Name: Sonda mikroprzepływowa: działanie i zastosowanie do miejscowej obróbki powierzchni (Wideo) | JoVE Journal
Uploaded: 2009-06-04T00:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 7 s
Description: Poznaj montaż i zastosowanie sondy mikroprzepływowej do lokalnej obróbki powierzchni. Film pokazuje kluczowe kroki wyrównania z mikroskopem odwróconym i przetwarzania podłoży w roztworze buforowym.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Niniejsza praca była finansowana przez Fonds de Recherche sur la Nature et les Technologies de Quebec, Canada Foundation for Innovation oraz Canadian Institutes of Health Research (CIHR).

1. Mikrowytwarzanie głowicy sondy (proces nie pokazany na filmie)
<ol>
<li>Wafer Si2 o średnicy czterech cali i grubości 525 μm, z warstwą termiczną SiO2 o grubości 1 μm, zostaje pokryty fotorezystem (PR) metodą spin-coatingu przez 45 s przy 4000 rpm.</li>
<li>Wafer jest wstępnie wypalany w temperaturze 110C przez 50 s, a następnie naświetlany przez maskę zawierającą wszystkie elementy (porty i mikrokanały) przez 5 s, wywoływany i płukany w wodzie DI.</li>
<li>Nieosłonięty SiO2 jest trawiony w roztworze buforowanego kwasu fluorowodorowego (BHF) w stosunku 1:7 przez ≈15 min (zakończenie trawienia sygnalizuje utrata zwilżalności podłoża w miejscach, gdzie SiO2 został wytrawiony). Do usuwania pozostałego PR stosuje się plazmę O2 lub aceton.</li>
<li>Druga warstwa PR jest nakładana metodą spin-coatingu przy 1500 rpm przez 45 s, co pozwala uzyskać grubą warstwę wierzchnią o grubości ≈10 μm [31]. Wzór SiO2 pod tą warstwą PR pozostaje widoczny i służy do wyrównania wafera z drugą maską zawierającą wyłącznie porty.</li>
<li>Po naświetleniu i wywołaniu PR, wafer jest płukany, suszony i wypalany po procesie w temperaturze 95C przez 20 min.</li>
<li>Wafer Si jest przytwierdzony do wafera wspierającego za pomocą stopionego białego wosku w celu ochrony uchwytu.</li>
<li>Do przeniesienia wzorów PR i osadzonego SiO2 na topografię wafera stosuje się trawienie reaktywne z jonizacją głęboką (ICP DRIE) w procesie trzystopniowym:<ol>
<li>DRIE w celu wykonania portów o głębokości ≈500μm w Si (wzór zdefiniowany przez grubą warstwę PR).</li>
<li>Bez wyjmowania wafera z urządzenia DRIE, PR jest usuwany za pomocą plazmy.</li>
<li>Odsłonięty wzór SiO2 służy jako maska dla drugiego procesu trawienia suchego, w wyniku którego powstają kanały o głębokości 50 μm oraz otwory w waferze dla portów napełniających i odpowietrzających. Po wyjęciu z urządzenia, wafer wspierający jest oddzielany pod strumieniem ciepłej wody. Następnie mikroobrobiony wafer jest czyszczony acetonem, etanolem i wodą DI.</ol></li>
<li>Pojedyncze chipy MFP są wycinane.</li>
<li>Blok interfejsowy z PDMS jest wytwarzany poprzez odlewanie w mikromformie składającej się z dwóch ustrukturyzowanych elementów z poli(metakrylanu metylu) (PMMA), polerowanej stalowej płyty tworzącej dno oraz dwóch kapilar (każda włożona w jeden z dwóch otworów dostępowych w stalowej płycie), które służą jako wypełniacze dla otworów połączeń fluidycznych. PDMS jest utwardzany w piecu w temperaturze 60C przez co najmniej 1 h.</li>
