Name: Obrazowanie restenozy w stentach: niedrogi, niezawodny i szybki model przedkliniczny (Wideo) | JoVE Journal
Uploaded: 2009-09-14T13:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 46 s
Description: Poznaj niezawodną metodę implantacji stentów i obrazowania OCT w modelu przedklinicznym szczura. Technika ta umożliwia szczegółową analizę rozwoju restenozy wewnątrzstentowej w czasie rzeczywistym.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Finansowanie 
Niniejsze badanie zostało sfinansowane przez Falk Research Fund dla Departamentu Chirurgii Kardiochirurgicznej w Stanford University School of Medicine, Stanford, CA, USA. Tobias Deuse otrzymał finansowanie z grantu badawczego Niemieckiego Towarzystwa Kardiologicznego (German Cardiac Society). Sonja Schrepfer otrzymała grant badawczy z Deutsche Forschungsgemeinschaft (DFG) (SCHR992/2-1).

Implementacja stentu aortalnego
<ol>
 <li>Samce szczurów Sprague-Dawley o masie 550-600 g są nabywane od firmy Harlan (Indianapolis, IN, USA). Szczury utrzymuje się w warunkach konwencjonalnych, podając standardową karmę dla szczurów oraz wodę ad libitum. </li>
 <li>Szczura znieczula się izofluranem (2%) i ketaminą (25 mg/kg). Pod kontrolą mikroskopową wykonuje się górną medianową mini-laparotomię w celu odsłonięcia aorty podnerkowej. </li>
 <li>Aortę brzuszną preparuje się z otaczających tkanek, od poziomu tętnic nerkowych w dół aż do rozwidlenia. UWAGA: Nie ma potrzeby preparowania aorty od żyły głównej dolnej.</li>
 <li>Używa się mikrozacisków do zatrzymania przepływu krwi w aorcie. Najpierw zakłada się zacisk proksymalny, a następnie dystalny. </li>
 <li>Aortę otwiera się za pomocą małego nacięcia poprzecznego i przepłukuje heparyną (200 units).</li>
 <li>Śródbłonek aorty jest usuwany poprzez wprowadzenie cewnika do embolektomii tętniczej Fogarty o rozmiarze 2-french (Baxter Healthcare, Deerfield, IL, USA). </li>
 <li>Należy użyć dowolnego stentu dla ludzi o długości od 8mm do 12mm i średnicy 2.5mm-3mm. UWAGA: Średnica stentu nie powinna przekraczać średnicy naczynia o więcej niż 10%, aby uniknąć stenozy przed i za stentem. UWAGA: Nie należy zmieniać długości stentu w obrębie tego samego badania. </li>
 <li>Stent implantuje się, stosując odpowiednie ciśnienie balonu w celu uzyskania pożądanej średnicy. </li>
 <li>Małe nacięcie aorty zamyka się szwami Prolene 9-0 (Ethicon, Norderstedt, Germany).</li>
 <li>Nacięcie brzuszne zamyka się warstwowo szwami ciągłymi Vicryl 4-0 (Ethicon, Norderstedt, Germany). 
Szewy skórne powinny zostać usunięte w ciągu 7-14 dni, nawet w przypadku zastosowania Vicryl.</li>
<li>Zwierzęta otrzymały Carprofen (6mg/KG) śródoperacyjnie oraz Metamizol przez kolejne 7 dni w wodzie do picia.</li>
</ol>
Obrazowanie metodą optycznej koherentnej tomografii (OCT)
