek; eluej RNA A z kulek, dodając 20 µL podgrzanego buforu do elucji RNA A.Każdą płytkę z próbkami energicznie potrząśnij na wytrząsarce orbitalnej przez trzy minuty. Następnie sprawdź, czy kulki magnetyczne są w pełni zdyspergowane. Jeśli nie, kontynuuj wytrząsanie.Po całkowitym zdyspergowaniu kulek magnetycznych, przenieś płytkę na statyw magnetyczny w celu uchwycenia kulek. Nadosad zawiera oczyszczone próbki znakowanego RNA A i powinno mieć kolor jasnoróżowy lub jasnoniebieski. Następnie ostrożnie przenieś wspomniane RNA A do nowej płytki PCR lub probówek PCR.Na tym etapie można sprawdzić stężenie RNA oraz ilość barwnika w próbkach, mierząc 1,5 µL na spektrofotometrze NanoDrop. Korzystając z modułu do mikromacierzy, natychmiast przeprowadź hybrydyzację znakowanego RNA A na wybranej platformie mikromacierzowej. Alternatywnie znakowane RNA A można przechowywać w temperaturze -80 °C do momentu przystąpienia do hybrydyzacji.Jest to reprezentatywny odczyt spektrofotometryczny i wykres gęstości optycznej (OD) wygenerowany za pomocą spektrofotometru NanoDrop w celu pomiaru stężenia próbek oraz stopnia inkorporacji barwnika. Można zauważyć piki OD przy 260 nanometrach służące do obliczania stężenia próbek, a także dwa piki w okolicach 532 i 635 nanometrów, reprezentujące odpowiednio barwniki S3 i SCI five. Właśnie zaprezentowaliśmy sposób znakowania fluorescencyjnego próbek RNA z inkorporowanymi amplifikowanymi allelami immunologicznymi do hybrydyzacji mikromacierzy.Podczas wykonywania tej procedury należy pamiętać o resuspensji barwnika w DMSO na mniej niż godzinę przed sprzęganiem oraz upewnić się, że do mieszaniny barwnika z DMSO nie dostała się woda, ponieważ zareagowałaby ona z grupą aktywną barwnika. Ważne jest również, aby w razie potrzeby nie przesuszyć RNA. Próbki można odparować do objętości jednej lub dwóch mikrolitrów zamiast całkowicie osuszać, a następnie dokładnie resuspender w buforze sprzęgającym podczas reakcji sprzęgania.Reakcje należy prowadzić w ciemności, okresowo delikatnie potrząsając probówkami i w razie potrzeby wirując je. To wszystko. Dziękujemy za oglądanie i życzymy powodzenia w eksperymentach.Zachęcamy do obejrzenia pozostałych filmów z tej serii, w których pokazujemy, jak przeprowadzić infekcję wirusem vaccinia w zależności od czasu, jak wykonać ekstrakcję RNA z próbek oraz jak przeprowadzić procedurę liniowej amplifikacji próbek RNA.

vaccinia-virus-infection-temporal-analysis-virus-gene-expression-part

Research

JoVE Journal

Biology

Biologia

Zakażenie wirusem ospy prawdziwej i czasowa analiza ekspresji genów wirusa: Część 3

Protokół infekcji komórek HeLa wirusem Vaccinia oraz analizy ekspresji genów gospodarza i wirusa. Część 1 z 3.

Infekcja wirusem vaccinia oraz analiza czasowa ekspresji genów wirusa: Część 1

Protokół infekcji komórek HeLa wirusem Vaccinia oraz analizy ekspresji genów gospodarza i wirusa. Część 2 z 3.

Infekcja wirusem vaccinia i analiza czasowa ekspresji genów wirusa: część 2

Nowe czynniki gospodarza zaangażowane w infekcje wirusowe można zidentyfikować za pomocą komórkowego przesiewu RNAi w celu utraty funkcji w skali całego genomu. Model hodowli komórkowej Drosophila jest szczególnie podatny na to podejście ze względu na łatwość i wydajność RNAi. W niniejszym materiale prezentujemy tę technikę, posługując się wirusem vaccinia jako przykładem.