<li>Blok PDMS jest łączony z wyciętym krzemowym chipem MFP poprzez aktywację obu części w plazmie powietrznej przy ciśnieniu 1 mbar przez 24 s przy mocy 230W, a następnie połączenie obu części przy użyciu własnoręcznie wykonanego przyrządu do wyrównywania mechanicznego.</li>
<li>Zestaw jest pozostawiany do związania w piecu w temperaturze 60C przez minimum 1 godzinę.</li>
</ol>
2. Montaż urządzenia MFP
<ol>
<li>Szklane strzykawki gazoszczelne napełnia się odpowiednimi odczynnikami za pomocą plastikowych strzykawek i igieł, aby upewnić się, że nie ma w nich pęcherzyków powietrza. Zazwyczaj do wtryskiwania stosujemy strzykawkę o objętości 1 -10 µL, a do aspiracji strzykawkę o objętości 5-10 razy większej.</li>
<li>Strzykawki są łączone z kapilarami za pomocą złączy Nanotight o niskiej objętości martwej.</li>
<li>Kapilary są napełniane, a następnie pod mikroskopem sprawdzane pod kątem obecności pęcherzyków.</li>
<li>Chip MFP jest wstępnie napełniany roztworem buforu, aby zapobiec uwięzieniu pęcherzyków powietrza podczas podłączania kapilar.</li>
<li>Kapilary są wkładane do elementu połączeniowego z PDMS w głowicy sondy.</li>
</ol>
3. Konfiguracja MFP
<ol>
<li>Głowicę sondy zaciskamy w uchwycie sondy i montujemy na stacji sondowania umieszczonej na mikroskopie odwróconym </li>
<li>Strzykawki umieszczamy w precyzyjnych pompach strzykawkowych. </li>
<li>Podłoże, takie jak szkiełko przedmiotowe, wkładamy do wykonanego własnoręcznie uchwytu przymocowanego do stolika mikroskopu. </li>
<li>Równoległość plateau MFP i podłoża regulujemy za pomocą pary goniometrów, obserwując pierścienie Newtona (prążki interferencyjne), które pojawiają się w momencie zetknięcia MFP z podłożem. Punkt styku oraz częstotliwość pierścieni służą jako wskaźnik pochylenia. Gdy MFP jest wyrównany z powierzchnią, pojedynczy pierścień interferencyjny rozciąga się nad całą powierzchnią. Pomiar ten służy również do kalibracji odstępu między MFP a podłożem.</li>
<li>Przerwa między MFP a podłożem jest krytyczna dla procesów wzorkowania powierzchni. Ponieważ podłoże jest obrabiane poprzez skanowanie go pod MFP, wyrównanie poziome musi być dostrojone z mikrometryczną precyzją, co osiąga się za pomocą trójpunktowego wsparcia utworzonego przez trzy śruby mikrometryczne. </li>
</ol>
4. Obsługa MFP
<ol>
<li>Dozowanie jest kontrolowane za pomocą oprogramowania LabView. Praca urządzenia jest wizualizowana bezpośrednio oraz przy użyciu kamery CCD. Stosunek wstrzykiwania do aspiracji waha się od 1:3 do 1:10, w zależności od dyfuzyjności odczynnika w otaczającym buforze oraz pożądanego geometrycznego wzoru przepływu.</li>
<li>&nbsp;Aby sprawdzić prawidłowe działanie strzykawki aspiracyjnej oraz obecność pęcherzyków powietrza, przed rozpoczęciem właściwej aspiracji należy najpierw wstrzyknąć ciecz za pomocą strzykawki aspiracyjnej.</li>
<li>Rozpocząć wstrzykiwanie cieczy i monitorować przepływ oraz ograniczenie kulek lub fluorescencyjnego barwnika śledzącego.</li>
<li>Użyć sondy do konkretnej aplikacji, np. przeskanować powierzchnię w celu przeprowadzenia procesu osadzania, trawienia lub barwienia powierzchni bądź komórek.</li>
</ol>

