Test reakcji ucieczki: metoda badania reakcji larw danio pręgowanego na bodźce dotykowe

0 wyświetleń2:54 min • April 30th, 2023

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

- Na początek delikatnie przenieś kilka zarodków na szalkę Petriego zawierającą pożywkę dla zarodków. Teraz przytrzymaj kosmówkę kleszczami i zrób w niej rozdarcie innymi kleszczami.

Następnie delikatnie przepchnij zarodek przez rozdarcie. Usunięcie kosmówki z zarodka przyspiesza jego wzrost i ruch. Aby pozbyć się resztek, przenieś zarodki na inną szalkę Petriego zawierającą pożywkę zarodkową za pomocą pipety Pasteura.

Umieść szalkę Petriego w inkubatorze i pozwól zarodkom rosnąć w temperaturze 28 stopni Celsjusza. Przed eksperymentem ustaw oświetlony stolik mikroskopu wypełnionego wodą na 28 stopni Celsjusza, aby uniknąć jakichkolwiek odchyleń związanych z temperaturą w zachowaniu larw.

Umieść szalkę Petriego na scenie i zamontuj w kamerze nad szalką. Następnie wyśrodkuj zarodek w polu widzenia kamery. Teraz delikatnie dotknij zarodka igłą i nagraj reakcję larwy w oprogramowaniu do nagrywania kamery wideo.

Po otrzymaniu bodźca zarodek wykazuje silną reakcję ucieczki - gwałtowne pływanie wraz z ostrymi zakrętami. Zmierz czas między dotykiem a szczytowym przyspieszeniem larwy podczas ucieczki.

W przykładowym protokole będziemy obserwować reakcję larw danio pręgowanego na bodźce zewnętrzne.

- Aby wykonać test, umieść szalkę Petriego wypełnioną około 25 mililitrami pożywki dla zarodków na oświetlonym stoliku o kontrolowanej temperaturze ustawionej na około 28 stopni Celsjusza. Zamontuj szybką kamerę nad anteną. Uruchom oprogramowanie do nagrywania wideo i ustaw prędkość przechwytywania na 1,000 klatek na sekundę, aby zapewnić uchwycenie dużych prędkości pływania.

Umieść zarodek na środku szalki Petriego, wyraźnie widoczny w polu widzenia. Naciśnij przycisk nagrywania, a następnie dostarcz bodziec mechanosensoryczny, delikatnie dotykając zarodka igłą w czubek głowy.

Zatrzymaj nagrywanie, gdy zarodek wypłynie poza pole widzenia lub powróci do spoczynku.

- Wielokrotne testowanie tych samych larw może prowadzić do przyzwyczajenia lub sprzyjać osłabieniu mięśni w niektórych modelach chorobowych, co skutkuje zmniejszoną reakcją na bodziec dotykowy. Dlatego każdy zarodek powinien być badany tylko raz.

08:25

Pomiar siły podczas skurczu w celu oceny funkcji mięśni u larw danio pręgowanego

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

10:29

Ablacja populacji neuronów za pomocą lasera dwufotonowego i jej ocena za pomocą obrazowania wapnia i rejestracji behawioralnej u larw danio pręgowanego

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

05:29

Behawioralne podejścia do badania wrodzonego stresu u danio pręgowanego

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:39

Test behawioralny do pomiaru reakcji danio pręgowanego na zmiany natężenia światła

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

02:20

Test odpowiedzi fotomotorycznej: metoda pomiaru reakcji behawioralnej larw danio pręgowanego na nagłą zmianę warunków oświetleniowych

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

03:04

Test unikania danio pręgowanego i thigmotaxsji: wysokoprzepustowa metoda badania zachowania larw w odpowiedzi na awersyjny bodziec wzrokowy

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

03:18

Test agresji: metoda badania agresywnego zachowania danio pręgowanego w odpowiedzi na lustro

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

02:52

Test lokomocji larw: wysokoprzepustowa metoda badania neurobehawioralnej toksyczności związku w larwach danio pręgowanego

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

00:04

Optogenetyka danio pręgowanego: aktywacja genetycznie zmodyfikowanego neuronu somatosensorycznego w celu zbadania reakcji behawioralnych larw

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

07:25

Optogenetyczna aktywacja neuronów somatosensorycznych danio pręgowanego za pomocą ChEF-tdTomato

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

Ostatnia aktualizacja: 1 sierpnia 2026