Name: Mikrochirurgiczne tętniaki tętniczo-bifurkacyjne w worku żylnym w modelu królika: aspekty techniczne (Wideo) | JoVE Journal
Uploaded: 2011-05-11T13:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 34 s
Description: Poznaj zoptymalizowaną technikę mikrochirurgiczną tworzenia tętniaków tętniczo-bifurkacyjnych w worku żylnym u królików. Metoda ta zapewnia niską śmiertelność i wysoką drożność tętniaków, stanowiąc wiarygodny model do badania tętniaków mózgowych.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Badanie to zostało wsparte przez „Medical Scientific Fund of the Major of the City of Vienna” oraz Ethicon Biosurgery, Inc. New Jersey, USA. Autorzy wyrażają podziękowania profesorowi Heberowi Ferraz-Leite, dyrektorowi „European Workshop on Microsurgery and Cerebral Revascularization” na Uniwersytecie Medycznym w Wiedniu w Austrii, za jego cenne nauczanie w zakresie mikrochirurgii.

1. Pozycjonowanie i przygotowanie zwierzęcia
Eksperymenty zostały zatwierdzone przez właściwą lokalną komisję etyczną i przeprowadzone zgodnie z wytycznymi Felasa.
<ol>
	<li>Wprowadź znieczulenie ogólne samicy królika rasy New Zealand White (2,5-3,5 kg) poprzez domięśniowy zastrzyk z Ketaminy (30mg/kg) i Ksylazyny (6mg/kg), a następnie kontynuuj znieczulenie gazowe (izofluran) po intubacji mechanicznej (średnica rurki 4mm, długość 18mm) w trakcie monitorowania EKG. Co 15 minut przeprowadzaj kontrolę odczuwania bólu poprzez uciśnięcie palca u nogi i dostosuj głębokość znieczulenia w przypadku wystąpienia reakcji dodatniej.</li>
 <li>Ustabilizuj królika w pozycji grzbietnej na płycie grzewczej.</li>
 <li>Przygotuj pole operacyjne poprzez usunięcie sierści od kąta żuchwy w dół do środka klatki piersiowej. Wszystkie procedury wykonuj w warunkach sterylnych.</li>
</ol>
2. Przygotowanie zewnętrznej żyły szyjnej
<ol>
 <li>Wykonaj cięcie w linii pośrodkowej od kąta żuchwy w dół do manubrium sterni. </li>
 <li>Używając mikroskopu operacyjnego, wybierz odcinek lewej żyły szyjnej zewnętrznej o długości 1 cm, pozbawiony odgałęzień żylnych, i wyizoluj go mikrochirurgicznie (Rysunek 1a). Przez cały czas trwania operacji często aplikuj miejscowo na naczynia i anastomozy 4% roztwór HCl papaweryny oraz roztwór antybiotyku (siarczan neomycyny 5mg/ml), aby zapobiec skurczowi naczyń i miejscowym infekcjom.</li>
 <li>Podwiąż żyłę proksymalnie i dystalnie szwami wielonitkowymi 4-0 (Vicryl, Ethicon Inc, New Jersey, USA), a następnie wyresekuj ją i przechowuj w soli fizjologicznej z heparyną (1000 IU heparyny w 20 ml 0,9% soli fizjologicznej i 1 ml 4% HCl papaweryny). </li>
</ol>
3. Przygotowanie obu tętnic szyjnych wspólnych (CCA)
<ol>
	<li>Przygotować odcinek lewej tętnicy szyjnej wspólnej (CCA), rozciągający się od rozwidlenia tętnicy szyjnej w dół aż do łuku aorty. W miarę możliwości zachować odgałęzienia tętnicze biegnące przyśrodkowo i zaopatrujące struktury krtani oraz tchawicy, a także wszystkie struktury nerwowe. </li>
 <li>Przygotować prawą tętnicę szyjną wspólną (CCA). Mobilizować ją w górę do rozwidlenia tętnicy szyjnej oraz w dół do pnia ramienno-głowowego. </li>
 <li>Podać dożylnie 1000 IU heparyny. </li>
 <li>Zaciśnąć tymczasowo prawą tętnicę szyjną wspólną (CCA) tuż poniżej rozwidlenia tętnicy szyjnej. </li>
 <li>Podwiązać proksymalnie prawą tętnicę szyjną wspólną (CCA) bezpośrednio nad pniem ramienno-głowowym. Przeciąć prawą tętnicę szyjną wspólną (CCA) powyżej podwiązania i przemyć kikut solą fizjologiczną z heparyną. </li>
