JoVE Encyclopedia of Experiments
Badania nad rakiem
0 wyświetleń • 4:45 min • April 30th, 2023
- Najpierw rozmrozić fiolki z matrycą błony podstawnej w temperaturze 4 stopni Celsjusza przez noc. Macierz błony podstawnej składa się z białek obecnych w mikrośrodowisku guza, które pomagają zachować cechy komórek rakowych in vitro. Następnego dnia umieścić fiolkę z matrycą błony podstawnej na lodzie, aby utrzymać matrycę w stanie ciekłym. Umieść komórki raka płuc we wstępnie schłodzonej probówce wirówkowej i odwiruj w temperaturze 4 stopni Celsjusza. Zassać supernatant i delikatnie postukać, aby usunąć osad i umieścić go na lodzie. Następnie dodaj odpowiednią objętość mieszanki błony podstawnej do tej probówki i wymieszaj, aby uzyskać jednolitą zawiesinę komórkową. Wykonaj wszystkie czynności w niskiej temperaturze, aby zapobiec żelowaniu błony podstawnej.
Przenieść odpowiednią objętość zawiesiny matrycy komórkowej do środka każdej studzienki we wstępnie schłodzonej płycie studzienki, pokrywającej całą studzienkę. Inkubować płytkę dołka, aby matryca zastygła. Zbadaj pod mikroskopem, aby zapewnić równomierne rozmieszczenie komórek w macierzy. Dodaj kompletną pożywkę do kultur 3D do każdej studzienki i inkubuj w temperaturze 37 stopni Celsjusza. To podłoże ułatwia interakcje z macierzą komórkową. W ten sposób komórki tworzą organoidy o strukturach podobnych do workowatych. W poniższym protokole przeprowadzimy hodowlę 3D komórek raka płuc TUM622.
Na początek rozmrozić fiolki z matrycą błony podstawnej w lodówce o temperaturze 4 stopni Celsjusza przez noc. Schłodzić dwie mililitrowe plastikowe pipety i końcówki w temperaturze minus 20 stopni Celsjusza przez noc. Następnego dnia podgrzej odczynniki używane do dysocjacji komórek TUM622, buforu HEPES, trypsyny-EDTA i buforu neutralizacji trypsyny w łaźni wodnej o temperaturze 37 stopni Celsjusza. Wyjmij rozmrożoną matrycę błony podstawnej z lodówki i umieść fiolkę na lodzie. Schłodzić płytki do hodowli tkankowych na metalowej chłodziarce platformowej umieszczonej na lodzie. Umieść probówki wirówkowe na metalowym stojaku chłodzącym na lodzie. Oblicz ilość komórek potrzebnych do przygotowania na podstawie liczby dołków i stężenia komórek w każdym dołku. Przenieś zawiesinę komórek TUM622 do schłodzonej probówki wirówkowej i wiruj z prędkością 300 g w wiszącej wirówce kubełkowej w temperaturze 4 stopni Celsjusza przez pięć minut.
Za pomocą pipety zasysającej przymocowanej do niefiltrowanej końcówki, ostrożnie odessać supernatant, pozostawiając około 100 mikrolitrów pożywki w probówce. Delikatnie postukaj w bok tuby, aby usunąć i skojarzyć granulkę, a następnie włóż ją z powrotem do stojaka chłodzącego. Używając dwóch mililitrowych, wstępnie schłodzonych pipet, delikatnie wymieszaj matrycę z lodem, pipetując kilka razy w górę i w dół. Pipetować z równą i umiarkowaną prędkością, aby podczas tej procedury do matrycy nie zostały wprowadzone pęcherzyki.
Przenieś 1,1 mililitra matrycy do każdej probówki wirówkowej. Używając wstępnie schłodzonych końcówek, odpipetuj matrycę w każdej probówce w górę i w dół około 10 razy, aby uzyskać jednolitą zawiesinę komórek. Przenieść 310 mikrolitrów zawiesiny matrycy komórkowej do każdego dołka wstępnie schłodzonej 24-dołkowej płytki. Umieść pipetę pod kątem 90 stopni do powierzchni płytki i dodaj zawiesinę do środka studzienki. Zawiesina rozprzestrzenia się i zakrywa całą studnię. Aby ułatwić dalszą analizę immunofluorescencyjną, przenieś 60 mikrolitrów zawiesiny macierzy komórkowej do środka studzienki szkiełka z 2 dołkami. Dzięki temu matryca może tworzyć strukturę przypominającą kopułę o znacznie mniejszej objętości.
Włożyć płytkę i komorę z powrotem do inkubatora do hodowli tkankowych i inkubować przez 30 minut, aby umożliwić zestalenie się matrycy. Następnie zbadaj płytkę i wsuń pod mikroskop świetlny, aby upewnić się, że pojedyncze komórki są równomiernie rozmieszczone w matrycy. Dodaj 1 mililitr wstępnie podgrzanej pożywki 3D do każdego dołka płytki i 1,5 mililitra pożywki hodowlanej 3D do każdej studzienki szkiełka komory. Następnie włóż je z powrotem do inkubatora.
Niniejszy artykuł przedstawia protokół trójwymiarowej (3D) hodowli komórek raka płuca TUM622 z wykorzystaniem macierzy błony podstawnej. Metoda ta kładzie nacisk na utrzymanie niskich temperatur podczas przygotowania, aby zapobiec żelowaniu macierzy.
Niniejszy protokół umożliwia powtarzalną hodowlę komórek raka płuca w 3D w celu modelowania oddziaływań między komórkami a macierzą, co wspiera walidację celów w procesie poszukiwania leków onkologicznych. Poprzez tworzenie struktur przypominających organoidy w macierzy błony podstawnej, metoda ta zwiększa wiarygodność prognostyczną modeli przedklinicznych dzięki lepszemu odzwierciedleniu mikrośrodowiska nowotworowego. Zapewnia ona skalowalny, zestandaryzowany system do mechanistycznego ograniczania ryzyka w odniesieniu do celów terapeutycznych w badaniach nad rakiem płuca.
Metoda ta wpisuje się w kontinuum od odkrywania do badań przedklinicznych, umożliwiając wczesną ocenę punktów uchwytowych oraz optymalizację związków wiodących dzięki poprawionej wierności biologicznej.
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Ostatnia aktualizacja: 29 sierpnia 2026