Name: Nieinwazyjny rezonans magnetyczny i rezonans magnetyczny małych zwierząt in vivo: podstawowe procedury eksperymentalne (Wideo) | JoVE Journal
Uploaded: 2009-10-20T14:00:00.000+00:00
Duration: 12 min 27 s
Description: Poznaj podstawowe procedury nieinwazyjnego MRI i MRS in vivo u myszy. Naucz się optymalizacji sekwencji impulsów i strojenia cewek RF do analizy procesów biologicznych w badaniach nad nerwicą.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Niniejsze badanie było częściowo finansowane z grantu NIH/NIBIB R21EB008166 dla DL oraz grantów NIA AG028455 i NIA AG022385 dla DJM. Dziękujemy dr. Jamesowi Olsonowi z Fred Hutchinson Cancer Research Center za udostępnienie myszy z nowotworem D282.

<ol><li>Stecco, A., Saponaro, A., Carriero, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Patient+safety+issues+in+magnetic+resonance+imaging%3A+state+of+the+art%5BTitle%5D)+AND+%22Radiol+Med%22%5BJournal%5D)">Patient safety issues in magnetic resonance imaging: state of the art.</a> Radiol Med. 112, 491-491 (2007).</li>
<li>Heineman, F. W., Eng, J., Berkowitz, B. A., Balaban, R. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((NMR+spectral+analysis+of+kinetic+data+using+natural+lineshapes%5BTitle%5D)+AND+%22Magn+Reson+Med%22%5BJournal%5D)">NMR spectral analysis of kinetic data using natural lineshapes.</a> Magn Reson Med. 13, 490-490 (1990).</li>
<li>Amara, C. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mitochondrial+function+in+vivo%3A+spectroscopy+provides+window+on+cellular+energetics%5BTitle%5D)+AND+%22Methods%22%5BJournal%5D)">Mitochondrial function in vivo: spectroscopy provides window on cellular energetics.</a> Methods. 46, 312-312 (2008).</li>
<li>Blei, M. L., Conley, K. E., Kushmerick, M. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Separate+measures+of+ATP+utilization+and+recovery+in+human+skeletal+muscle%5BTitle%5D)+AND+%22J+Physiol%22%5BJournal%5D)">Separate measures of ATP utilization and recovery in human skeletal muscle.</a> J Physiol. 465, 203-203 (1993).</li>
<li>Marcinek, D. J., Schenkman, K. A., Ciesielski, W. A., Conley, K. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mitochondrial+coupling+in+vivo+in+mouse+skeletal+muscle%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Physiol+Cell+Physiol%22%5BJournal%5D)">Mitochondrial coupling in vivo in mouse skeletal muscle.</a> Am J Physiol Cell Physiol. 286, C457-C457 (2004).</li>
<li>Paganini, A. T., Foley, J. M., Meyer, R. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Linear+dependence+of+muscle+phosphocreatine+kinetics+on+oxidative+capacity%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Physiol%22%5BJournal%5D)">Linear dependence of muscle phosphocreatine kinetics on oxidative capacity.</a> Am J Physiol. 272, 501-501 (1997).</li>
<li>Sun, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+vivo+MRI+detection+of+gliomas+by+chlorotoxin-conjugated+superparamagnetic+nanoprobes%5BTitle%5D)+AND+%22Small%22%5BJournal%5D)">In vivo MRI detection of gliomas by chlorotoxin-conjugated superparamagnetic nanoprobes.</a> Small. 4, 495-495 (2008).</li>
<li>Marcinek, D. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Reduced+mitochondrial+coupling+in+vivo+alters+cellular+energetics+in+aged+mouse+skeletal+muscle%5BTitle%5D)+AND+%22J+Physiol%22%5BJournal%5D)">Reduced mitochondrial coupling in vivo alters cellular energetics in aged mouse skeletal muscle.</a> J Physiol. 569, 467-467 (2005).</li>
</ol>

Etapy poprzedzające akwizycję, takie jak dostrojenie/dopasowanie (tune/match) oraz shimowanie, są kluczowe dla uzyskania wysokiej rozdzielczości przestrzennej i wysokiego stosunku sygnału do szumu (SNR). Ważne jest również monitorowanie stanu zwierząt za pomocą systemu monitorowania, aby utrzymać stabilny stan fizjologiczny podczas akwizycji sygnałów, zgodnie z zasadami humanitarnego traktowania zwierząt oraz w celu zapobiegania potencjalnym pomiarom artefaktycznym. Procedury opisane w protokole mogą zostać zmodyfikowane...