<ol><li>Juncker, D., Schmid, H., Delamarche, E. Nature Materials. 4 (8), 622-622 (2005).</li>
</ol>

Sonda mikrofluidyczna (MFP) jest wszechstronna, ponieważ jest (i) mobilna, (ii) możliwa do dostosowania do różnych rodzajów odczynników i podłoży oraz (iii) może być obsługiwana na dużych obszarach.
Niepożądane pęcherzyki powietrza mogą prowadzić do zaburzeń przepływu. Aby ich uniknąć, wszystkie komponenty muszą zostać wypełnione cieczami przed montażem. &nbsp;Przerwa między sondą a powierzchnią wynosi zaledwie kilka mikrometrów, podczas gdy platforma (mesa) ma szerokość kilkuset mikrometrów,...

<table><tbody><tr><td>złącza mikrofluidyczne</td><td>Upchurch Scientific</td><td>złączki i tulejki Micro- oraz Nano-tight</td><td></td></tr><tr><td>dwuskładnikowy dozownik ręczny</td><td>Conprotec Inc.</td><td>DM400</td><td>Do dozowania i mieszania mieszaniny PDMS</td></tr><tr><td>LabVIEW</td><td>National Instruments</td><td>Wersja 8.0</td><td></td></tr><tr><td>piec z wymuszonym obiegiem powietrza</td><td>VWR international</td><td>1330FM</td><td></td></tr><tr><td>strzykawki szklane</td><td>Hamilton Co</td><td></td><td></td></tr><tr><td>kapilary</td><td>Polymicro Technologies</td><td></td><td></td></tr><tr><td>komora plazmowa</td><td>Tegal Corporation</td><td>Plasmaline 415</td><td></td></tr><tr><td>mikroskop odwrócony</td><td>Nikon Instruments</td><td>TE2000-E</td><td></td></tr><tr><td>pompy strzykawkowe</td><td>Cetoni</td><td>neMESYS</td><td></td></tr><tr><td>Sylgard 184</td><td>Ellsworth Adhesives</td><td>184 Sil Elast Kit</td><td></td></tr><tr><td>kamera</td><td>Photometrics</td><td>QuantEM 512SC</td><td></td></tr><tr><td>stół mikroskopowy</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>goniometry do uchwytów sond mikrofluidycznych</td><td>Melles Griot</td><td>07GON504</td><td></td></tr><tr><td>przesuw linearny</td><td>Applied Scientific Instrumentation</td><td>LS-50</td><td>Do kontroli osi z MFP</td></tr><tr><td>ręczny przesuw linearny</td><td>Newport Corp.</td><td>Seria 443-4</td><td>Do kontroli osi x i y MFP</td></tr><tr><td>stół mikroskopowy</td><td>Applied Scientific Instrumentation</td><td>PZ-2000</td><td>Z kontrolą osi x, y i z</td></tr></tbody></table>

sonda mikroprzepływowa: zasada działania i zastosowanie w lokalnej obróbce powierzchni

The Microfluidic Probe: Operation and Use for Localized Surface Processing

Urządzenia mikroprzepływowe umożliwiają przeprowadzanie analiz z wykorzystaniem minimalnych ilości próbek i w ostatnim czasie były stosowane do kontrolowania mikrośrodowiska komórek. Mikroprzepływy są zazwyczaj kojarzone z zamkniętymi mikrokanałami, co ogranicza ich zastosowanie do próbek, które można wprowadzić, a w przypadku komórek – hodować w ograniczonej objętości. Z kolei systemy mikro-pipetowania były wykorzystywane do lokalnej perfuzji komórek i powierzchni, w szczególności przy użyciu układów typu push-pull, w których jedna pipeta pełni rolę źródła, a druga odpływu, jednak ograniczenie przepływu w trzech wymiarach jest trudne do osiągnięcia. Co więcej, pipety są delikatne i trudne do precyzyjnego ustawienia, przez co są stosowane wyłącznie w konfiguracji statycznej. 
Sonda mikrofluidyczna (MFP) omija ograniczenia wynikające z konstrukcji zamkniętych kanałów mikrofluidycznych i zamiast zamykać próbkę w systemie mikrofluidycznym, pozwala na bezpośrednie dostarczanie przepływu mikrofluidycznego na próbkę oraz skanowanie próbki za pomocą MFP. Otwory wtryskowe i ssące znajdują się w odległości kilkudziesięciu mikrometrów od siebie, dzięki czemu mikrostrumień wtryskiwany w szczelinę jest ograniczony siłami hydrodynamicznymi otaczającego płynu i w całości zasysany z powrotem przez drugi otwór. Mikrostrumień może być przemieszczany po powierzchni podłoża, stanowiąc precyzyjne narzędzie do lokalnej depozycji/dostarczania odczynników, które można stosować na dużych obszarach poprzez skanowanie powierzchni sondą. 
W tym filmie prezentujemy sondę mikrofluidyczną1 (MFP). Szczegółowo wyjaśniamy, jak złożyć MFP, zamontować ją na mikroskopie odwróconym i wyrównać ją względem powierzchni podłoża, a na koniec pokazujemy, jak użyć jej do obróbki powierzchni podłoża zanurzonego w buforze.

