-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

PL

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools

Language

pl_PL

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Encyclopedia of Experiments
Biology
Aksotomia lasera dwufotonowego: metoda uszkadzania aksonów w zarodkach danio pręgowanego i obserw...
Aksotomia lasera dwufotonowego: metoda uszkadzania aksonów w zarodkach danio pręgowanego i obserw...
Encyclopedia of Experiments
Biology
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
Encyclopedia of Experiments Biology
Two-Photon Laser Axotomy: A Method to Injure Axons in Zebrafish Embryos and Observe Axonal Recovery

Aksotomia lasera dwufotonowego: metoda uszkadzania aksonów w zarodkach danio pręgowanego i obserwowania regeneracji aksonów

Protocol
2,403 Views
03:24 min
April 30, 2023
AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Transcript

- Umieść interesujące nas zarodki w fenylotiomoczniku, PTU, roztworze Ringera, aby zahamować tworzenie pigmentu, które rozpoczyna się po 24 godzinach od zapłodnienia. Dzięki temu rozwijająca się anatomia jest bardziej widoczna, co jest niezbędne do tego zabiegu. Przenieść znieczulony zarodek trikainą do komory obrazowania. Umieść szklane szkiełko na górze i view to pod mikroskopem. Skoncentruj się na aksonie, który ma zostać uszkodzony, który jest widoczny pod laserem o długości 488 nanometrów, ponieważ transgenetycznie wyraża GFP.

Zrób zdjęcie witryny przed zdjęciem. Następnie obejrzyj akson za pomocą lasera o długości 910 nanometrów, który powoduje fluoryzację GFP na czerwono. Zwiększ intensywność tego lasera, aby uszkodzić obszar docelowy bez wpływu na otaczającą tkankę. Ten proces nazywa się aksotomią. Zrób nowe zdjęcie za pomocą pierwszego lasera, aby potwierdzić aksotomię, która wygląda jak rozrzucone szczątki. W poniższym protokole wykonamy aksotomię obwodowych aksonów czuciowych w zarodkach danio pręgowanego za pomocą lasera dwufotonowego.

- Jeśli specjalnie skonstruowany teleskop dwufotonowy nie jest dostępny w Twoim laboratorium, konfokalny mikroskop dwufotonowy Zeiss 510 może być również użyty do przecinania aksonów. Zaczynamy od umieszczenia zamontowanego zarodka na stoliku i ustawienia ostrości za pomocą obiektywu wodnego o powiększeniu 25x. Następnie włącz dwa lasery fotonowe i argonowe w ustawieniu wielościeżkowym, aby możliwe było przełączanie z jednego na drugi.

Chociaż oba lasery są używane do wykrywania GFP, emisja dwóch fotonów jest wizualizowana na czerwono, a emisja lasera argonowego na zielono w celu rozróżnienia tych dwóch. Użyj lasera argonowego, aby zidentyfikować akson, który ma zostać zraniony. W obszarze Ustawienia Z zaznacz pierwszą i ostatnią sekcję optyczną, wykonaj obraz konfokalny i utwórz maksymalną projekcję stosu Z.

Wyłącz laser argonowy i włącz laser dwufotonowy. Skanuj z intensywnością transmisji około 9%, aby upewnić się, że akson jest nadal ostry. Kliknij przycisk Zatrzymaj, aby narzędzie Kadrowanie było dostępne. Użyj opcji Przytnij, aby powiększyć obszar zainteresowania. Zazwyczaj powiększamy do około 70x. Wybierz obszar aksonu, który ma zostać zraniony i ustaw ostrość na tym obszarze. Powiększenie można sprawdzić w zakładce Tryb.

Następnie w zakładce Kanały zmień intensywność transmisji dwóch fotonów z około 9% na 15% do 30% transmisji. Aby aktywować nowe ustawienia, kliknij przycisk Fast XY, a następnie kliknij Zatrzymaj szybko, aby uniknąć nadmiernych uszkodzeń. Akson powinien być postrzegany jako rozrzucone szczątki, jeśli procedura zadziałała. Na koniec, aby upewnić się, że akson rzeczywiście został uszkodzony, przełącz się z powrotem na laser argonowy o długości 488 nanometrów. Weź kolejny obraz konfokalny i utwórz maksymalną projekcję stosów Z.

Related Videos

Przygotowanie do obserwacji i analizy próbek zarodków danio pręgowanego wybarwionych metodą hybrydyzacji in situ metodą całego wierzchowca

06:36

Przygotowanie do obserwacji i analizy próbek zarodków danio pręgowanego wybarwionych metodą hybrydyzacji in situ metodą całego wierzchowca

Related Videos

24.8K Views

Obrazowanie struktur subkomórkowych w żywym zarodku danio pręgowanego

11:19

Obrazowanie struktur subkomórkowych w żywym zarodku danio pręgowanego

Related Videos

12K Views

Ocena morfologiczna i funkcjonalna aksonów i ich synaps podczas śmierci aksonów u Drosophila melanogaster

10:29

Ocena morfologiczna i funkcjonalna aksonów i ich synaps podczas śmierci aksonów u Drosophila melanogaster

Related Videos

8.2K Views

Aksotomia dwufotonowa i poklatkowe obrazowanie konfokalne w żywych zarodkach danio pręgowanego

12:21

Aksotomia dwufotonowa i poklatkowe obrazowanie konfokalne w żywych zarodkach danio pręgowanego

Related Videos

14.4K Views

Laserowe uszkodzenie embrionalnych mięśni szkieletowych danio pręgowanego

07:13

Laserowe uszkodzenie embrionalnych mięśni szkieletowych danio pręgowanego

Related Videos

10.7K Views

Uszkodzenie neuronów wywołane laserem dwufotonowym: metoda obserwacji zwyrodnienia i regeneracji aksonów u larw Drosophila

04:49

Uszkodzenie neuronów wywołane laserem dwufotonowym: metoda obserwacji zwyrodnienia i regeneracji aksonów u larw Drosophila

Related Videos

2.5K Views

Monitorowanie odzyskiwania komórek międzynerwowych ablowanych laserowo u danio pręgowanego za pomocą mikroskopii konfokalnej

02:39

Monitorowanie odzyskiwania komórek międzynerwowych ablowanych laserowo u danio pręgowanego za pomocą mikroskopii konfokalnej

Related Videos

241 Views

Selektywna ablacja laserowa pojedynczego neuronu u larwy danio pręgowanego przy użyciu mikroskopu konfokalnego

05:13

Selektywna ablacja laserowa pojedynczego neuronu u larwy danio pręgowanego przy użyciu mikroskopu konfokalnego

Related Videos

310 Views

Celowana ablacja neuronów przy użyciu mikroskopii dwufotonowej u danio pręgowanego Larava

04:42

Celowana ablacja neuronów przy użyciu mikroskopii dwufotonowej u danio pręgowanego Larava

Related Videos

290 Views

Przekrój nerwu ruchowego i obrazowanie poklatkowe zachowań komórek glejowych u żywych danio pręgowanego

09:05

Przekrój nerwu ruchowego i obrazowanie poklatkowe zachowań komórek glejowych u żywych danio pręgowanego

Related Videos

12.2K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code