Aksotomia lasera dwufotonowego: metoda uszkadzania aksonów w zarodkach danio pręgowanego i obserwowania regeneracji aksonów

0 wyświetleń3:24 min • April 30th, 2023

- Umieść interesujące nas zarodki w fenylotiomoczniku, PTU, roztworze Ringera, aby zahamować tworzenie pigmentu, które rozpoczyna się po 24 godzinach od zapłodnienia. Dzięki temu rozwijająca się anatomia jest bardziej widoczna, co jest niezbędne do tego zabiegu. Przenieść znieczulony zarodek trikainą do komory obrazowania. Umieść szklane szkiełko na górze i view to pod mikroskopem. Skoncentruj się na aksonie, który ma zostać uszkodzony, który jest widoczny pod laserem o długości 488 nanometrów, ponieważ transgenetycznie wyraża GFP.

Zrób zdjęcie witryny przed zdjęciem. Następnie obejrzyj akson za pomocą lasera o długości 910 nanometrów, który powoduje fluoryzację GFP na czerwono. Zwiększ intensywność tego lasera, aby uszkodzić obszar docelowy bez wpływu na otaczającą tkankę. Ten proces nazywa się aksotomią. Zrób nowe zdjęcie za pomocą pierwszego lasera, aby potwierdzić aksotomię, która wygląda jak rozrzucone szczątki. W poniższym protokole wykonamy aksotomię obwodowych aksonów czuciowych w zarodkach danio pręgowanego za pomocą lasera dwufotonowego.

- Jeśli specjalnie skonstruowany teleskop dwufotonowy nie jest dostępny w Twoim laboratorium, konfokalny mikroskop dwufotonowy Zeiss 510 może być również użyty do przecinania aksonów. Zaczynamy od umieszczenia zamontowanego zarodka na stoliku i ustawienia ostrości za pomocą obiektywu wodnego o powiększeniu 25x. Następnie włącz dwa lasery fotonowe i argonowe w ustawieniu wielościeżkowym, aby możliwe było przełączanie z jednego na drugi.

Chociaż oba lasery są używane do wykrywania GFP, emisja dwóch fotonów jest wizualizowana na czerwono, a emisja lasera argonowego na zielono w celu rozróżnienia tych dwóch. Użyj lasera argonowego, aby zidentyfikować akson, który ma zostać zraniony. W obszarze Ustawienia Z zaznacz pierwszą i ostatnią sekcję optyczną, wykonaj obraz konfokalny i utwórz maksymalną projekcję stosu Z.

Wyłącz laser argonowy i włącz laser dwufotonowy. Skanuj z intensywnością transmisji około 9%, aby upewnić się, że akson jest nadal ostry. Kliknij przycisk Zatrzymaj, aby narzędzie Kadrowanie było dostępne. Użyj opcji Przytnij, aby powiększyć obszar zainteresowania. Zazwyczaj powiększamy do około 70x. Wybierz obszar aksonu, który ma zostać zraniony i ustaw ostrość na tym obszarze. Powiększenie można sprawdzić w zakładce Tryb.

Następnie w zakładce Kanały zmień intensywność transmisji dwóch fotonów z około 9% na 15% do 30% transmisji. Aby aktywować nowe ustawienia, kliknij przycisk Fast XY, a następnie kliknij Zatrzymaj szybko, aby uniknąć nadmiernych uszkodzeń. Akson powinien być postrzegany jako rozrzucone szczątki, jeśli procedura zadziałała. Na koniec, aby upewnić się, że akson rzeczywiście został uszkodzony, przełącz się z powrotem na laser argonowy o długości 488 nanometrów. Weź kolejny obraz konfokalny i utwórz maksymalną projekcję stosów Z.

06:36

Przygotowanie do obserwacji i analizy próbek zarodków danio pręgowanego wybarwionych metodą hybrydyzacji in situ metodą całego wierzchowca

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

11:19

Obrazowanie struktur subkomórkowych w żywym zarodku danio pręgowanego

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

10:29

Ocena morfologiczna i funkcjonalna aksonów i ich synaps podczas śmierci aksonów u Drosophila melanogaster

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

12:21

Dwufotonowa aksotomia i konfokalne obrazowanie time-lapse w żywych embrionach danio pręgowanego

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

07:13

Laserowe uszkodzenie szkieletowej muskulatury embrionów danio-ostrolepnego

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

04:49

Uszkodzenie neuronów wywołane laserem dwufotonowym: metoda obserwacji zwyrodnienia i regeneracji aksonów u larw Drosophila

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

02:39

Monitorowanie odzyskiwania komórek międzynerwowych ablowanych laserowo u danio pręgowanego za pomocą mikroskopii konfokalnej

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

05:13

Selektywna ablacja laserowa pojedynczego neuronu u larwy danio pręgowanego przy użyciu mikroskopu konfokalnego

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

04:42

Celowana ablacja neuronów przy użyciu mikroskopii dwufotonowej u danio pręgowanego Larava

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:05

Przekrój nerwu ruchowego i obrazowanie poklatkowe zachowań komórek glejowych u żywych danio pręgowanego

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

Ostatnia aktualizacja: 22 sierpnia 2026