W tym filmie prezentujemy mikrofluidyczną sondę1 (MFP). Szczegółowo wyjaśniamy, jak złożyć MFP, zamontować ją na mikroskopie odwróconym i wycentrować względem powierzchni podłoża, a na koniec pokazujemy, jak wykorzystać ją do obróbki powierzchni podłoża zanurzonego w roztworze buforowym.

Sonda mikroprzepływowa: zasada działania i zastosowanie w lokalnej obróbce powierzchni

Urządzenia mikroprzepływowe umożliwiają przeprowadzanie analiz przy użyciu minimalnych ilości próbek i były one ostatnio wykorzystywane do kontrolowania mikrośrodowiska komórek. ...

Niniejsza procedura pokazuje, jak montować i używać sondy mikroprzepływowej (MFP). Komponenty mikroprzepływowe MFP to strzykawki szczelne dla gazów, szklane kapilary, złącza micro tight firmy Upchurch oraz głowica MFP. W tym filmie zaprezentowane zostaną kluczowe kroki montażu i pozycjonowania.Po złożeniu MFP można wykorzystywać z szeroką gamą podłoży i odczynników do wzorowania i przetwarzania powierzchni. Witam, nazywam się Cecil Perot. Jestem pracownikiem postdoktoralnym w laboratorium Davida Yakera w Departamencie Inżynierii Biomedycznej na Uniwersytecie McGill w Montrealu w Kanadzie.Cześć, jestem Mohammad Kasime. Jestem doktorantem w laboratorium Davida Y w departamencie inżynierii biomedycznej Uniwersytetu McGill. Cześć, jestem David Yoker.Jestem adiunktem w Katedrze Inżynierii Biomedycznej i chciałbym powitać Państwa na dzisiejszym pokazie sondy mikrofluidycznej. Przedstawimy dziś procedurę obsługi i zastosowania sondy mikrofluidycznej. Procedurę tę stosujemy w naszym laboratorium do obróbki i strukturyzacji powierzchni.Zacznijmy zatem. Aby rozpocząć ten protokół, należy wykorzystać plastikowe strzykawki i igły do napełnienia szklanych strzykawek gazowych odczynnikami, upewniając się, że nie ma w nich pęcherzyków powietrza. Zazwyczaj do iniekcji stosujemy strzykawkę o objętości od 1 do 10 µL, a do aspiracji strzykawkę o objętości pięć do dziesięć razy większej.Następnie, przy użyciu nanozłączy o małej objętości martwej, strzykawki są łączone z kapilarami. Kapilary są następnie napełniane i sprawdzane pod mikroskopem pod kątem obecności pęcherzyków powietrza. Chip MFP jest uprzednio napełniany roztworem buforu, aby zapobiec uwięzieniu pęcherzyków podczas podłączania kapilar.Na koniec kapilary zostają wczepione w element przyłączeniowy z PDMS w mikrofabrykowanej głowicy MFP. Po złożeniu urządzenia MFP jesteśmy gotowi do jego konfiguracji. Podłoże zostaje umieszczone w wykonanym własnoręcznie uchwycie.Jest on przymocowany do stolika mikroskopu. Przerwa między MFP a podłożem ma krytyczne znaczenie dla procesów wzorowania powierzchni. Przy użyciu trójpodporowego układu utworzonego przez śruby mikrometryczne, wyrównanie poziome jest regulowane z precyzją mikrometryczną.Jest to konieczne, ponieważ podłoże jest przetwarzane poprzez skanowanie pod MFP. Aby rozpocząć konfigurację MFP, głowica sondy zostaje zamocowana w uchwycie sondy i zamontowana na stacji sondy na górze mikroskopu odwróconego. Następnie strzykawki umieszcza się w precyzyjnych pompach strzykawkowych.Następnie, przy użyciu pary goniometrów, reguluje się wyrównanie stołu MFP względem podłoża poprzez obserwację pierścieni Newtona, znanych również jako prążki interferencyjne. Pojawiają się one w momencie zetknięcia MFP z podłożem; punkt styku oraz częstotliwość występowania pierścieni służą jako wskaźniki nachylenia. Gdy MFP jest wyrównany z powierzchnią, pojedynczy pierścień interferencyjny rozciąga się nad całą jej powierzchnią.Ten pomiar służy również do kalibracji odstępu między MFP a podłożem. Po skonfigurowaniu MFP możemy przejść do jego obsługi. Podczas pracy MFP dozowanie jest kontrolowane przez oprogramowanie LabVIEW.Praca urządzenia jest monitorowana wizualnie oraz za pomocą kamery CCD. Przed rozpoczęciem właściwej aspiracji należy wstrzyknąć niewielką ilość cieczy, aby upewnić się, że strzykawka aspiracyjna jest odpowiednio ustawiona i nie ma w niej pęcherzyków powietrza. Następnie MFP jest zanurzane w buforze.Można teraz rozpocząć wtryskiwanie cieczy, monitorując jednocześnie ograniczenie przepływu kulek. Stosunek aspiracji do wtrysku waha się od 1:3 do 1:10, w zależności od dyfuzyjności odczynnika w otaczającym buforze oraz pożądanego geometrycznego wzorca przepływu. Ostatecznie sonda może być teraz wykorzystana w wielu zastosowaniach.Przedstawione tutaj wzory powierzchniowe zostały uzyskane za pomocą MFP z biotyną znakowaną fluoresceiną na strep divide, na szklanych slajdach z hydrożelem powleczonym ENC. Szybkość przepływu podczas wtryskiwania wynosiła 1 nanoliter per second, a szybkość przepływu podczas aspiracji 10 nanoliters per second, przy użyciu odpowiednio strzykawek o pojemności 10 microliter i 50 microliter. Przerwa między powierzchnią a sondą wynosiła 5 micrometers.Urządzenie MFP może być również wykorzystywane do lokalnego barwienia i przetwarzania komórek oraz tkanek. Ograniczenie przepływu zapobiega dyfuzji odczynnika i umożliwia precyzyjne barwienie chemiczne komórek. Jak pokazano tutaj, monowarstwa fibroblastów została zabarwiona przy użyciu 100 µg/mL dai.W ten sposób zaprezentowaliśmy obsługę sondy mikrofluidycznej. Podczas wykonywania tej procedury należy upewnić się, że w układzie nie ma pęcherzyków powietrza oraz że powierzchnia sondy mikrofluidycznej jest równoległa do podłoża. To wszystko.Dziękujemy za obejrzenie i życzymy powodzenia w przeprowadzaniu eksperymentów.