 <li>Ostrożnie naciąć i wyciąć osłonkę zewnętrzną (adwentycję) na wolnym końcu prawej tętnicy szyjnej wspólnej (CCA). Starannie oczyścić z osłonki zewnętrznej odcinek lewej tętnicy szyjnej wspólnej (CCA) planowany do anastomozy, a następnie zaciśnąć go dystalnie i proksymalnie. </li>
</ol>
4. Anastomoza obu tętnic szyjnych wspólnych (CCA)
<ol>
	<li> Wykonać eliptyczną arteriotomię lewej CCA pomiędzy klamrami, dostosowując jej wielkość do planowanej anastomozy z prawą CCA i workiem żylnym. Przepłukać lewą CCA solą fizjologiczną z heparyną. (Figure 1b)</li>
 	<li> Przyszyć tylny obwód kikuta prawej CCA do miejsca arteriotomii lewej CCA, używając od czterech do pięciu nierozpuszczalnych szwów monofilamentowych 10-0 (Ethilon 10-0, Ethicon Inc, New Jersey, USA). </li>
 <li> Wykonać cięcie podłużne w kikucie prawej CCA, aby dopasować go do połowy obwodu worka żylnego. W pierwszej kolejności anastomozować tylną ścianę worka żylnego z miejscem arteriotomii w lewej CCA, ponownie używając 4 do 5 szwów 10-0. Następnie anastomozować tylną stronę worka żylnego z tylną stroną prawej CCA za pomocą 3 do 4 szwów. (Figure 1c)</li>
 <li> Wykonać anastomozę w tej samej kolejności po stronie przedniej. (Figure 1d)</li>
 <li> Usunąć dystalną klamrę z prawej CCA. Tętniak zazwyczaj nie jest całkowicie szczelny, dlatego należy wypłukać uwięzione powietrze i zanieczyszczenia. </li>
 <li> Uszczelnić linie szwów wokół anastomozy i szyjki tętniaka za pomocą płata tłuszczowego i kleju fibrynowego (Evicel, Ethicon Biosurgery Inc., New Jersey, USA). Usunąć pozostałe klamry.</li>
 <li> Użyć rozpuszczalnych szwów 4-0 (Monocryl,Ethicon Inc, New Jersey, USA) do przerwanych szwów podskórnych, a następnie do ciągłego szwu skórnego.</li>
</ol>
5. Opieka pooperacyjna
<ol>
	<li>Podaj dożylnie kwas acetylosalicylowy w dawce 10 mg/kg oraz podskórnie 60 ml 5% glukozy.</li>
	<li>W celu zapewnienia skutecznej analgezji przez 72 godziny, naklej w ogolonym obszarze szyi zwierząt transdermalne plastry z macierzą fentanylu o szybkości uwalniania 12,5 μg/godzinę.</li>
	<li>Podawaj codziennie podskórnie heparynę drobnocząsteczkową w dawce 250 IU/kg przez 2 tygodnie.</li>
</ol>
6. Reprezentatywne wyniki: 
Jeśli procedura zostanie przeprowadzona prawidłowo, tętniak pozostanie drożny, a zwierzęta wyzdrowieją w ciągu około 3 dni. W naszym doświadczeniu procedury obrazowe powinny zostać wykonane minimum tydzień później. W przeciwnym razie zwierzęta mogą nie tolerować zabiegu, co może prowadzić do ich utraty. W przypadku embolizacji zalecamy odczekanie około 4 tygodni, aby zagwarantować całkowitą endotelializację szyjki tętniaka. Stosując przedstawione techniki i zasady opieki, autorzy osiągnęli drożność tętniaka na poziomie 85,7% oraz brak śmiertelności w swojej niedawno opublikowanej serii.14 Aby zminimalizować wysoką zgłaszaną częstość powikłań jelitowych, sięgającą 20%,12 zapewniliśmy przedłużone pooperacyjne leczenie przeciwbólowe trwające 72 godziny, w przeciwieństwie do rutynowej analgezji trwającej 24 godziny. Tak intensywna opieka doprowadziła do braku powikłań żołądkowych. Agresywne prowadzenie przeciwkrzepliwości jest istotne dla osiągnięcia wystarczającego poziomu drożności tętniaka. Jest to zgodne z wynikami Grunwalda et al., wykazującymi pozytywne efekty połączonego leczenia przeciwkrzepliwego.17 Ze względu na agresywną przeciwkrzepliwość kluczowe jest skuteczne uszczelnienie anastomozy. Mamy bardzo dobre doświadczenia w stosowaniu nowego kleju fibrynowego (Evicel, Ethicon Biosurgery Inc., New Jersey, USA). Ponadto zalecamy stosowanie małych królików (maksymalnie 3,5 kg), ponieważ w naszym doświadczeniu powikłania często wiążą się z nadwagą osobników.