Obrazy OCT są pozyskiwane za pomocą systemu obrazowania M2 OCT (LightLab Imaging, Inc., Westford, MA, USA). ImageWire to sonda obrazująca służąca do dostarczania światła do tkanki i zbierania sygnałów. ImageWire składa się z rdzenia światłowodowego o średnicy 0.006" (0.15 mm), umieszczonego w osłonie o maksymalnej średnicy zewnętrznej 0.019" (0.48 mm).
<ol>
 <li>Zanurz szczura w narkozie z użyciem izofluranu (2%) i ketaminy (25 mg/kg). Pod kontrolą mikroskopu przeprowadź ponowną laparotomię pośrodkową, aby odsłonić aortę podnerkową. </li>
 <li>Zaklemuj proksymalny odcinek aorty oraz obie tętnice biodrowe.</li>
 <li>Wykonaj poprzeczną arteriotomię na dystalnym końcu aorty, przepłucz naczynie 1ml PBS za pomocą cewnika 28G, a następnie wprowadź cewnik OCT i przesuń go w głąb aorty. </li>
 <li>Obrazowanie OCT z motoryzowanym wycofywaniem wykonuje się przy prędkości wycofywania 1,0 mm na sekundę. </li>
 <li>Nabywaj obrazy z częstotliwością 15 klatek na sekundę; obrazy są wyświetlane z wykorzystaniem tablicy mapowania kolorów i archiwizowane cyfrowo. </li>
 <li>Zamknij arteriotomię. </li>
 <li>Zamknij powłoki brzuszne i nacięcia za pomocą szwów ciągłych 4-0 Vicryl (Ethicon, Norderstedt, Niemcy). 
Szwy skórne należy usunąć w ciągu 7-14 dni, nawet w przypadku zastosowania Vicryl. </li>
 <li>Maksymalne tworzenie się neointimy rozwinie się w ciągu 6 tygodni po implantacji stentu.</li>
</ol>
Analiza obrazów OCT
Pomiary OCT są wykonywane przy użyciu autorskiego oprogramowania do obrazowania LightLab OCT z interfejsem dostosowanym do szczura.
<ol>
 <li>Przeprowadź kalibrację systemu względem odbicia drutu obrazowania OCT, co stanowi standardową technikę kalibracji dla tego systemu.</li>
 <li>Ręcznie obrysuj pola przekroju poprzecznego (CSA) światła naczynia oraz stentu w odstępach co 1,0 mm.</li>
 <li>Oblicz pole przekroju poprzecznego blaszki miażdżycowej, odejmując CSA światła od CSA stentu. Oblicz procentowy obszar blaszki jako CSA blaszki podzielone przez CSA stentu (%). Oblicz średni procentowy obszar blaszki.</li>
</ol>
Walidacja techniki OCT
Wyniki OCT dobrze korelują z badaniem histopatologicznym (Rysunek 1). Powierzchnie przekroju poprzecznego (CSA) blaszek miażdżycowych w badaniu histologicznym oblicza się zgodnie z powyższym opisem. Badanie histologiczne wykazuje hiperplazję intimy z wysoką gęstością komórek wrzecionowatych i niewielką liczbą mononuklearnych komórek zapalnych. Po 6 tygodniach stenty są całkowicie pokryte tkanką ziarninową neointimy, a CSA blaszki wynosi 1.3±0.4 mm2 w stencie o rozmiarze 2.5mm.
<img src="/files/ftp_upload/1346/1346fig1tmb.jpg" border="0" alt="Optyczna tomografia koherentna i porównanie histologiczne; zawiera wykres analizy przekroju poprzecznego." data-altupdatedat="1787630408000"> Rysunek 1: Obrazy OCT (A) i histologiczne (B; powiększenie 16x) stentu 6 tygodni po implantacji. Wyniki CSA blaszki uzyskane z obrazów OCT dobrze korelują z badaniem histopatologicznym. Proszę <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/1346/1346fig1.jpg">kliknąć tutaj</a>, aby zobaczyć powiększoną wersję rysunku 1.