<table><tbody><tr><td>Skaner MR Inova 200/4,7 T</td><td>Varian Inc., Agilent</td><td></td><td>Używany do obrazowania MRI myszy</td></tr><tr><td>Spektrometr NMR Inova 300/7 T</td><td>Varian Inc., Agilent</td><td></td><td>Używany do MRS mięśni szkieletowych myszy</td></tr></tbody></table>

nieinwazyjne in vivo mri i mrs małych zwierząt: podstawowe procedury eksperymentalne

Noninvasive In Vivo Small Animal MRI and MRS: Basic Experimental Procedures

Badania z wykorzystaniem rezonansu magnetycznego (MR) małych zwierząt stały się istotnym elementem nowoczesnych badań biomedycznych ze względu na ich nieinwazyjny charakter oraz bogactwo dostarczanych informacji biologicznych. MR nie wymaga zastosowania promieniowania jonizującego i może nieinwazyjnie zapewnić wyższą rozdzielczość oraz lepszy stosunek sygnału do szumu w porównaniu z innymi metodami tomograficznymi lub spektroskopijnymi. W niniejszym protokole skupimy się na obrazowaniu MR oraz spektroskopii MR (MRI/MRS) małych zwierząt w celu nieinwazyjnego pozyskania danych ważonych przez relaksację1Obrazy H myszy i aby uzyskać31Widma P mięśni mysich. Niniejsza praca nie ma na celu omówienia każdego aspektu MRI/MRS u małych zwierząt, lecz wprowadza podstawowe procedury eksperymentów MRI/MRS u myszy. Głównym celem tej pracy jest poinformowanie badaczy o podstawowych procedurach dotyczącychin vivoEksperymenty MR u małych zwierząt. Celem jest zapewnienie lepszego zrozumienia podstawowych procedur eksperymentalnych, aby badacze nowi w dziedzinie MR mogli lepiej zaplanować komponenty ich badań niezwiązane z MR, tak aby procedury MR i procedury poza-MR były ze sobą płynnie zintegrowane.

Niniejsza praca opisuje podstawowe procedury nieinwazyjnego obrazowania rezonansem magnetycznym (MRI) oraz spektroskopii rezonansu magnetycznego (MRS) małych zwierząt in vivo.

Nieinwazyjne in vivo MRI i MRS małych zwierząt: Podstawowe procedury eksperymentalne

Badania z wykorzystaniem rezonansu magnetycznego (MR) małych zwierząt stały się istotnym elementem współczesnych badań biomedycznych ze względu na ich nieinwazyjny charakter oraz...