<ol><li>Molyneux, A., Kerr, R., Yu, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((International+subarachnoid+aneurysm+trial+%28ISAT%29+of+neurosurgical+clipping+versus+endovascular+coiling+in+2143+patients+with+ruptured+intracranial+aneurysms%3A+a+randomised+comparison+of+effects+on+survival%2C+dependency%2C+seizures%2C+rebleeding%2C+subgroups%2C+and+aneurysm+occlusion%5BTitle%5D)+AND+%22Lancet%22%5BJournal%5D)">International subarachnoid aneurysm trial (ISAT) of neurosurgical clipping versus endovascular coiling in 2143 patients with ruptured intracranial aneurysms: a randomised comparison of effects on survival, dependency, seizures, rebleeding, subgroups, and aneurysm occlusion.</a> Lancet. 366, 809-817 (2005).</li>
<li>Mitchell, P., Kerr, R., Mendelow, A., Molyneux, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Could+late+rebleeding+overturn+the+superiority+of+cranial+aneurysm+coil+embolization+over+clip+ligation+seen+in+the+International+Subarachnoid+Aneurysm+Trial%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurosur%22%5BJournal%5D)">Could late rebleeding overturn the superiority of cranial aneurysm coil embolization over clip ligation seen in the International Subarachnoid Aneurysm Trial.</a> J Neurosur. 108, 437-442 (2008).</li>
<li>Bavinzski, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Histopathological+findings+in+experimental+aneurysms+embolized+with+conventional+and+thrombogenic%2Fantithrombolytic+Guglielmi+coils%5BTitle%5D)+AND+%22Minim+Invasive+Neurosurg%22%5BJournal%5D)">Histopathological findings in experimental aneurysms embolized with conventional and thrombogenic/antithrombolytic Guglielmi coils.</a> Minim Invasive Neurosurg. 42, 167-174 (1999).</li>
<li>Bocher-Schwarz, H. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Histological+findings+in+coil-packed+experimental+aneurysms+3+months+after+embolization%5BTitle%5D)+AND+%22Neurosurgery%22%5BJournal%5D)">Histological findings in coil-packed experimental aneurysms 3 months after embolization.</a> Neurosurgery. 50, 379-384 (2002).</li>
<li>Sherif, C., Plenk, H., Grossschmidt, K., Kanz, F., Bavinzski, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Computer-assisted+quantification+of+occlusion+and+coil+densities+on+angiographic+and+histological+images+of+experimental+aneurysms%5BTitle%5D)+AND+%22Neurosurgery%22%5BJournal%5D)">Computer-assisted quantification of occlusion and coil densities on angiographic and histological images of experimental aneurysms.</a> Neurosurgery. 58, 559-566 (2006).</li>
<li>Massoud, T., Guglielmi, G., Ji, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Experiemental+saccular+aneurysms.+1.+Review+of+surgically+constructed+models+and+their+laboratory+applications%5BTitle%5D)+AND+%22Neurorad%22%5BJournal%5D)">Experiemental saccular aneurysms. 1. Review of surgically constructed models and their laboratory applications.</a> Neurorad. 36, 537-546 (1994).</li>
<li>Anidjar, S., Salzmann, J., Gentric, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Elastase+induced+experimental+aneurysms+in+rats%5BTitle%5D)+AND+%22Circulation%22%5BJournal%5D)">Elastase induced experimental aneurysms in rats.</a> Circulation. 82, 973-981 (1990).</li>
<li>Wakhloo, A., Schellhammer, F., de Vries, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Self-expanding+and+balloon-expandable+stents+in+the+treatment+of+carotid+aneurysms%3A+an+experimental+study+in+a+canine+model%5BTitle%5D)+AND+%22AJNR%22%5BJournal%5D)">Self-expanding and balloon-expandable stents in the treatment of carotid aneurysms: an experimental study in a canine model.</a> AJNR. 15, 493-502 (1994).</li>
