Obrazowanie dynamiki wapnia w komórkach trzustki: technika badania zmian w czasie rzeczywistym stężenia wapnia cytozolowego w wyspach trzustkowych

0 wyświetleń5:10 min • April 30th, 2023

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

- Wyspy trzustkowe to skupisko komórek trzustki wytwarzających hormony, które odgrywają kluczową rolę w utrzymaniu homeostazy glukozy. Podwyższone stężenie glukozy powoduje zamknięcie kanałów jonów potasu, zapobiegając odpływowi jonów potasu, co prowadzi do depolaryzacji błony. W konsekwencji otwierają się zależne od napięcia kanały jonów wapnia, które umożliwiają napływ jonów wapnia. To zwiększone stężenie wapnia cytozolowego stymuluje uwalnianie hormonów, takich jak insulina. W czasie rzeczywistym, aby zobrazować cytozolową dynamikę wapnia, przenieś kilka wysepek obciążonych odpowiednim barwnikiem wskaźnika wapnia między ściankami dystansowymi wstępnie zmontowanej drobnej siatki.

Umieść siatkę do góry nogami na szkiełku nakrywkowym umieszczonym w komorze obrazowania mikroskopu odwróconego. Umieść grubą siatkę i obciążnik, aby unieruchomić komórki. Dodaj roztwór do obrazowania do komory. Następnie skonfiguruj system perfuzyjny, aby wprowadzić glukozę lub hormon testowy, który Cię interesuje. W komórkach wstępnie załadowane fluorescencyjne wskaźniki wapnia zgłaszają wzrost stężenia wapnia w cytozolowym. Po związaniu się z jonami wapnia cząsteczki wskaźnikowe wykazują znaczny wzrost emisji fluorescencji. W poniższym protokole pokażemy obrazowanie w czasie rzeczywistym dynamiki wapnia w mysich wyspach trzustkowych w odpowiedzi na perfuzję glukozy.

- Aby unieruchomić wyspy trzustkowe do obrazowania, zmontuj komorę obrazowania dla mikroskopu odwróconego i umieść w komorze szklane szkiełko nakrywkowe. Upewnij się, że interfejs szklanej komory jest wodoszczelny i upewnij się, że szkiełko nakrywkowe znajduje się w zasięgu obiektywu mikroskopu. Następnie wytnij kwadraty o wymiarach 20 x 20 milimetrów o drobnych i grubych oczkach i użyj 45 do 50 mikrometrowych kawałków grubej taśmy klejącej, aby utworzyć dwie ścianki dystansowe na kawałku drobnej siatki. Zanurz grubą siatkę i odważnik w 35-milimetrowej szalce Petriego z roztworem do obrazowania i umieść drobną siatkę pod mikroskopem preparacyjnym.

Obróć drobną siatkę ze ściankami przekładki do góry nogami i przekładkami skierowanymi do góry i użyj pipety P20, aby przenieść kilka wysepek między dwoma przekładkami. Za pomocą kleszczy zegarmistrzowskich umieść siatkę do góry nogami w komorze obrazowania mikroskopu odwróconego, tak aby przekładki były skierowane w dół, aby przylegać bezpośrednio do szkiełka nakrywkowego komory, zatrzymując wysepki między przekładkami a siatką pośrodku szkiełka nakrywkowego.

- Należy zwrócić uwagę, aby siatka była dobrze nawodniona, ale nie zawierała nadmiernych objętości roztworu, które mogłyby spowodować ruch poprzeczny próbki.

- Następnie umieść grubą siatkę i ciężarek na wierzchu drobnej siatki w komorze i dodaj roztwór do obrazowania do komory. Po unieruchomieniu wysp trzustkowych wybierz tryb obrazowania i obiektyw w mikroskopie odwróconym, a następnie umieść komorę z wyspami na stoliku mikroskopu z kontrolowaną temperaturą. Po ustawieniu peryfuzji należy ustawić dopływ poniżej odpływu w komorze i ustawić strumień odpływu na większy niż strumień dopływu.

Upewnij się, że odpływ ma minimalny kontakt z roztworem, tak aby usuwał roztwór w wielu sekwencyjnych małych kropelkach długiego czasu ciągłego usuwania roztworu. Następnie rozpocznij peryfuzję roztworem do obrazowania zawierającym 3 milimolowe glukozy i wybierz ścieżkę światła oraz filtry do obrazowania zielonych fluoroforów. Następnie uruchom obrazowanie na żywo, aby skonfigurować parametry obrazowania i dostosować widok, aby uchwycić interesujące nas wysepki.

Aby zoptymalizować stosunek sygnału do szumu obrazu, dostosuj intensywność światła wzbudzenia, czas ekspozycji i bining, upewniając się, że ustawienia umożliwiają wyraźną wizualizację każdej komórki w wysepkach przy minimalnym możliwym natężeniu światła i ekspozycji. Następnie zobrazuj wysepki z częstotliwością od 0,1 do 5 Hz, sprawdzając jakość uzyskanych danych podczas ich przechwytywania.

09:05

Obrazowanie dynamiki Ca2+ w zakończeniach aksonów fotoreceptorów stożkowych siatkówki myszy

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

10:05

Pomiar wahań stężenia wapnia w siateczce sarkoplazmatycznej hodowanych komórek mięśni gładkich za pomocą obrazowania konfokalnego opartego na FRET

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

08:03

Obrazowanie wapnia in vivo w mięśniach ściany ciała C. elegans

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

10:39

Przygotowanie komórek groniastych trzustki do celów obrazowania wapnia, pomiarów uszkodzeń komórek i infekcji adenowirusowej

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:52

Ocena zdolności wydzielniczej komórek groniastych trzustki

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

08:50

Analiza funkcji komórek beta za pomocą obrazowania wapnia w rozdzielczości pojedynczej komórki na wysepkach danio pręgowanego

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

08:03

Obrazowanie dynamiki wapnia w subpopulacjach komórek wysp trzustkowych myszy

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

05:51

Obserwacja funkcji wysp trzustkowych i interakcji między wyspami trzustkowymi a komórkami układu odpornościowego w żywych wycinkach tkanki trzustkowej

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

10:49

Konfokalna laserowa mikroskopia skaningowa dynamiki wapnia w ostrych wycinkach tkanki trzustkowej myszy

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

06:52

Stabilizowana podłużna wizualizacja trzustki na poziomie komórkowym in vivo w modelu mysim z oknem obrazowania przyżyciowego trzustki

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

Ostatnia aktualizacja: 22 sierpnia 2026