the-microfluidic-probe-operation-use-for-localized-surface

Research

JoVE Journal

Biology

Biologia

Sonda mikrofluidyczna: działanie i zastosowanie do zlokalizowanych przetwarzania powierzchni

Cyfrowa mikroprzepływność to technika polegająca na manipulowaniu pojedynczymi kroplami (~nL - mL) na macierzy elektrod poprzez przykładanie pól elektrycznych. Jest ona odpowiednia do przeprowadzania szybkich, sekwencyjnych, zminiaturyzowanych zautomatyzowanych analiz biochemicznych. W niniejszej pracy przedstawiamy platformę zdolną do automatyzacji kilku etapów przetwarzania proteomicznego.

Cyfrowa mikroprzepływowość w zautomatyzowanym przetwarzaniu proteomicznym

Mikrofluidyczne platformy kropelkowe są obiecującymi narzędziami do eksperymentów wysokoprzepustowych, ponieważ umożliwiają one niskokosztowe generowanie piko-litrowych, samoczynnie odseparowanych komór z częstotliwością rzędu kHz. Dzięki integracji z szybkimi, czułymi i wysokorozdzielczymi metodami spektroskopii fluorescencyjnej, duże ilości informacji generowanych w tych systemach mogą być efektywnie wydobywane, przetwarzane i wykorzystywane.

Metody detekcji fluorescencyjnej dla mikroprzepływowych platform kroplkowych

W tym filmie najpierw opisujemy procedury produkcji i obsługi akustycznego urządzenia przeciwprądowego powierzchniowej fali akustycznej (SAW). Następnie demonstrujemy eksperymentalną konfigurację, która pozwala zarówno na jakościową wizualizację przepływu, jak i analizę ilościową złożonych przepływów w urządzeniu pompującym SAW.

Wytwarzanie, eksploatacja i wizualizacja przepływu w mikrofluidyce akustyczno-przeciwprądowej opartej na powierzchniowych falach akustycznych

W tym protokole przedstawiono produkcję, konfigurację i podstawowe działanie mikroprzepływowego bioreaktora pikolitrowego (PLBR) do analizy pojedynczych komórek mikroorganizmów prokariotycznych. Mikroorganizmy istotne z przemysłowego punktu widzenia zostały przeanalizowane jako dowód zasadności, co pozwoliło na wgląd w tempo wzrostu, morfologię i niejednorodność fenotypową w określonych okresach czasu, co jest prawie niemożliwe przy użyciu konwencjonalnych metod.