<li>Dai, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Histopathologic+and+immunohistochemical+comparison+of+human%2C+rabbit%2C+and+swine+aneurysms+embolized+with+platinum+coils%5BTitle%5D)+AND+%22AJNR+Am+J+Neuroradiol%22%5BJournal%5D)">Histopathologic and immunohistochemical comparison of human, rabbit, and swine aneurysms embolized with platinum coils.</a> AJNR Am J Neuroradiol. 26, 2560-2568 (2005).</li>
<li>Shin, Y. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Creation+of+four+experimental+aneurysms+with+different+hemodynamics+in+one+dog%5BTitle%5D)+AND+%22AJNR%22%5BJournal%5D)">Creation of four experimental aneurysms with different hemodynamics in one dog.</a> AJNR. 26, 1764-1767 (2005).</li>
<li>Abruzzo, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Histologic+and+morphologic+comparison+of+experimental+aneurysms+with+human+intracranial+aneurysms%5BTitle%5D)+AND+%22AJNR+Am+J+Neuroradiol%22%5BJournal%5D)">Histologic and morphologic comparison of experimental aneurysms with human intracranial aneurysms.</a> AJNR Am J Neuroradiol. 19, 1309-1314 (1998).</li>
<li>Bavinzski, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Experimental+bifurcation+aneurysm%3A+a+model+for+in+vivo+evaluation+of+endovascular+techniques%5BTitle%5D)+AND+%22Minim+Invasive+Neurosurg%22%5BJournal%5D)">Experimental bifurcation aneurysm: a model for in vivo evaluation of endovascular techniques.</a> Minim Invasive Neurosurg. 41, 129-132 (1998).</li>
<li>Spetzger, U. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Microsurgically+produced+bifurcation+aneurysms+in+a+rabbit+model+for+endovascular+coil+embolization%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurosurg%22%5BJournal%5D)">Microsurgically produced bifurcation aneurysms in a rabbit model for endovascular coil embolization.</a> J Neurosurg. 85, 488-495 (1996).</li>
<li>Sherif, C., Marbacher, S., Erhardt, S., Fandino, J., J, <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Improved+microsurgical+creation+of+venous-pouch+arterial-bifurcation+aneurysms+in+rabbits%5BTitle%5D)+AND+%22AJNR%22%5BJournal%5D)">Improved microsurgical creation of venous-pouch arterial-bifurcation aneurysms in rabbits.</a> AJNR. , Forthcoming Forthcoming.</li>
<li>Marbacher, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Complex+Bi-Lobular%2C+Bi-Saccular%2C+and+Broad-Necked+Microsurgical+Aneurysms+Formation+in+the+Rabbit+Bifurcation+Model+for+the+Study+of+Upcoming+Endovascular+Techniques%5BTitle%5D)+AND+%22AJNR%22%5BJournal%5D)">Complex Bi-Lobular, Bi-Saccular, and Broad-Necked Microsurgical Aneurysms Formation in the Rabbit Bifurcation Model for the Study of Upcoming Endovascular Techniques.</a> AJNR. , Forthcoming Forthcoming.</li>
<li>Sherif, C., Plenk, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Quantitative+angiographic+and+histopathologic+evaluation+of+experimental+aneurysms%5BTitle%5D)+AND+%22AJNR%22%5BJournal%5D)">Quantitative angiographic and histopathologic evaluation of experimental aneurysms.</a> AJNR. , Forthcoming Forthcoming.</li>
<li>Grunwald, I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Anticoagulation+regimes+and+their+influence+on+the+occlusion+rate+of+aneurysms%3A+an+experimental+study+in+rabbits%5BTitle%5D)+AND+%22Neurosurg%22%5BJournal%5D)">Anticoagulation regimes and their influence on the occlusion rate of aneurysms: an experimental study in rabbits.</a> Neurosurg. 57, 1048-1054 (2005).</li>
<li>Forrest, M. D., O'Reilly, G. V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Production+of+experimental+aneurysms+at+a+surgically+created+arterial+bifurcation%5BTitle%5D)+AND+%22AJNR+Am+J+Neuroradiol%22%5BJournal%5D)">Production of experimental aneurysms at a surgically created arterial bifurcation.</a> AJNR Am J Neuroradiol. 10, 400-402 (1989).</li>
</ol>