Aby rozpocząć ten eksperyment, znieczuloną mysz umieszcza się na uchwycie dla zwierząt, który następnie wprowadza się do cewki częstotliwości radiowej (RF). Przed rozpoczęciem badania MRI lub MRS cewkę RF dostraja się do częstotliwości rezonansowej i dopasowuje do charakterystycznej impedancji 50 ohm. Następnie, po optymalizacji sekwencji impulsów, przeprowadza się akwizycję MRI lub MRS, a na koniec analizuje się obrazy lub widma przy użyciu programów analitycznych.Cześć, jestem Dawn Lee z R Research Lab w Departamencie Radiologii na Uniwersytecie Waszyngtońskim. A ja jestem David Senek, również z R Research Lab oraz z departamentów radiologii i bioinżynierii na Uniwersytecie Waszyngtońskim. Dzisiaj zaprezentujemy procedurę obrazowania metodą rezonansu magnetycznego oraz spektroskopię rezonansu magnetycznego u myszy.W naszym laboratorium stosujemy te procedury do badania modeli nowotworowych u myszy, dystrofii mięśniowej oraz metabolizmu mięśni. Zatem zacznijmy. Niniejszy protokół nie ma na celu omówienia każdego aspektu obrazowania MRI u małych zwierząt, lecz wprowadzenie do podstawowych procedur przeprowadzania eksperymentów MRI na myszach.Celem jest zapewnienie lepszego zrozumienia podstawowych procedur przeprowadzania eksperymentów MR in vivo na małych zwierzętach, aby badacze rozpoczynający pracę w dziedzinie MR mogli lepiej zaplanować komponenty swoich badań niezwiązane z MR. W efekcie procedury MR i procedury niezwiązane z MR będą mogły zostać płynnie zintegrowane. Aby rozpocząć przygotowania do eksperymentu obrazowania rezonansu magnetycznego lub MRI, umieść mysz znieczuloną izofluranem w uchwycie dla zwierząt, wkładając jej nos do stożka nosowego.Do obrazowania głowy można użyć stabilizatora głowy, a do obrazowania ciała – stabilizatora ciała. Należy utrzymać wilgotność oczu zwierzęcia, stosując sterylną maść nawilżającą do oczu.Zwierzę powinno być utrzymywane w temperaturze od 35 do 37 °C podczas eksperymentu w systemie cyrkulacji ciepłej wody. System monitorowania zwierząt jest wykorzystywany zarówno do monitorowania temperatury ciała, oddychania i cyklu serca, jak i do synchronizacji bramkowania oddechowego i kardiologicznego z akwizycją obrazów. Następnie należy umieścić standardową próbkę agarową obok zwierzęcia w celu monitorowania nagłych zmian sygnału.Ta standardowa próbka rolnicza jest szczególnie użyteczna w obrazowaniu wielowarstwowym i wielopunktowym czasowo. W przypadku wykrycia nieoczekiwianej zmiany sygnału w warstwie z pozyskanych obrazów, można ją wyeliminować. Po unieruchomieniu zwierzęcia i zainstalowaniu wszystkich komponentów monitorujących, należy umieścić uchwyt do zwierzęcia w centrum cewki częstotliwości radiowej (RF).Przenieś cewkę RF do pomieszczenia z magnesem i umieść ją w systemie cyrkulacji ciepłej wody znajdującym się wewnątrz magnesu. Następnie rozpocznij akwizycję danych MRI. Podczas obrazowania ustaw przepływomierz na wartość od 0,4 do 0,8 mililitrów na minutę i zmniejsz stężenie w parowniku izofluranu do poziomu 1,2–1,5%. Gaz wydychany z maski nosowej myszy jest odprowadzany do wewnętrznego systemu próżniowego.Aby zoptymalizować odbiór sygnału, nastroić cewkę RF do częstotliwości rezonansowej protonu H1 i dopasować impedancję charakterystyczną cewki do 50 ohm. Korzystając z panelu strojenia w skanerze MR, większość skanerów MRI dla ludzi nie wymaga oddzielnego procesu dopasowania, z wyjątkiem procedur MRS. Rozpocząć shimming, korzystając z pojedynczej sekwencji impulsów.Proces shimowania optymalizuje jednorodność pola magnetycznego w obszarze zainteresowania. Każdy skaner posiada własną metodę przeprowadzania procesu shimowania, w tym automatyczne procesy szybkiego shimowania, takie jak fast map oraz shimowanie gradientowe. Po zakończeniu shimowania należy zoptymalizować impuls RF.Poprzez maksymalizację jednowymiarowego profilu obrazu. Moce impulsów RF mogą być szeregowane przy zachowaniu stałej długości impulsu i utrzymaniu wystarczająco długiego czasu przerwy między powtórzeniami. TR powinno wynosić około od trzech do pięciu razy T1 tkanki; należy pozyskać obrazy orientacyjne w trzech ortogonalnych płaszczyznach, aby utworzyć obrazy osiowe, czołowe i strzałkowe.Do pozyskiwania obrazów lokalizacyjnych można zastosować szybką sekwencję akwizycji obrazu. Pozyskane obrazy posłużą do zaplanowania właściwego obrazowania wraz z wyznaczeniem płaszczyzn obrazowania. Podczas właściwego obrazowania stosowana jest sekwencja spin-echo.Pomiary T można przeprowadzić, stosując obrazowanie wieloechowe lub obrazowanie jednoechowe z wieloma wartościami T. Aby zakończyć eksperyment MRI, przyjrzyjmy się spektroskopii rezonansu magnetycznego in vivo (MRS) mięśni szkieletowych kończyny tylnej myszy, w celu oceny spoczynkowej i maksymalnej wydajności mitochondriów. Produkcja