<ol><li>Langeveld, B., Roks, A. J. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Commentary%3A+rat+restenosis+models%3A+means+for+thorough+restenosis+research%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+endovascular+therapy%22%5BJournal%5D)">Commentary: rat restenosis models: means for thorough restenosis research.</a> Journal of endovascular therapy. 12 (3), 343-345 (2005).</li>
<li>Roguin, A., Grenadier, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Stent-based+percutaneous+coronary+interventions+in+small+coronary+arteries%5BTitle%5D)+AND+%22Acute+Card+Care%22%5BJournal%5D)">Stent-based percutaneous coronary interventions in small coronary arteries.</a> Acute Card Care. 8, 70-74 (2006).</li>
<li>Post, M. J., Waltenberger, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Small+Is+Beautiful%3A+A+Miniature+Stent+Model%5BTitle%5D)+AND+%22Arterioscler.+Thromb.+Vasc.+Biol%22%5BJournal%5D)">Small Is Beautiful: A Miniature Stent Model.</a> Arterioscler. Thromb. Vasc. Biol. 27, 701-702 (2007).</li>
<li>Langeveld, B., Roks, A. J. M., Tio, R. A., Boven, A. J. van, Want, J. J. L. vander, Henning, R. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Rat+abdominal+aorta+stenting%3A+a+new+and+reliable+small+animal+model+for+in-stent+restenosis%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+vascular+research%22%5BJournal%5D)">Rat abdominal aorta stenting: a new and reliable small animal model for in-stent restenosis.</a> Journal of vascular research. 41 (5), 377-386 (2004).</li>
<li>Lowe, H. C., Chesterman, C. N., Khachigian, L. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Rat+aortic+stenting%3A+toward+a+simple+model+of+in-stent+restenosis%5BTitle%5D)+AND+%22The+American+journal+of+cardiology%22%5BJournal%5D)">Rat aortic stenting: toward a simple model of in-stent restenosis.</a> The American journal of cardiology. 88 (6), 720-721 (2001).</li>
<li>Groenewegen, R., Harst, R. vander, Roks, R., Buikema, R., Zijlstra, R., Gilst, R. van <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effects+of+angiotensin+II+and+angiotensin+II+type+1+receptor+blockade+on+neointimal+formation+after+stent+implantation%5BTitle%5D)+AND+%22International+Journal+of+Cardiology%22%5BJournal%5D)">Effects of angiotensin II and angiotensin II type 1 receptor blockade on neointimal formation after stent implantation.</a> International Journal of Cardiology. , (2007).</li>
<li>de Smet, B. J. G. L., Zijlstra, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+look+at+drug+eluting+stents+with+optical+coherence+tomography%5BTitle%5D)+AND+%22European+Heart+Journal%22%5BJournal%5D)">A look at drug eluting stents with optical coherence tomography.</a> European Heart Journal. 28 (8), 918-919 (2007).</li>
<li>Pinto, T. L., Waksman, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Clinical+applications+of+optical+coherence+tomography%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+interventional+cardiology%22%5BJournal%5D)">Clinical applications of optical coherence tomography.</a> Journal of interventional cardiology. 19 (6), 566-573 (2006).</li>
<li>Matsumoto, D., Shite, J., Shinke, T., Otake, H., Tanino, Y., Ogasawara, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Neointimal+coverage+of+sirolimus-eluting+stents+at+6-month+follow-up%3A+evaluated+by+optical+coherence+tomography%5BTitle%5D)+AND+%22European+Heart+Journal%22%5BJournal%5D)">Neointimal coverage of sirolimus-eluting stents at 6-month follow-up: evaluated by optical coherence tomography.</a> European Heart Journal. 28 (8), 961-967 (2007).</li>
<li>Kawase, Y., Suzuki, Y., Ikeno, F., Yoneyama, R., Hoshino, K., Ly, H. Q. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Comparison+of+nonuniform+rotational+distortion+between+mechanical+IVUS+and+OCT+using+a+phantom+model.+Ultrasound+in+medicine+%26amp%3B+biology%5BTitle%5D)+AND+%22%22%5BJournal%5D)">Comparison of nonuniform rotational distortion between mechanical IVUS and OCT using a phantom model. Ultrasound in medicine &amp; biology.</a> 33 (1), 67-73 (2007).</li>
</ol>

Wszystkie szczury przetrzymywano w placówce opieki nad zwierzętami w Stanford University Medical Center (Stanford, Ca), w standardowych warunkach temperatury, wilgotności i oświetlenia, z dostępem do paszy dla szczurów i wody ad libitum. Badanie przeprowadzono zgodnie z wytycznymi Guide for the Care and Use of Laboratory Animals opublikowanymi przez Narodowe Instytuty Zdrowia USA (publikacja NIH nr 85-23, z rewizją z 1996 r.). Protokół badania został zatwierdzony przez Administrative Panel on Laboratory Animal Care na Uniwersytecie Stanforda.

