$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Pojedyncza komórka macierzysta raka piersi daje początek skupisku komórek zwanemu pierwotną mammosferą. Aby je uzyskać, należy najpierw wyhodować linię komórkową raka piersi do momentu, aż 70% do 80% zlewa się, aby upewnić się, że komórki są w fazie wzrostu. Dodaj Tripsin-EDTA, aby odłączyć komórki od kolby i dodaj pożywkę z surowicą, aby zatrzymać działanie Tripsin.
Teraz weź komórki do probówki i odwiruj, aby uzyskać osad komórkowy. Zawiesić osad w pożywce mammosfery bez surowicy i przepuścić zawiesinę przez filtr nasadkowy z filtrem siatkowym, aby uzyskać zawiesinę jednokomórkową. Zawiesina ta składa się z komórek macierzystych, komórek progenitorowych i komórek zróżnicowanych wykazujących różne ekspresje białek.
CD44 i CD24 są białkami powierzchniowymi komórek charakterystycznymi dla komórek macierzystych raka piersi. Są dodatnie dla ekspresji CD44 i ujemne dla CD24. Odizolować komórki od zawiesiny komórkowej za pomocą sortowania komórek fluorescencyjnego lub aktywowanego magnetycznie. Następnie weź podwielokrotność i dodaj niebieskie zabarwienie trypana do komórek i oblicz liczbę żywotnych komórek na mililitr za pomocą szkiełka hemocytometru, aby znaleźć gęstość wysiewu.
Na koniec umieść komórki w sześciodołkowej płytce o bardzo niskiej przyczepności, tak aby komórki pozostały zawieszone. Inkubuj płytkę przez 5 do 10 dni, nie naruszając płytki, aż kulki osiągną średnicę 40 mikronów. W poniższym protokole wygenerujemy pierwotne mammosfery z linii komórkowej raka piersi.
- Pracując pod sterylnym kapturem hodowlanym, rozpocznij tę procedurę od komórek MCF7 lub MDA-MB-231, które zlewają się w 70% do 80%. Odessać pożywkę z kolby. Umyj komórki dwukrotnie PBS, a następnie dodaj Tripsin-EDTA i inkubuj przez dwie do sześciu minut. Po oderwaniu ugasić dodając pożywkę mammosfery zawierającą 10% FBS.
Po odłączeniu komórek przenieś je do stożkowej probówki wirówkowej o pojemności 15 mililitrów i wiruj ją 200 razy g w temperaturze pokojowej przez pięć minut. Po tym odwirowaniu zdekantować supernatant, a następnie ponownie zawiesić komórki w jednym do pięciu mililitrów pożywki mammosfery. Pipetuj w górę i w dół 10 razy, aby rozbić osad komórkowy.
Następnie przenieś zawiesinę komórek do 40-mikronowego filtra nasadkowego i zbierz przepływ w dołączonej rurce, aby uzyskać zawiesinę pojedynczej komórki. Pobrać pipetę o objętości 20 mikrolitrów zawieszonych komórek na hemocytometr i użyć mikroskopu do jej zbadania. Jeśli zaobserwuje się skupiska komórek, jak pokazano tutaj, użyj strzykawki, aby wprowadzić i wyjąć zawiesinę z igły o rozmiarze 25 raz lub dwa razy.
Po rozproszeniu komórek w zawiesinie pojedynczej komórki, jak pokazano tutaj, przystąp do izolowania podzbiorów komórkowych CD44 dodatnich, CD24 ujemnych poprzez sortowanie komórek aktywowane fluorescencją lub sortowanie komórek aktywowanych magnetycznie za pomocą kolumny LS, aby pozytywnie wybrać komórki CD44-dodatnie. Ponieważ pożądane komórki przyczepiają się do ścianek kolumny LS, odrzuć przepływ, a następnie usuń komórki z kolumny, nałóż pięć mililitrów buforu i nałóż i wciśnij tłok dostarczony z kolumną, aby wypłukać pożądane komórki.
Następnie użyj kolumny LD, aby jeszcze bardziej oczyścić populację przez selekcję negatywną. W tym przypadku dodatnie komórki CD24 przyłączają się do kolumn LD. Zbierz przepływ, który zawiera komórki ujemne CD24. Następnie, za pomocą cytometrii przepływowej, potwierdź fenotypy wszystkich izolowanych komórek. Korzystając z metody wykluczania błękitu trypanowego, oblicz gęstość żywotnych komórek.
Po odpowiednim rozcieńczeniu zawiesiny komórek, wysiew każdą studzienkę z sześciodołkowej płytki o bardzo niskim przyłączeniu z 500 do 4000 komórek na centymetr kwadratowy w 2 mililitrach kompletnej pożywki mammosfery. Inkubuj płytki, uważając, aby ich nie naruszyć przez 5 do 10 dni, aż do zaobserwowania kulek. Kontynuuj hodowlę, aż kulki osiągną średnicę co najmniej 40 mikronów, ale jeszcze nie zaczęły przechodzić w apoptozę.