ATP może zostać określona za pomocą MRS poprzez pomiar zmian poziomu fosfokreatyny podczas niedokrwienia oraz bezpośrednio po jego ustąpieniu.Rozpocznij od wykonania mankietu do indukowania odwracalnego niedokrwienia. Wykorzystaj odcinek rury PVC o szerokości około 5-7 mm i średnicy wewnętrznej od 12 do 15 mm. Wywierć mały otwór w ściance, a następnie wytnij fragment balonu tak, aby był on otwarty z obu stron.Najlepiej sprawdzają się balony jakości helowej. Wsuń ten element przez fragment PVC i owiń go z powrotem. Przymocuj końce do siebie taśmą na zewnętrznej ściance elementu PVC.Następnie użyj koszulki termokurczliwej, aby uszczelnić końce balonu wokół rurki. Powstanie mankiet z litej ścianą zewnętrzną i nadmuchiwaną ścianą wewnętrzną. Wytnij fragment koszulki termokurczliwej i balonu wokół otworu z gwintem.Dbając o to, aby pomiędzy otworem a krawędzią elementu z PVC pozostało wystarczająco dużo materiału, wprowadź 1,5 centymetra kawałka metalu niemagnetycznego do otworu w PVC. Pozwoli to na napompowanie mankietu. Uszczelnij ten obszar epoksydową żywicą pięciominutową.Następnie przymocuj mankiet obok cewki RF w sondzie MRS i podłącz go do zewnętrznego manometru sygnałowego. Teraz umieść znieczuloną mysz w sondzie MRS, kładąc ją na plecach na podkładce dla myszy.Umieść wypełniony płynem balon na brzusznej stronie myszy i przymocuj go za pomocą pasów stabilizujących mysz. Włóż mysz wraz z podparciem ciała do cewki MRS. Przeciągnij jedną tylną kończynę przez mankiet niedokrwienny i cewkę MRS.Kończynę należy umieścić w cewce tak, aby była ona jak najbardziej wycentrowana. Taki układ pozwala na poziome ułożenie ciała zwierzęcia. W magnesie z pionowym otworem należy umieścić korpus sondy, a następnie przeprowadzić strojenie, dopasowanie i shimowanie w celu optymalizacji stosunku sygnału do szumu w MRS, zgodnie z opisem dla MRI, z wyjątkiem tego, że w MRS impuls RF jest optymalizowany poprzez maksymalizację amplitudy widma.Następnie należy zastosować P 31 MRS w celu zarejestrowania widm o wysokim stosunku sygnału do szumu w stanie pełnego rozluźnienia lub FRS do oznaczenia stosunków fosforanu nieorganicznego i fosfokreatyny do TP w warunkach pełnego rozluźnienia. Aby przeprowadzić eksperyment niedokrwienny, należy najpierw zarejestrować widma spoczynkowe przez około pięć minut. Następnie należy wywołać niedokrwienie poprzez napompowanie mankietu do poziomu od 270 do 300 mmHg na 10 do 12 minut.Zwolnij mankiet i zbierz widma regeneracji przez pięć minut. Eksperymenty można powtórzyć w kolejnych dniach. Teraz przedstawimy reprezentatywne wyniki MRI i MRS in vivo.Mysz naga posiada ksenoprzeszczep guza mózgu D 2 82 na grzbiecie i została poddana obrazowaniu z wykorzystaniem konwencjonalnej sekwencji spin-echo z różnymi efektami relaksacji. Na obrazie zależnym od T1 guz wykazuje intensywność zbliżoną do intensywności sąsiadującej tkanki. Natomiast na odpowiadającym mu obrazie T2 guz jest wyraźnie widoczny jako obszar hiperintensywny.Akwizycja wieloechowa umożliwia obliczenie mapy T2 zawierającej ilościowe informacje o zmienności T2 w organizmie zwierzęcia. Regionalne zmiany T2 w obszarze guza mogą być monitorowane wzdłużnie na obrazie nałożonym. Przedstawiono tutaj w pełni zrelaksowane widmo P 31 MRS z tylnej kończyny myszy.To widmo reprezentuje 16 zsumowanych FID. Kolejność pików od lewej do prawej odpowiada następującym metabolitom mięśniowym: fosforanowi nieorganicznemu pi, fosfokreatynie, PCr oraz fosforanom ATP gamma, alpha i beta. Widma 31P MRS zebrane podczas dynamicznego eksperymentu niedokrwienia i reperfuzji pokazują, że podczas niedokrwienia poziom PCr spada, a poziom Pi rośnie. Tempo spadku PCr podczas niedokrwienia jest równe spoczynkowej produkcji mitochondrialnej ATP.Odzyskiwanie PCR po niedokrwieniu może być wykorzystane do obliczenia maksymalnej produkcji ATP mitochondrialnego. Przedstawiliśmy sposób pozyskiwania obrazów myszy in vivo oraz pomiaru metabolizmu mięśni myszy in vivo z wykorzystaniem spektroskopii rezonansu magnetycznego i obrazowania rezonansu magnetycznego. Do badań MRS zbudowaliśmy specjalistyczną cewkę RF, która umożliwia utrzymanie ciała myszy w pozycji poziomej w magnesie z pionowym otworem.W związku z tym eksperymenty te można przeprowadzić w dowolnym pionowym systemie z szerokim otworem. Podczas wykonywania tej procedury należy pamiętać o zapewnieniu optymalnych warunków, takich jak lepsze strojenie i dopasowanie cewki RF oraz poprawa jednorodności pola magnetycznego. Ważne jest również monitorowanie stanu zwierzęcia za pomocą systemu monitorowania, aby utrzymać stabilny stan fizjologiczny organizmu i zapobiec wystąpieniu potencjalnych pomiarów artefaktowych.To wszystko. Dziękujemy za oglądanie i życzymy powodzenia w przeprowadzaniu eksperymentów.