Chociaż modele tętnicy biodrowej królika i tętnicy wieńcowej świni są najczęściej stosowane do implantacji stentów 1, wymagają one zastosowania kombinacji sprzętu radiologicznego i chirurgicznego, pojemność pomieszczeń dla zwierząt jest ograniczona, a koszty zakupu są wysokie. Ograniczeniami modelu stentu u szczura są konieczność stosowania stentów zaprojektowanych specjalnie dla szczurów, stosunek metalu do tętnicy skutkujący większymi uszkodzeniami naczyniowymi2 oraz sztucznie wysoka częstość występowania zakrzepicy3.
Model stentowania u szczura jest prostym, niedrogim, szybkim i dokładnym modelem przedklinicznym 4. Po wstępnej publikacji Lowe i współpracowników dotyczącej bezpośredniego stentowania aorty szczura 5, wykazano szczegółowo wykonalność i przydatność tego modelu do oceny patofizjologii restenozy wewnątrzstentowej 5,6. Średnica aorty szczura jest wystarczająca, aby umożliwić rozszerzenie dostępnych komercyjnie stentów bez naruszenia fizjologicznej architektury naczynia. Wykazano, że mechanizmy patofizjologiczne, takie jak tworzenie zakrzepów, zapalenie i proliferacja SMC, rozwijają się w tych modelach szczurzych analogicznie jak u królików i świń. W związku z tym modele te stanowią dobre odwzorowanie rzeczywistego procesu restenozy.
Technologia obrazowania wysokiej rozdzielczości OCT jest użyteczna w ocenie hiperplazjitmy. Głębokość penetracji wynosi zaledwie 1,5-2 mm, jednak jej rozdzielczość jest o rząd wielkości większa niż w przypadku wewnątrznaczyniowego ultrasonografu (IVUS) 7,8. Liczne badania porównujące OCT z IVUS prowadzą do wniosku, że OCT jest obecnie preferowaną techniką oceny hiperplazji neointimy po implantacji stentu 8-10. Zwłaszcza w przypadku małych zwierząt o niewielkich średnicach naczyń, wysoka rozdzielczość OCT czyni tę metodę najlepszą modalnością obrazowania do oceny restenozy.
Podsumowując, niniejszy film pokazuje, że (1) stenting aorty szczura jest łatwo wykonalny, (2) stenting aorty brzusznej szczura nadaje się do testowania stentów produkowanych komercyjnie oraz (3) obrazowanie OCT jest dokładną i elegancką techniką do długofalowego monitorowania restenozy wewnątrzstentowej.

obrazowanie restenozy wewnątrzstentowej: niedrogi, niezawodny i szybki model przedkliniczny

Imaging In-Stent Restenosis: An Inexpensive, Reliable, and Rapid Preclinical Model

Przedkliniczne modele restenozy są niezbędne do wyjaśnienia procesów patofizjologicznych prowadzących do restenozy wewnątrzstentowej oraz do optymalizacji istniejących i przyszłych stentów uwalniających lek.
Dostępna jest szeroka gama przeciwciał oraz szczepów transgenicznych i knockout w przypadku szczurów. W związku z tym model restenozy wewnątrzstentowej u szczura byłby dogodny do prowadzenia badań patobiologicznych i patofizjologicznych.
W tym filmie przedstawiamy pełną procedurę oraz potencjalne problemy związane z modelem stenta u szczura, który jest odpowiedni do wysokoprzepustowych badań nad stentami. Omówimy chirurgiczną procedurę implantacji stenta oraz ocenę restenozy wewnątrzstentowej z wykorzystaniem najbardziej precyzyjnej techniki, jaką jest OCT (tomografia optyczna koherentna). Technika ta zapewnia wysoką dokładność w ocenie powierzchni przekroju poprzecznego (CSA) blaszek miażdżycowych i dobrze koreluje z badaniami histologicznymi, które wymagają specjalistycznych i czasochłonnych technik zatapiania i krojenia tkanek. Obrazowanie OCT pozwala ponadto na monitorowanie podłużne rozwoju restenozy wewnątrzstentowej u tego samego zwierzęcia, w przeciwieństwie do jednorazowych pomiarów w histologii.