Brak zadeklarowanych konfliktów interesów.

Autorzy zalecają zwrócenie uwagi na następujące krytyczne etapy operacyjne, aby uzyskać dobre wyniki i drożne tętniaki:
<ol>
 <li>Staranna dyssekcja długiego segmentu lewej tętnicy szyjnej wspólnej (CCA) w celu ułatwienia anastomozy bez niszczenia nerwów i małych naczyń.</li>
 <li>Staranne usunięcie silnie trombogennej włóknistej tkanki periadwentycjalnej przed wykonaniem anastomozy.</li>
 <li>Wykonanie anastomozy bez napięcia.</li>
 <li>Mniejsza liczba szwów: Zaproponowana sekwencja miejsc anastomozy, rozpoczynająca...

<table><tbody><tr><td>Wielonitkowe szwy wchłanialne Vicryl 4-0</td><td>Ethicon Inc.</td><td>J386H</td><td></td></tr><tr><td>Mononitkowe szwy niewchłanialne Ethilon 10-0</td><td>Ethicon Inc.</td><td>2814</td><td>igła z czubkiem stożkowatym</td></tr><tr><td>Klej biologiczny Evicel Bioglue</td><td>Ethicon Inc.</td><td>3901</td><td></td></tr><tr><td>Plaster transdermalny z fentanylem 12.5 &amp;mu;g/h</td><td></td><td></td><td>Dowolny producent generyczny</td></tr><tr><td>Heparyna</td><td></td><td></td><td>Dowolny producent generyczny</td></tr><tr><td>0.9% sól fizjologiczna</td><td></td><td></td><td>Dowolny producent generyczny</td></tr><tr><td>4% HCl papaweryny</td><td></td><td></td><td>Dowolny producent generyczny</td></tr><tr><td>Siarczan neomycyny 5 mg/ml</td><td></td><td></td><td>Dowolny producent generyczny</td></tr><tr><td>Ketamina 50mg/ml</td><td></td><td></td><td>Dowolny producent generyczny</td></tr><tr><td>Ksylazyna 20mg/ml</td><td></td><td></td><td>Dowolny producent generyczny</td></tr></tbody></table>

mikrochirurgiczne tętniaki rozwidleń tętniczych z wykorzystaniem zastawki żylnej w modelu królika: aspekty techniczne

Microsurgical Venous Pouch Arterial-Bifurcation Aneurysms in the Rabbit Model: Technical Aspects

W przypadku pękniętych tętniaków mózgu u ludzi embolizacja endowaskularna stała się równoważną alternatywą dla klipsowania tętniaka.1 Jednakże duże badania kliniczne wykazały rozczarowujące wyniki długoterminowe z nieakceptowalnie wysokimi wskaźnikami rekanalizacji tętniaka oraz opóźnionego pęknięcia tętniaka.2 Aby rozwiązać te problemy, badania eksperymentalne na zwierzętach są kluczowe dla rozwoju lepszych urządzeń endowaskularnych.3-5
Dostępnych jest kilka modeli zwierzęcych z wykorzystaniem szczurów, królików, psów i świń.6-8 Porównania różnych modeli zwierzęcych wykazały przewagę modelu króliczego pod względem hemodynamiki, porównywalności układu krzepnięcia oraz efektywności kosztowej.9-11 
Model tętniaka w miejscu rozwidlenia tętnicy z wykorzystaniem woreczka żylnego u królików tworzy się poprzez wszycie woreczka żylnego w sztucznie stworzone prawdziwe rozwidlenie obu tętnic szyjnych wspólnych (CCA). Główną zaletą tego modelu jest odwzorowanie rzeczywistej hemodynamiki rozwidlenia.12 Do głównych wad należą dotychczas wysokie wymagania techniczne w zakresie mikrochirurgii oraz wysoka zachorowalność i śmiertelność, sięgająca 50%.13 Ograniczenia te doprowadziły do rzadszego stosowania tego modelu tętniaka w ostatnich latach. Niedociągnięcia te można wyeliminować dzięki usprawnionym procedurom chirurgicznym oraz zmodyfikowanemu postępowaniu przeciwbólowemu i przeciwkrzepliwemu w okresie około- i pooperacyjnym.14-16 Techniki opisane w niniejszej pracy prezentują tę zoptymalizowaną metodę mikrochirurgicznego tworzenia tętniaków rozwidlenia tętniczego.

Opisano zoptymalizowaną technikę mikrosurgicalnego tworzenia tętniaków rozwidleń tętniczych, naśladujących ludzkie tętniaki rozwidleń naczyń mózgowych. Torebka żylna zostaje wszyta w sztucznie stworzone prawdziwe rozwidlenie obu tętnic szyjnych wspólnych. Zastosowanie ułatwionych technik mikrosurgicalnych oraz agresywnego przeciwkrzeplenia i analgezji pooperacyjnej prowadzi do zminimalizowania wskaźników zachorowalności oraz wysokiego stopnia drożności tętniaków.