noninvasive-vivo-small-animal-mri-mrs-basic-experimental

Research

JoVE Journal

Biology

Biologia

Nieinwazyjne in vivo badania MRI i MRS małych zwierząt: podstawowe procedury eksperymentalne

Obrazowanie rezonansem magnetycznym (MRI) stało się coraz popularniejszym narzędziem do badania fenotypu myszy z modyfikacjami genetycznymi. Niniejszy artykuł przedstawia metody niezbędne do przeprowadzenia wysokoprzepustowego fenotypowania myszy z modyfikacjami genetycznymi przy użyciu MRI dla wielu osobników jednocześnie.<br...

Neuroanatomiczny obrazowanie magnetycznemu rezonansem dla wielu myszy

Opisano model zwierzęcy urazu in vivo. Metoda wykorzystuje podskórne położenie nerwu strzałkowego. Prędkość, czas aktywacji mięśni oraz łuk ruchu są wcześniej określone i zsynchronizowane przy użyciu komercyjnego oprogramowania. Zmiany po urazie są monitorowane in vivo za pomocą obrazowania/spektroskopii MR.

Model gryzoni in vivo w urazie wywołanym przykurczem i nieinwazyjne monitorowanie powrotu do sprawności

Śledzenie komórek za pomocą MRI zyskało niezwykłą uwagę w ostatnich latach. Protokół ten opisuje znakowanie komórek dendrytycznych cząstkami bogatymi w fluor (19F), zastosowanie tych komórek in vivo oraz monitorowanie zakresu ich migracji do drenującego węzła chłonnego za pomocą 19F/1H MRI i 19F MRS.

Monitorowanie migracji komórek dendrytycznych za pomocą rezonansu magnetycznego 19F / 1H

Obrazowanie metodą rezonansu magnetycznego serca (CMR) ze wzmocnieniem kontrastowym pozwala na kompleksową ocenę serca in vivo w małych zwierzęcych modelach chorób sercowo-naczyniowych. W tym miejscu szczegółowo opisujemy procedury wykonywania obrazowania, rekonstrukcji i analizy CMR przy użyciu Small Animal Lock-Locker Inversion Recovery (SALLI) u szczurów.

