Mysie modele spontanicznych przerzutów: platforma do badania potencjału przerzutowego komórek raka jelita grubego wstrzykiwanych ortotopowo

0 wyświetleń2:57 min • April 30th, 2023

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

- Zacznij od kultury białka zielonej fluorescencji lub GFP, wyrażającego organoidy raka jelita grubego. Zbierz organoidy. Potraktuj roztworem enzymu odłączającego komórki, aby zdysocjować organoidy w zawiesinę jednokomórkową. Odwirować w celu oddzielenia supernatantu zawierającego enzym. Usunąć supernatant. Zawiesić komórki raka jelita grubego wykazujące ekspresję GFP za pomocą sztucznej pożywki zawierającej macierz zewnątrzkomórkową. Załadować zawiesinę komórek do strzykawki i utrzymywać ją na lodzie, aby zapobiec zestaleniu się matrycy w temperaturze otoczenia.

Następnie przygotuj znieczuloną mysz w pozycji leżącej. Delikatnie wyciągnij warstwę śluzówkową odbytnicy przez otwór odbytu. Teraz wstrzyknij przygotowaną zawiesinę komórek rakowych wykazujących ekspresję GFP do warstwy podśluzówkowej odbytnicy zawierającej sieć naczyń krwionośnych. Pozwól myszy na odzyskanie sprawności.

W ciągu kilku dni w miejscu wstrzyknięcia rozwija się guz pierwotny wykazujący ekspresję GFP. W przypadku spontanicznych przerzutów te komórki nowotworowe odłączają się i wchodzą do krążenia. W końcu komórki wynanaczyniają się do odległych narządów i namnażają się, tworząc guzy przerzutowe GFP-dodatnie. W poniższym protokole pokażemy generowanie mysiego modelu raka jelita grubego z spontanicznymi przerzutami poprzez ortotopowe wstrzykiwanie komórek organoidów jelita grubego wykazujących ekspresję GFP.

- Aby ustalić mysi model spontanicznych przerzutów ksenoprzeszczepów nowotworowych pochodzących od pacjentów z CRC, należy rozdzielić organoidy znakowane GFP, jak pokazano, i rozcieńczyć zawiesiny pojedynczych komórek nowotworowych w proporcji 5 razy 10 do pięciu komórek nowotworowych na 50 mikrolitrów PBS, uzupełnionych 50% sztucznym stężeniem macierzy zewnątrzkomórkowej. Załaduj 50 mikrolitrów komórek na mysz do strzykawki wyposażonej w igłę o rozmiarze 22 i umieść komórki nowotworowe na lodzie.

Następnie potwierdź brak reakcji na uszczypnięcie palca u nogi i umieść pierwszą znieczuloną mysz NOG w pozycji leżącej na stole laboratoryjnym. Za pomocą sterylnej pęsety delikatnie wyciągnij błonę śluzową odbytnicy z odbytu i natychmiast wstrzyknij komórki nowotworowe do błony podśluzowej odbytnicy.

06:48

Ortotopowy mysi model przerzutów ludzkiego raka prostaty

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

11:27

Modelowanie spontanicznego przerzutowego raka nerkowokomórkowego (mRCC) u myszy po nefrektomii

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

08:11

Ortotopowy mysi model spontanicznych przerzutów raka piersi

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

08:43

Ortotopowy mysi model raka jelita grubego

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

08:06

Eksperymentalny model myszy z przerzutami i adoptywną immunoterapią transferową CTL

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

03:24

Ustalanie eksperymentalnego modelu mysiego przerzutów: wszczepianie komórek organoidowych CRC z ekspresją GFP w modelu PDX w celu wykrycia mikroprzerzutów

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

11:43

Zaawansowany zwierzęcy model przerzutów jelita grubego w wątrobie: techniki obrazowania i właściwości klonów z przerzutami

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

07:35

Model iniekcji żyły wrotnej do badania przerzutów raka piersi do wątroby

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

06:19

Izolacja krążących komórek nowotworowych w ortotopowym mysim modelu raka jelita grubego

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

08:54

Analiza patologiczna przerzutów do płuc po bocznym wstrzyknięciu komórek nowotworowych do żyły ogonowej

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

Ostatnia aktualizacja: 1 sierpnia 2026