Mikroprzepływowy bioreaktor pikoliterowy do analizy mikrobiologicznej pojedynczych komórek: produkcja, konfiguracja systemu i obsługa

W tym artykule prezentujemy mikroprzepływowy chip do analizy pojedynczych komórek. Umożliwia ilościowe oznaczanie wewnątrzkomórkowych białek, enzymów, kofaktorów i drugich przekaźników za pomocą testów fluorescencyjnych lub testów immunologicznych.

Mikroprzepływowy chip do wszechstronnej analizy chemicznej pojedynczych komórek

Ten protokół opisuje architekturę systemu do wykonywania automatycznych separacji cząstek o małej objętości (0,15–1,5 ml) za pomocą urządzenia mikroprzepływowego i omawia metody optymalizacji wydajności i działania urządzenia akustycznego.

Platforma mikroprzepływowa do precyzyjnego przetwarzania próbek o małej objętości i jej wykorzystanie do wymiarowania oddzielnych cząstek biologicznych za pomocą mikrourządzenia akustycznego

Przedstawiamy protokół do wykonywania subtraktywnego wzorcowania monowarstw żywych komórek na powierzchni. Osiąga się to poprzez miejscową i selektywną lizę przylegających komórek za pomocą sondy mikroprzepływowej (MFP). Lizat komórkowy pobrany z lokalnych regionów może być wykorzystany do dalszej analizy, umożliwiając badania profilowania molekularnego.

Szybkie subtraktywne modelowanie warstw żywych komórek za pomocą sondy mikroprzepływowej

Mikroprzepływowy chip został stworzony do produkcji par złotych kropek do generowania pęcherzyków tandemowych i pokrytych fibronektyną wysp do tworzenia wzorów pojedynczych komórek w pobliżu. Wynikowe pole przepływu scharakteryzowano za pomocą prędkości obrazu cząstek i wykorzystano do badania różnych efektów biologicznych, w tym poracji błony komórkowej, deformacji błony i wewnątrzkomórkowej odpowiedzi wapnia.

System mikroprzepływowy z modelowaniem powierzchni do badania interakcji pęcherzyków kawitacyjnych z komórką i wynikających z niej efektów biologicznych na poziomie pojedynczej komórki

Tutaj prezentujemy protokół dla nanolitografii sond skanujących na dużym obszarze, który jest możliwy dzięki iteracyjnemu dostosowaniu układów sond, a także wykorzystaniu wzorów litograficznych do badań interakcji komórka-powierzchnia.

Nanolitografia sondy skanującej o dużym obszarze ułatwiona dzięki automatycznemu wyrównaniu i zastosowaniu do wytwarzania substratów do badań nad kulturami komórkowymi

Demonstrujemy produkcję i użycie urządzenia mikroprzepływowego, które umożliwia wielokrotne pomiary mikroreologii śledzenia cząstek w celu zbadania reologicznych efektów powtarzających się przemian fazowych na miękkiej materii.

Połączenie mikrofluidyki i mikroreologii w celu określenia właściwości reologicznych miękkiej materii podczas powtarzających się przemian fazowych

Ten protokół opisuje techniki mikrofabrykacji wymagane do zbudowania urządzenia do elektroporacji mikroprzepływowej typu lab-on-a-chip. Konfiguracja eksperymentalna wykonuje kontrolowane transfekcje na poziomie pojedynczej komórki w ciągłym przepływie i może być rozszerzona do wyższych przepustowości dzięki kontroli populacyjnej. Przedstawiono analizę pokazującą możliwość elektrycznego monitorowania stopnia przepuszczalności błony komórkowej w czasie rzeczywistym.

Wytwarzanie i działanie systemu mikroelektroporacji o ciągłym przepływie z detekcją przepuszczalności

Poznaj montaż i zastosowanie sondy mikroprzepływowej do lokalnej obróbki powierzchni. Film pokazuje kluczowe kroki wyrównania z mikroskopem odwróconym i przetwarzania podłoży w roztworze buforowym.

Sonda mikroprzepływowa: zasada działania i zastosowanie w lokalnej obróbce powierzchni

Przeglądaj więcej filmów