Mikrochirurgiczne tętniaki rozwidleń tętniczych z wykorzystaniem zastawki żylnej w modelu królika: aspekty techniczne

W przypadku pękniętych tętniaków mózgu u ludzi embolizacja endowaskularna stała się równoważną alternatywą dla klipsowania tętniaka.1 Jednakże duże badania kliniczne ...

Niniejsza demonstracja szczegółowo przedstawia skuteczną i ułatwioną technikę mikrochirurgiczną tworzenia tętniaków w obrębie worka żylnego oraz rozwidlenia tętniczego u królików, rozpoczynając od izolacji żyły szyjnej zewnętrznej i przygotowania worka żylnego. Następnie przygotowuje się obie tętnice szyjne wspólne. W celu późniejszego wykonania anastomozy należy stworzyć sztuczne rozwidlenie obu tętnic szyjnych wspólnych, wykorzystując techniki ułatwiające ten proces.Na koniec, przy użyciu ułatwionych technik mikrochirurgicznych, przedłużonej przeciwbólowej terapii pooperacyjnej oraz intensywnej i długotrwałej przeciwkrzepliwości, zaszyj worek żylny w miejscu tej sztucznie stworzonej bifurkacji. Powstałe w ten sposób tętniaki bifurkacyjne u królików charakteryzują się niską śmiertelnością i zachorowalnością, przy jednoczesnym wysokim wskaźniku drożności tętniaka. Główną zaletą tej techniki w porównaniu z istniejącymi metodami są ułatwione techniki mikrochirurgiczne, przedłużone przeciwbólowe leczenie pooperacyjne oraz agresywna przeciwkrzepliwość, co skutkuje wysoką drożnością tętniaka oraz niską śmiertelnością i zachorowalnością.Wykorzystanie tych tętniaków do oceny nowych urządzeń endowaskularnych do leczenia tętniaków mózgu pozwala tej metodzie pomóc w odpowiedzi na kluczowe pytania dotyczące odpowiedzi histologicznej poszczególnych urządzeń lub wynikającej z niej długoterminowej stabilności embolizowanych tętniaków. Teraz zaprezentuję procedurę w znieczuleniu ogólnym. Unieruchom samicę białego królika nowozelandzkiego o masie od 2,5 do 3,5 kg w pozycji wygrzbietowej na płycie grzewczej.Wykonaj cięcie w linii środkowej od kąta żuchwy w dół do manubrium sterni podczas całej operacji. Często stosuj miejscowo 4% roztwór hydrochlorčku papainy oraz roztwór antybiotyku na naczynia i anastomozy, aby zapobiec skurczom naczyń i miejscowym infekcjom. Za pomocą mikroskopu operacyjnego wybierz odcinek lewej żyły szyjnej zewnętrznej o długości jednego centymetra, pozbawiony odgałęzień żylnych, i wyizoluj go mikrochirurgicznie, podwiązując żyłę proksymalnie i dystalnie szwami wieloniciowymi 4/0.Następnie należy go wyciąć i przechowywać w soli fizjologicznej z heparyną. Najpierw przygotuj odcinek lewej wspólnej tętnicy szyjnej, obejmujący obszar od rozwidlenia tętnicy szyjnej w dół, tak daleko w stronę łuku aorty, jak to możliwe. Zachowaj gałęzie tętnicze biegnące przyśrodkowo i zaopatrujące struktury krtani i tchawicy, a także wszystkie struktury nerwowe.Kontynuuj przygotowanie prawej tętnicy szyjnej wspólnej, mobilizując ją aż do rozwidlenia tętnicy szyjnej oraz w dół do pnia ramienno-głowowego. Następnie podaj dożylnie 1000 jednostek międzynarodowych heparyny. Potem tymczasowo zacisnąć prawą tętnicę szyjną wspólną tuż poniżej rozwidlenia tętnicy szyjnej, a następnie podwiązać prawą tętnicę szyjną wspólną proksymalnie, bezpośrednio nad pniem ramienno-głowowym.Przeciąć prawą tętnicę szyjną wspólną powyżej podwiązania i przepłukać kikut heparynowaną solą fizjologiczną na wolnym końcu prawej tętnicy szyjnej wspólnej. Przeciąć i starannie wyciąć tkankę otoczki, precyzyjnie zaklemować lewą tętnicę szyjną wspólną zarówno dystalnie, jak i proksymalnie, oraz uwolnić segment planowany do anastomozy. Wykonać eliptyczną arteriotomię lewej tętnicy szyjnej wspólnej między klemami, dostosowując jej rozmiar do planowanej anastomozy z prawą tętnicą szyjną wspólną i workiem żylnym; przepłukać lewą tętnicę szyjną wspólną heparynowaną solą fizjologiczną.Następnie zaszyj tylny obwód kikuta prawej tętnicy szyjnej wspólnej w miejscu arteriotomii lewej tętnicy szyjnej wspólnej, używając od czterech do pięciu nierozpuszczalnych szwów monofilamentowych 10-0. Wykonaj cięcie podłużne w kikucie prawej tętnicy szyjnej wspólnej, aby dopasować go do połowy obwodu worka żylnego. Przeprowadź anastomozę tylnej ściany worka żylnego z arteriotomią w lewej tętnicy szyjnej wspólnej, ponownie używając od 4 do 5 szwów 10-0.Następnie przeprowadza się anastomozę tylnej ściany worka żylnego z tylną ścianą prawej tętnicy szyjnej wspólnej, stosując od trzech do czterech szwów po stronie przedniej. Powtarza się anastomozę w tej samej kolejności. Teraz należy usunąć dystalny zacisk z prawej tętnicy szyjnej wspólnej.Należy pamiętać, że ponieważ tętniak zazwyczaj nie jest całkowicie szczelny, uwięzione powietrze i zanieczyszczenia zostają wypłukane. Na koniec uszczel linie szwów wokół anastomozy oraz szyjki tętniaka za pomocą płata tłuszczowego i kleju fibrynowego EverCel. Następnie usuń pozostałe klipsy i użyj wchłanialnych szwów 4-0 do głębokiego i powierzchownego zamknięcia rany.W pierwszej kolejności podaj dożylnie 10 mg/kg kwasu acetylosalicylowego oraz podskórnie 60 ml 5% glukozy. Następnie, w celu zapewnienia skutecznej analizji przez 72 godziny, naklej w ogolonym obszarze szyi zwierząt transdermalne plastry z macierzą fentanylu uwalniające 12,5 µg/h. Dodatkowo podawaj podskórnie 250 IU/kg heparyny drobnocząsteczkowej codziennie przez dwa tygodnie.Procedura ta rozpoczyna się od izolacji zewnętrznej żyły szyjnej. Następnie określa się długość eliptycznej arteriotomii. Lewą tętnicę szyjną wspólną w woreczku żylnym umieszcza się obok prawej tętnicy szyjnej wspólnej, która została tymczasowo zaklemowana zarówno proksymalnie, jak i dystalnie.Anastomozę wykonuje się od strony tylnej. Ten obraz przedstawia prawidłowo wykonaną anastomozę. Film ten prezentuje kluczowe kroki prowadzące do wysokiej drożności tętniaka i niskiej śmiertelności podczas tworzenia worka żylnego oraz tętniaków rozwidlenia tętniczego u królików, w celu odtworzenia tętniaków mózgowych do oceny nowych urządzeń do embolizacji endonaczyniowej.Należy pamiętać, że praca z żywymi zwierzętami może być niezwykle niebezpieczna. Podczas wykonywania tej procedury zawsze należy przestrzegać środków ostrożności, takich jak stosowanie odzieży ochronnej. Na koniec pragnę mocno podkreślić etyczną wartość żywych zwierząt, co wiąże się z koniecznością traktowania ich z szacunkiem.