W niniejszym materiale wideo przedstawiono sposób wykorzystania niedrogiego i niezawodnego modelu przedklinicznego do badania procesów patobiologicznych i patofizjologicznych rozwoju restenozy wewnątrzstentowej. Zaprezentowano również podłużny monitoring in vivo z wykorzystaniem OCT (optycznej koherentnej tomografii) oraz analizę obrazów OCT.

Obrazowanie restenozy wewnątrzstentowej: niedrogi, niezawodny i szybki model przedkliniczny

Przedkliniczne modele restenozy są niezbędne do wyjaśnienia procesów patofizjologicznych prowadzących do restenozy wewnątrzstentowej oraz do optymalizacji istniejących i...

Witam, jestem dr Schwab z Laboratorium Transplantacji Komórek Macierzystych i Immunologii Transplantacyjnej na Uniwersytecie Stanforda. Jestem dr Dee. Pracuję w Katedrze Chirurgii Kardiothorakalnej na Uniwersytecie Centralnym.Jestem dr Keno z Katedry Medycyny Sercowo-Naczyniowej Uniwersytetu Stanforda. Dzisiaj zaprezentujemy procedurę implantacji stentów. Zademonstrujemy również OCT jako nową technikę obrazowania in vivo.W naszym laboratorium wykorzystujemy ten niedrogi, niezawodny i szybki model przedkliniczny do badania rozwoju stenozy wewnątrzstentu. Przejdźmy zatem do działania. Aby rozpocząć tę procedurę, przygotuj stent, napełniając pistolet 10 ccs soli fizjologicznej, usuwając powietrze i blokując go.Następnie należy połączyć cewnik ze stentem oraz pistolet. Po przygotowaniu stentu samiec szczura rasy Sprague-Dawley zostaje znieczulony izofluranem, a następnie wykonuje się górną laparotomię pośrodkową w celu odsłonięcia aorty podnerkowej. Kolejne kroki są wykonywane pod kontrolą mikroskopową.Aortę brzuszną wypreparowuje się z otaczających tkanek na odcinku od poziomu tętnic nerkowych w dół, aż do rozwidlenia. Należy pamiętać, że nie ma potrzeby oddzielać aorty od żyły głównej dolnej. Aby zatrzymać przepływ krwi w aorcie, należy użyć mikroklipsów, zakładając w pierwszej kolejności klips proksymalny.Następnie, po stronie dystalnego zacisku, poszczególne odgałęzienia są zaciskane. W kolejnym kroku aortę otwiera się za pomocą niewielkiego nacięcia poprzecznego, w bezpiecznej odległości od zacisku proksymalnego, a następnie przepłukuje heparyną. Po otwarciu aorty śródbłonek aorty jest usuwany poprzez wprowadzenie dwufrenchowego cewnika do embolektomii tętniczej Fogarty'ego.Zdejmij plastikową nasadkę ze stentu, wprowadź stent do aorty i go rozwiń. Długość stentu nie powinna być zmieniana w ramach tego samego badania; w zależności od użytego stentu zastosuj odpowiednie ciśnienie balonika, aby uzyskać pożądany średnicę. Aby uniknąć zwężeń przed i za stentem, średnica stentu nie powinna przekraczać średnicy naczynia o więcej niż 10%. Po rozwinięciu stentu przepłucz go heparyną.Po zakończeniu implantacji stentu przełącz widok mikroskopowy na powiększenie 10 x. Małe