Trójwymiarowa hodowla komórek raka płuc: metoda badania interakcji komórka-macierz

0 wyświetleń4:45 min • April 30th, 2023

- Najpierw rozmrozić fiolki z matrycą błony podstawnej w temperaturze 4 stopni Celsjusza przez noc. Macierz błony podstawnej składa się z białek obecnych w mikrośrodowisku guza, które pomagają zachować cechy komórek rakowych in vitro. Następnego dnia umieścić fiolkę z matrycą błony podstawnej na lodzie, aby utrzymać matrycę w stanie ciekłym. Umieść komórki raka płuc we wstępnie schłodzonej probówce wirówkowej i odwiruj w temperaturze 4 stopni Celsjusza. Zassać supernatant i delikatnie postukać, aby usunąć osad i umieścić go na lodzie. Następnie dodaj odpowiednią objętość mieszanki błony podstawnej do tej probówki i wymieszaj, aby uzyskać jednolitą zawiesinę komórkową. Wykonaj wszystkie czynności w niskiej temperaturze, aby zapobiec żelowaniu błony podstawnej.

Przenieść odpowiednią objętość zawiesiny matrycy komórkowej do środka każdej studzienki we wstępnie schłodzonej płycie studzienki, pokrywającej całą studzienkę. Inkubować płytkę dołka, aby matryca zastygła. Zbadaj pod mikroskopem, aby zapewnić równomierne rozmieszczenie komórek w macierzy. Dodaj kompletną pożywkę do kultur 3D do każdej studzienki i inkubuj w temperaturze 37 stopni Celsjusza. To podłoże ułatwia interakcje z macierzą komórkową. W ten sposób komórki tworzą organoidy o strukturach podobnych do workowatych. W poniższym protokole przeprowadzimy hodowlę 3D komórek raka płuc TUM622.

Na początek rozmrozić fiolki z matrycą błony podstawnej w lodówce o temperaturze 4 stopni Celsjusza przez noc. Schłodzić dwie mililitrowe plastikowe pipety i końcówki w temperaturze minus 20 stopni Celsjusza przez noc. Następnego dnia podgrzej odczynniki używane do dysocjacji komórek TUM622, buforu HEPES, trypsyny-EDTA i buforu neutralizacji trypsyny w łaźni wodnej o temperaturze 37 stopni Celsjusza. Wyjmij rozmrożoną matrycę błony podstawnej z lodówki i umieść fiolkę na lodzie. Schłodzić płytki do hodowli tkankowych na metalowej chłodziarce platformowej umieszczonej na lodzie. Umieść probówki wirówkowe na metalowym stojaku chłodzącym na lodzie. Oblicz ilość komórek potrzebnych do przygotowania na podstawie liczby dołków i stężenia komórek w każdym dołku. Przenieś zawiesinę komórek TUM622 do schłodzonej probówki wirówkowej i wiruj z prędkością 300 g w wiszącej wirówce kubełkowej w temperaturze 4 stopni Celsjusza przez pięć minut.

Za pomocą pipety zasysającej przymocowanej do niefiltrowanej końcówki, ostrożnie odessać supernatant, pozostawiając około 100 mikrolitrów pożywki w probówce. Delikatnie postukaj w bok tuby, aby usunąć i skojarzyć granulkę, a następnie włóż ją z powrotem do stojaka chłodzącego. Używając dwóch mililitrowych, wstępnie schłodzonych pipet, delikatnie wymieszaj matrycę z lodem, pipetując kilka razy w górę i w dół. Pipetować z równą i umiarkowaną prędkością, aby podczas tej procedury do matrycy nie zostały wprowadzone pęcherzyki.

Przenieś 1,1 mililitra matrycy do każdej probówki wirówkowej. Używając wstępnie schłodzonych końcówek, odpipetuj matrycę w każdej probówce w górę i w dół około 10 razy, aby uzyskać jednolitą zawiesinę komórek. Przenieść 310 mikrolitrów zawiesiny matrycy komórkowej do każdego dołka wstępnie schłodzonej 24-dołkowej płytki. Umieść pipetę pod kątem 90 stopni do powierzchni płytki i dodaj zawiesinę do środka studzienki. Zawiesina rozprzestrzenia się i zakrywa całą studnię. Aby ułatwić dalszą analizę immunofluorescencyjną, przenieś 60 mikrolitrów zawiesiny macierzy komórkowej do środka studzienki szkiełka z 2 dołkami. Dzięki temu matryca może tworzyć strukturę przypominającą kopułę o znacznie mniejszej objętości.

Włożyć płytkę i komorę z powrotem do inkubatora do hodowli tkankowych i inkubować przez 30 minut, aby umożliwić zestalenie się matrycy. Następnie zbadaj płytkę i wsuń pod mikroskop świetlny, aby upewnić się, że pojedyncze komórki są równomiernie rozmieszczone w matrycy. Dodaj 1 mililitr wstępnie podgrzanej pożywki 3D do każdego dołka płytki i 1,5 mililitra pożywki hodowlanej 3D do każdej studzienki szkiełka komory. Następnie włóż je z powrotem do inkubatora.

08:39

Trójwymiarowy model kokultury dla interakcji guz-zręb

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

13:34

Połączony model tkankowy 3D guza płuca wykonany in vitro/in silico do przewidywania skuteczności leków w określonych tłach mutacyjnych

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

08:31

Bezkomórkowy i komórkowy model płuc do badania przerzutów nowotworowych

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

04:34

Test błony podstawnej hodowli 3D: hodowla komórek rakowych na matrycy białkowej błony podstawnej 3D w celu zbadania inwazji komórek

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

03:36

Kokultura 3D komórek raka płuc z CAF: system modelowy in vitro do badania progresji guza

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

11:09

Odkrywanie organizacji cytoszkieletu inwazyjnych komórek nowotworowych w 3D

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

08:33

Hodowle trójwymiarowe: narzędzie do badania normalnej architektury zrazikowej a złośliwej transformacji komórek piersi

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

05:48

Inżynieria tkankowa mikrośrodowiska zrębu guza z zastosowaniem do inwazji komórek rakowych

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

08:08

Kwantyfikacja inwazyjności komórek raka piersi za pomocą modelu trójwymiarowego (3D)

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:23

Trójwymiarowy test hodowli w celu zbadania inwazyjności komórek rakowych i tworzenia guzów satelitarnych

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

Ostatnia aktualizacja: 29 sierpnia 2026