Ocena czynności serca i morfologii mięśnia sercowego za pomocą rezonansu magnetycznego małych zwierząt z odwróconym odzysku z odwróconej szafki (SALLI) u szczurów

Opisujemy, jak wykonać rezonans magnetyczny i obrazowanie PET serca myszy. Protokół jest dostosowany do oceny skuteczności leczenia w modelach zawału mięśnia sercowego i niewydolności serca.

MRI i PET w mysich modelach zawału mięśnia sercowego

Ten film ilustruje metodę, przy użyciu klinicznego skanera 3 T, do obrazowania MR z kontrastem projekcji wzrokowej naiwnej myszy oraz do powtarzalnych i podłużnych badań in vivo zwyrodnienia nerwu wzrokowego związanego z ostrym uszkodzeniem nerwu wzrokowego i przewlekłym zwyrodnieniem nerwu wzrokowego u myszy z nokautem (p50KO).

In vivo (in vivo) Obrazowanie integralności włókien nerwu wzrokowego za pomocą rezonansu magnetycznego ze wzmocnieniem kontrastowym u myszy

To badanie pokazuje udane wprowadzenie obrazowania metodą rezonansu magnetycznego jako nieinwazyjnego narzędzia do oceny nieprawidłowości serca u myszy dotkniętych autoimmunologicznym zapaleniem mięśnia sercowego.  Dane wskazują, że technika ta może być stosowana do monitorowania postępu choroby u żywych zwierząt.

Nieinwazyjna ocena nieprawidłowości serca w eksperymentalnym autoimmunologicznym zapaleniu mięśnia sercowego za pomocą obrazowania za pomocą rezonansu magnetycznego u myszy

Opisano zastosowanie rezonansu magnetycznego o ultrawysokim polu jako nieinwazyjny sposób uzyskiwania informacji fenotypowych o modelach gryzoni dla wielotorbielowatości nerek i monitorowania interwencji. W porównaniu z tradycyjnym podejściem histologicznym, obrazy MRI można uzyskać in vivo, co pozwala na długotrwałą obserwację.

Zastosowanie rezonansu magnetycznego o ultrawysokim polu w modelach wielotorbielowatości nerek u małych gryzoni do fenotypowania in vivo i monitorowania leków

Tłumaczenie wyników mikroskopii przyżyciowej jest utrudnione ze względu na jego płytką głębokość penetracji w tkanki. W tym miejscu opisujemy mysi model komory z oknem grzbietowym, który umożliwia jednoczesną rejestrację mikroskopii przyżyciowej i klinicznie stosowanych metod obrazowania (np. CT, MRI) w celu bezpośredniej korelacji przestrzennej, potencjalnie usprawniając kliniczne tłumaczenie wyników mikroskopii przyżyciowej.

Mysi model guza w komorze grzbietowego fałdu skórnego do połączonej mikroskopii przyżyciowej i obrazowania metodą rezonansu magnetycznego w translacyjnych badaniach nad rakiem

Opisujemy in vivo protokół obrazowania fluorescencyjnego służący do monitorowania regeneracji mięśni za pomocą mioblastów znakowanych białkiem GFP po transplantacji do mięśni szkieletowych myszy zdrowych oraz dystroficznych. Protokół ten można zaadaptować do badania regeneracji mięśni poprzez transplantację innych typów komórek, a także w innych stanach chorobowych mięśni.

Śledzenie dynamiki wszczepiania mięśni u małych zwierząt za pomocą obrazowania fluorescencyjnego in vivo

Poznaj podstawowe procedury nieinwazyjnego MRI i MRS in vivo u myszy. Naucz się optymalizacji sekwencji impulsów i strojenia cewek RF do analizy procesów biologicznych w badaniach nad nerwicą.

Nieinwazyjne in vivo MRI i MRS małych zwierząt: Podstawowe procedury eksperymentalne

Przeglądaj więcej filmów