nacięcie aorty zamyka się szwami ciągłymi z prolinu 9.0. Na koniec zdejmuje się zaciski i zamyka nacięcie brzuszne warstwowo, stosując szwy ciągłe z Vicrylu 3-0.Aby rozpocząć obrazowanie za pomocą optycznej koherentnej tomografii, wykonuje się medianową relaparotomię w celu odsłonięcia aorty podnerkowej oraz zaklampowania proksymalnej części aorty oraz obu tętnic biodrowych. Następnie wykonuje się poprzeczną aortotomię. W kolejnym kroku wprowadza się cewnik OCT i przesuwa go w głąb aorty.A światło przesuwa się teraz od strony proksymalnej do, wiecie, możecie to tutaj zobaczyć. Tak, tak, widać to. O, to jest całkiem ciekawe.Po wprowadzeniu cewnika można rozpocząć obrazowanie OCT. Aortę przemywa się solą fizjologiczną i wykonuje zautomatyzowany wycof cewnika. Obrazowanie OCT jest przeprowadzane przy prędkości wycofu wynoszącej 1 mm/s.Obrazy są rejestrowane z częstotliwością 15 klatek na sekundę. Pozyskane obrazy są wyświetlane z użyciem tablicy mapowania kolorów i archiwizowane cyfrowo. Po zakończeniu akwizycji obrazów arteriotomię zamyka się za pomocą szwów ciągłych z nici Prolene 9.0.Na koniec nacięcia brzuszne zamyka się szwami ciągłymi z nici Vicryl 3-0. Po uzyskaniu obrazów OCT można przystąpić do analizy obrazów przy użyciu autorskiego oprogramowania LightLab OCT z interfejsem dostosowanym do szczura. Najpierw należy skalibrować system względem odbicia od przewodu obrazowania OCT.Następnie należy ręcznie obrysować pola przekroju światła naczynia oraz stentu w odstępach jednego milimetra w celu wykonania obliczeń. Pole przekroju blaszki miażdżycowej oblicza się, odejmując pole przekroju światła naczynia od pola przekroju stentu. Procentowy udział pola blaszki miażdżycowej oblicza się, dzieląc pole przekroju blaszki miażdżycowej przez pole przekroju stentu.Wyniki OCT dobrze korelują z obrazem histopatologicznym blaszki miażdżycowej. Powierzchnie przekroju obliczono zgodnie z opisem. Badanie histologiczne przeprowadzone sześć tygodni po implantacji stentu wykazuje hiperplazję intimy z wysoką gęstością komórek wrzecionowatych i jedynie nielicznymi ogniskami stanu zapalnego jednojądrowego.Po sześciu tygodniach stenty są całkowicie pokryte tkanką ziarninową neointimy, a pole przekroju blaszki miażdżycowej wynosi 1,3 ± 0,4 mm² w stencie o średnicy 2,5 mm. Właśnie zaprezentowaliśmy sposób implantacji ludzkiego stentu w modelu we order oraz metody OCT służące do monitorowania rozwoju stenozy in vivo.Podczas wykonywania tej procedury należy upewnić się, że użyte świnki morskie ważą ponad 500 g, aby ich brzuszne tętnice AAR odpowiadały rozmiarem ludzkim tętnicom wieńcowym, a tym samym rozmiarowi stentu. Pamiętaj, aby unikać zjawiska „can lab” oraz uszkodzenia naczynia podczas implantacji. To wszystko.Dziękujemy za oglądanie i życzymy powodzenia w przeprowadzaniu eksperymentów.