microsurgical-venous-pouch-arterial-bifurcation-aneurysms-rabbit

Research

JoVE Journal

Medicine

Medycyna

Mikrochirurgiczne tętniczo-żylne woreczki torbielowate w modelu królika: aspekty techniczne

Ten film pokazuje interpozycję tętnicy szyjnej królika z żyłą szyjną w celu wywołania przerostu żył wewnętrznych poprzez poddanie żył ciśnieniu tętniczemu. Model ten pomoże w badaniu interwencji molekularnych i genetycznych w celu osłabienia progresji przerostu błony wewnętrznej po operacjach rewaskularyzacji.

Interpozycja tętnicy szyjnej i żyły szyjnej: technika wywoływania przerostu żylnej błony wewnętrznej w modelu królika

Źródło: Wanderer, S.,  i inni. Model tętniaka mikrochirurgicznego bifurkacji u królika. J. Vis. Exp. (2020)Ten film pokazuje tworzenie eksperymentalnego modelu tętniaka u królika przy użyciu torebki naczyniowej poddanej elastazie. Po wycięciu fragmentu prawego CCA, worek jest traktowany elastazą, a następnie zszywany do lewego CCA w celu przywrócenia przepływu krwi. Powstałe naprężenia na osłabionych ściankach worka indukują powstawanie tętniaka.

