Warstwowy montaż agaru: przygotowanie żywych zarodków danio pręgowanego do długoterminowego obrazowania za pomocą odwróconego mikroskopu

0 wyświetleń3:27 min • April 30th, 2023

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

- Zacznij od szalki Petriego zawierającej zarodki w pożywce E3. Dodaj trikainę w celu znieczulenia zarodków i fenylotioryn, roztwór PTU, aby zahamować tworzenie się pigmentu. Za pomocą mikroskopu preparacyjnego usuń zarodki.

Za pomocą szklanej pipety przenieś jeden z odkorówkowych zarodków na małą szalkę Petriego z płytkim szklanym dnem pośrodku i usuń nadmiar pożywki. Następnie umieść roztwór agarozy o optymalnym stężeniu, aby zminimalizować zniekształcenia i ruchliwość zarodków, w probówce do mikrofuzy i podgrzej go. Obniż temperaturę do 30 stopni Celsjusza, aby uniknąć uszkodzenia zarodka z powodu ciepła.

Wlej pierwszą warstwę agarozy na zarodek, całkowicie wypełniając płytką studnię. Umieść kolejną szklankę nakrywkową nad studzienką i dodaj do niej 1% agarozy. Druga warstwa utrzymuje szkło nakrywkowe na miejscu.

Gdy agaroza zastygnie, napełnij szalkę Petriego pożywką E3 zawierającą trikainę. Jest to trzecia warstwa, która utrzymuje nawodnienie agarozy i zarodka. W poniższym protokole wykonamy warstwowe mocowanie zarodków danio pręgowanego w celu wydłużenia czasu obrazowania poklatkowego.

- Tuż przed montażem podgrzej roztwór agarozy do 65 stopni Celsjusza, a następnie pozwól mu ostygnąć do około 30 stopni Celsjusza, aby zarodek nie został uszkodzony przez ciepło i dodaj trikainę do roztworu agarozy. Używaj naczyń ze szklanym dnem o grubości 35 milimetrów ze szklanym dnem pokrytym numerem zero. Delikatnie umieść zdekorionowany zarodek jedną z jego bocznych stron w kierunku dna naczynia za pomocą szklanej pipety lub mikropipety. Następnie ostrożnie usuń pozostały E3 za pomocą mikropipety.

Dodaj pierwszy roztwór agarozy do małego dołka utworzonego przez szklankę nakrywkową przymocowaną do dna naczynia, aby przykryć zarodek, upewniając się, że agaroza przykrywa małą studzienkę, ale jej nie przelewa. Przykryj małą studzienkę szkłem nakrywkowym, aby stworzyć wąską przestrzeń wypełnioną agarozą z zarodkiem między dwoma szkłami nakrywkowymi. Umieść warstwę 1% roztworu agarozy na wierzchu szkła nakrywkowego na całym dnie naczynia, co utrzyma szkło nakrywkowe na miejscu podczas krzepnięcia. Następnie napełnij pozostałą część naczynia E3 zawierającym 0,02% trikainy, aby utrzymać nawodnienie systemu. Aby określić optymalne stężenie agarozy dla warstwy pierwszej, umieść zarodki w rosnących stężeniach agarozy i wykonaj obrazowanie poklatkowe, aby określić stężenie, które minimalizuje zniekształcenia i ruchliwość zarodka, a następnie przetestuj dokładniejszy zakres stężeń w oparciu o wyniki.

- Najważniejszym krokiem tego protokołu jest określenie optymalnego stężenia agarozy dla warstwy pierwszej. Przetestuj różne nanostężenia agarozy, takie jak 0,030%, 0,032% i tak dalej, aby znaleźć optymalne stężenie.

21:01

Generowanie chimerycznych zarodków danio pręgowanego przez przeszczep

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

10:06

Hybrydyzacja in situ w pełnej rozdzielczości w zarodkach danio pręgowanego w celu zbadania ekspresji i funkcji genów

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

13:01

Wykorzystanie mikroskopii fluorescencyjnej arkuszy świetlnych do obrazowania rozwoju oka danio pręgowanego

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

07:11

Obrazowanie na żywo embrionalnego mózgu rybki zebrafish przy użyciu mikroskopii konfokalnej

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

04:28

Przygotowanie próbki do mikroskopii świetlnej: montaż żywych zarodków danio pręgowanego do długoterminowego obrazowania

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

03:34

Montaż agarowy: podstawowa metoda montowania żywych zarodków danio pręgowanego do długotrwałego obrazowania

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

07:28

Wielowarstwowe mocowanie do długotrwałej mikroskopii świetlnej danio pręgowanego

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

11:19

Obrazowanie struktur subkomórkowych w żywym zarodku danio pręgowanego

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

10:10

Obserwacja podziału i dynamiki mitotycznej w żywym zarodku danio pręgowanego

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

06:55

Uniwersalna metoda montażu do długoterminowego obrazowania rozwoju danio pręgowanego

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

Ostatnia aktualizacja: 15 sierpnia 2026