imaging-stent-restenosis-an-inexpensive-reliable-rapid-preclinical

Research

JoVE Journal

Biology

Biologia

Obrazowanie re stenosisu w stentach: Niedrogi, niezawodny i szybki model przedkliniczny

Niniejszy film przedstawia model służący do badania rozwoju hiperplazji intimy po implantacji stentu z wykorzystaniem ludzkiego naczynia (IMA) w modelu szczura z niedoborem odporności.

Przeszczepianie i stentowanie ludzkiej tętnicy piersiowej wewnętrznej (IMA): model ludzki do badania rozwoju restenozy wewnątrzstentowej

Rozkłady odkształceń tętnicy wywołane przez stent są charakteryzowane przy użyciu optycznego systemu pomiaru odkształceń powierzchniowych. Ta technika wizualizacji jest wykorzystywana w celu uzyskania wiedzy na temat wpływu implantacji stentu na naczynie gospodarza.

Monitorowanie mechaniki ścianek podczas wprowadzania stentu do naczynia

Opisano model implantacji stentu w tętnicy szyjnej myszy. W porównaniu z innymi podobnymi metodami, procedura ta jest bardzo szybka, prosta i dostępna, oferując możliwość zbadania w wygodny sposób reakcji ściany naczyniowej na różne stenty uwalniające leki oraz molekularnych mechanizmów restenozy.

Mysi model implantacji stentu w tętnicy szyjnej do badania restenozy

Rezerwa przepływu wieńcowego (CFR) jest przydatna do oceny zapotrzebowania tlenu w mięśniu sercowym i oceny ryzyka sercowo-naczyniowego. W badaniu tym ustanowiono krok po kroku metodę echokardiografii dopplerowskiej przezklatkowej (TTDE) do podłużnego monitorowania zmian CFR, mierzonych z tętnicy wieńcowej u myszy, pod eksperymentalnym przeciążeniem ciśnieniowym pasma aorty.

Ultradźwiękowa ocena przepływu w tętnicach wieńcowych i rezerwy przepływu wieńcowego przy użyciu modelu przeciążenia ciśnieniowego u myszy

Restenoza po zabiegach sercowo-naczyniowych (operacja pomostowania, angioplastyka lub stentowanie) jest poważnym problemem zmniejszającym trwałość tych procedur. Idealna terapia hamowałaby proliferację komórek mięśni gładkich (VSMC), jednocześnie promując regenerację śródbłonka. Opisano model jednoczesnej oceny proliferacji VSMC i funkcji śródbłonka in vivo.

Mysi uraz zmiażdżenia aorty: skuteczny model in vivo proliferacji komórek mięśni gładkich i funkcji śródbłonka

Opisujemy nowatorską, opłacalną i efektywną technikę przezskórnego dostarczania trójwymiarowo drukowanych implantów wieńcowych do tworzenia modeli choroby niedokrwiennej serca u świń z zamkniętą klatką piersiową. Implanty zostały zamocowane za pomocą cewnika przedłużającego matkę i dziecko z wysokim wskaźnikiem skuteczności.

Nowatorskie przezskórne podejście do wdrażania drukowanych w 3D implantów zwężenia choroby wieńcowej w modelach choroby niedokrwiennej serca u świń

Ten protokół opisuje wszczepianie ludzkich stentów wieńcowych do aorty brzusznej szczurów z tłem apoE-/- przy użyciu dostępu przezudowego. W porównaniu z innymi modelami zwierzęcymi, modele mysie mają zalety wysokiej przepustowości, odtwarzalności, łatwości obsługi i utrzymania oraz szerokiej dostępności markerów molekularnych.

Implantacja stentów wieńcowych wielkości człowieka do aorty brzusznej szczura przy użyciu dostępu przezudowego

Ten protokół opisuje minimalnie inwazyjną procedurę chirurgiczną dla wstępującego pasma aorty u świń.

Małoinwazyjny model zwężenia zastawki aortalnej u świń

W tym filmie demonstrujemy, jak używać mikrofluidycznego urządzenia do neuronów bez konieczności wiązania plazmowego.

Łączenie PDMS bez użycia plazmy w celu taniego wytwarzania urządzeń mikrofluidycznych

Komora pomiarowa analitycznej ultrawirówki (AUC) mieści próbkę oraz bufor referencyjny i podczas eksperymentów jest poddawana działaniu wysokiej próżni oraz prędkościom rotacji do 60 000 rpm. Niniejszy film zaprezentuje rygorystyczną dbałość o szczegóły, która jest niezbędna podczas montażu, napełniania i centrowania tego kluczowego elementu eksperymentu AUC.

Montaż, napełnianie i centrowanie celi pomiarowej analitycznej ultrawirówki

Poznaj niezawodną metodę implantacji stentów i obrazowania OCT w modelu przedklinicznym szczura. Technika ta umożliwia szczegółową analizę rozwoju restenozy wewnątrzstentowej w czasie rzeczywistym.

Obrazowanie restenozy wewnątrzstentowej: niedrogi, niezawodny i szybki model przedkliniczny

Przeglądaj więcej filmów