Przesiew RNAi w poszukiwaniu czynników gospodarza zaangażowanych w infekcję wirusem Vaccinia z wykorzystaniem komórek Drosophila

Wirusy onkolityczne stanowią obiecującą metodę terapeutyczną w leczeniu nowotworów. Zdolność do oceny podatności na zakażenie żywych próbek tkanek pobranych od pacjentów przed rozpoczęciem leczenia jest unikalną zaletą tego podejścia terapeutycznego. Niniejszy protokół opisuje sposób przygotowania tkanek do zakażenia ex vivo wirusem onkolitycznym oraz późniejszą kwantyfikację wirusa.

Ex Vivo zakażanie żywej tkanki wirusami onkolitycznymi

Opisujemy protokół służący do identyfikacji kluczowych ról cząsteczek sygnałowych gospodarza w litycznej replikacji modelowego herpeswirusa, gamma herpeswirusa 68 (γHV68). Wykorzystując genetycznie zmodyfikowane szczepy myszy oraz fibroblasty zarodkowe do litycznej replikacji γHV68, protokół ten umożliwia zarówno charakterystykę fenotypową, jak i analizę molekularną oddziaływań wirus-gospodarz podczas litycznej replikacji wirusa.

Analiza oddziaływań gospodarz-wirus podczas litycznej replikacji modelowego herpeswirusa

Opisano metodę śledzenia neuronów połączonych synaptycznie. Wykorzystujemy specyficzność TVA w komórce upstream, aby zbadać, czy interesująca nas populacja komórek otrzymuje sygnały synaptyczne od genetycznie zdefiniowanych typów komórek.

Wirusowe śledzenie genetycznie zdefiniowanych obwodów neuronalnych

Szybki i modułowy protokół generowania rekombinowanych wirusów krowianki wyrażających fluorescencyjnie znakowane białka jednocześnie przy użyciu metody przejściowej selekcji dominującej jest opisany tutaj.

Metodologia wydajnego wytwarzania znakowanych fluorescencyjnie białek wirusa krowianki

Opisujemy użycie fluorescencyjnego wirusa krowianki reporterowej, który umożliwia pomiar zakaźności wirusa i ekspresji genów w czasie rzeczywistym poprzez specyficzną dla etapu ekspresję spektralnie odrębnych fluoroforów reporterowych. Szczegółowo opisujemy metodę opartą na płytkach do dokładnej identyfikacji etapu, na którym replikacja wirusa jest zaburzona w odpowiedzi na hamowanie małych cząsteczek.

Wirusy reporterowe krowianki do ilościowego określania funkcji wirusa na wszystkich etapach ekspresji genów

Tutaj prezentujemy protokoły identyfikacji 1) kodowanych przez wirusa immunomodulatorów, które promują replikację arbowirusa i 2) eukariotycznych czynników gospodarza, które ograniczają replikację arbowirusa. Te metody oparte na fluorescencji i luminescencji pozwalają naukowcom szybko uzyskać ilościowe odczyty replikacji arbowirusa w uproszczonych testach o niskim stosunku sygnału do szumu.

Zakażenia arbowirusem jako narzędzia przesiewowe do identyfikacji immunomodulatorów wirusa i czynników przeciwwirusowych gospodarza

ICP0 ulega translokacji jądrowej do cytoplazmatycznej podczas infekcji HSV-1. Mechanizm molekularny tego zdarzenia nie jest znany. W tym miejscu opisujemy zastosowanie mikroskopu konfokalnego jako narzędzia do ilościowego określania ruchu ICP0 w zakażeniu HSV-1, co stanowi podstawę do ilościowej analizy translokacji ICP0 w przyszłych badaniach mechanistycznych.

Analiza czasowa translokacji jądrowej do cytoplazmatycznej białka wirusa opryszczki pospolitej 1 za pomocą immunofluorescencyjnej mikroskopii konfokalnej

Poznaj metodę etykietowania RNA z zakażonych komórek HeLa wirusem krowianki przy użyciu sprzęgania aminowoallilowego barwników. Technika ta umożliwia analizę mikromacierzową ekspresji genów.

Infekcja wirusem vaccinia i analiza czasowa ekspresji genów wirusowych: Część 3

Przeglądaj więcej filmów