Opracowanie eksperymentalnego modelu tętniaka u królika przy użyciu torebki naczyniowej nasączonej elastazą

Opisujemy mikrochirurgiczne podejście do generowania pętli tętniczo-żylnej (AV) jako model do analizy unaczynienia in vivo w izolowanym i dobrze scharakteryzowanym środowisku. Model ten jest nie tylko przydatny do badania angiogenezy, ale jest również optymalnie przystosowany do inżynierii osiowo unaczynionych i przeszczepialnych tkanek.

Pętla tętniczo-żylna (AV) w małym modelu zwierzęcym do badania angiogenezy i inżynierii tkanek unaczynionych

Obecny protokół ma na celu eksperymentalne stworzenie przerostu żył wewnętrznych poprzez poddanie żył działaniu ciśnienia krwi tętniczej w celu opracowania strategii osłabienia przerostu żył wewnętrznych po operacji rewaskularyzacji za pomocą przeszczepów żyłowych.

Model wstawiania żył królika naśladujący operację rewaskularyzacji przy użyciu przeszczepów żył do oceny przerostu błony wewnętrznej pod ciśnieniem tętniczym krwi

Rozwój i testowanie urządzeń wewnątrznaczyniowych do leczenia tętniaków wewnątrzczaszkowych jest nadal bardzo ważne. Większość stosowanych obecnie modeli tętniaków pomija albo ważne cechy zwyrodniałej ściany tętnicy, albo hemodynamikę prawdziwego rozwidlenia. Dlatego naszym celem było zaprojektowanie nowatorskiego modelu bifurkacji worka tętniczego u królików.

Worek tętniczy Model tętniaka bifurkacji mikrochirurgicznej u królika

Ten protokół opisuje etapy tworzenia modelu królika z dwoma tętniakami trawionymi elastazą o różnej hemodynamice (konstelacja kikuta i bifurkacji). Pozwala to na testowanie nowatorskich urządzeń wewnątrznaczyniowych w tętniakach o różnej angioarchitekturze i warunkach hemodynamicznych w obrębie jednego zwierzęcia.

Stworzenie dwóch tętniaków trawionych elastazą workowatą o różnej hemodynamice u jednego królika

Tutaj opisujemy technikę mikrochirurgicznego tworzenia gigantycznych tętniaków bifurkacyjnych u królików w celu oceny urządzeń wewnątrznaczyniowych.

Mikrochirurgiczne tworzenie gigantycznych tętniaków bifurkacji u królików w celu oceny urządzeń wewnątrznaczyniowych

Obecny protokół proponuje stworzenie przetoki tętniczo-żylnej u królików przy użyciu zmodyfikowanej techniki bezdotykowej. Technika polega na zespoleniu bocznym-bocznym tętnicy szyjnej wspólnej i żyły szyjnej zewnętrznej bez preparowania tkanek okołożylnych lub odcinania tętnicy.

Zmodyfikowana technika budowy przetoki tętniczo-żylnej u królików

Celem jest wytworzenie prostej i powtarzalnej przetoki tętniczo-żylnej. W tej metodzie nie stosuje się szwów ani kleju adhezyjnego. Dzięki temu próbki mogą być używane do analizy z najmniejszą ilością materiałów obcych.

Aspekty techniczne przetoki aortowo-gardłowej myszy

Mikrochirurgiczne tętniaki ściany bocznej u szczurów powstają w wyniku zespolenia przeszczepu aorty z boku do końca. Przedstawiamy instrukcje krok po kroku i omawiamy szczegóły anatomiczne i chirurgiczne, aby pomyślnie stworzyć eksperymentalnego tętniaka workowatego.

Mikrochirurgiczny model tętniaka ściany bocznej Helsinki Rat

Poznaj zoptymalizowaną technikę mikrochirurgiczną tworzenia tętniaków tętniczo-bifurkacyjnych w worku żylnym u królików. Metoda ta zapewnia niską śmiertelność i wysoką drożność tętniaków, stanowiąc wiarygodny model do badania tętniaków mózgowych.

Mikrochirurgiczne tętniaki rozwidleń tętniczych z wykorzystaniem zastawki żylnej w modelu królika: aspekty techniczne

Przeglądaj więcej filmów