Name: Transfer genów w niewydolności niedokrwiennej serca w modelu przedklinicznym (Wideo) | JoVE Journal
Uploaded: 2011-05-15T14:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 35 s
Description: Poznaj metodę transferu genów w terapii niewydolności serca przy użyciu modelu świni z zawałem mięśnia sercowego. Procedura umożliwia ocenę skuteczności terapii genowej wektorami wirusowymi.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Niniejsza praca została sfinansowana przez Fundację Leducq za pośrednictwem sieci Caerus (RJH) oraz przez NIH w ramach grantów R01 HL093183, HL088434, HL071763, HL080498, HL083156 i P20HL100396 (RJH). DL otrzymał wsparcie z Deutsche Forschungsgemeinschaft (Niemiecka Fundacja Badawcza). Chcielibyśmy podziękować Lauren Leonardson za pomoc techniczną przy tym projekcie.

1. Wywołanie zawału mięśnia sercowego
<ol>
	<li>Samicach świń rasy Yorkshire (20kg) z Animal Biotech Industries (Doylestown, PA) stosuje się premedykację z użyciem Telazolu (tiletamina/zolazepam) (8,0 mg/kg) oraz buprenorfiny (0,6 mg).</li>
	<li>Zwierzęta są intubowane, a następnie wentylowane 100% tlenem. Przez cały czas trwania procedury utrzymywana jest narkoza ogólna za pomocą propofolu (5-8mg/kg/hr).</li>
	<li>Miejsce wkłucia w tętnicy udowej jest przygotowywane za pomocą 70% alkoholu izopropylowego, a następnie powidonu jodowego. Dostęp do tętnicy oraz miejsce wprowadzenia pochewki zapewnia punkcja przezskórna. Po wprowadzeniu pochewki podaje się dożylnie 3000-5000 IU heparyny w celu utrzymania aktywnego czasu krzepnięcia na poziomie 250-300 sekund.</li>
	<li>Dawkę bolusową amiodaronu (75 mg) podaje się domięśniowo. Rozpoczęty zostaje i utrzymywany przez cały czas trwania procedury w tempie 150 ml/hr dożylny wlew 1000 ml soli fizjologicznej z amiodaronem (75 mg), atropiną (2 mg) i octanem potasu (20 mEq).</li>
	<li>Cewnik 7 Fr typu hockey-stick (Cordis; Miami, FL) jest wprowadzany do lewej tętnicy wieńcowej, a następnie wykonuje się angiografię wieńcową. Przewodnik 0,014-calowy (Abbott, Park, IL) jest wprowadzany do lewej przedniej zstępującej tętnicy wieńcowej (LAD). Balon VOYAGER typu over-the-wire o długości 8 mm i średnicy 4,0 mm (Abbott, Park, IL) jest wprowadzany i pozycjonowany w proksymalnej części LAD, a następnie balon wieńcowy jest nadmuchiwany do 3 atm. Zamknięcie LAD potwierdza się w angiogramie.</li>
	<li>Przy ciągłym monitorowaniu EKG i parametrów hemodynamicznych zamknięcie jest utrzymywane przez 90 minut. W ciągu pierwszych 40 minut mogą sporadycznie wystąpić złośliwe arytmie komorowe, w takim przypadku natychmiast podaje się defibrylację prądem stałym z energią od 200 J do 300 J. Zazwyczaj występują dwa szczytowe przedziały czasowe arytmii: jeden między 2 a 10 minutą oraz drugi między 25 a 35 minutą po nadmuchaniu balonu. Uważny monitoring i natychmiastowa defibrylacja są kluczowe dla pomyślnego wywołania zawału mięśnia sercowego, ponieważ częstotliwość wystąpienia migotania komór w indicated przedziałach czasowych przekracza 95%. Jeśli przeprowadzona zostanie natychmiastowa i odpowiednia defibrylacja, przeżywalność jest bardzo wysoka. W przypadku spadku ciśnienia tętniczego poniżej 80 mmHg, uzupełnienie objętości odbywa się poprzez szybką dożylną infuzję soli fizjologicznej.</li>
	<li>Balon jest spuszczany, a wszystkie urządzenia usuwane.</li>
	<li>Pochewkę usuwa się z tętnicy udowej, zaprzestaje podawania znieczulenia i monitoruje zwierzę podczas wybudzania. Infuzję soli fizjologicznej z amiodaronem, atropiną i octanem potasu zmniejsza się do 50 ml/hr i podaje przez noc. Podaje się domięśniowo nitroglicerynę i furosemid. Następnie zwierzę przechodzi proces rekonwalescencji, a uważny monitoring EKG jest kontynuowany przez co najmniej 3 godziny.</li>
	<li>Przez pięć dni podaje się doustnie kwas acetylosalicylowy (200mg) PO.</li>
</ol>
Typowe powikłania występujące w trakcie i po procedurze wywoływania zawału mięśnia sercowego to rozwarstwienie tętnic wieńcowych, krwiak w miejscu nakłucia, arytmia oraz niewydolność serca. Aby zapobiec tym powikłaniom i nimi zarządzać, wymagana jest dopracowana technika oraz dokładny monitoring.
2. Iniekcja wirusa
<ol>
	<li>Zwierzęta są przygotowywane zgodnie z opisem w krokach 1–3 tworzenia zawału mięśnia sercowego. Należy podać tę samą dawkę heparyny, aby zapobiec zakrzepicy podczas wstrzykiwania wirusa.</li>
	<li>Cewnik typu hockey stick 5Fr (Cordis; Miami, FL) zostaje wprowadzony do lewej tętnicy wieńcowej. Po wykonaniu angiogramu wprowadzane są dwa druty prowadzące o średnicy 0,014 cala, jeden do LAD i jeden do lewej tętnicy okalającej (LCX), aby ustabilizować pozycję cewnika.</li>
	<li>Z cewnika pobiera się krew tętniczą (-20 ml). Aby zapobiec niedokrwieniu podczas infuzji, do roztworu stosuje się krew rozcieńczoną w połowie. Wirus jest mieszany z 10 ml krwi i rozcieńczany solą fizjologiczną do objętości 20 ml. Pozostałe 10 ml jest również rozcieńczane do 20 ml i używane do podania pozostałego wirusa znajdującego się w świetle cewnika.</li>
	<li>Przez żyłę uszną rozpoczyna się podawanie dożylne nitrogliceryny (20 μg/min).</li>
	<li>Koniec cewnika zostaje umieszczony w proksymalnym odcinku lewej tętnicy głównej. Monitoruje się ciśnienie w cewniku, aby upewnić się, że nie doszło do jego zaklinowania.</li>
	<li>Mieszaninę krwi z wirusem (15 ml) wstrzykuje się przez cewnik do lewej tętnicy wieńcowej w czasie 15 minut przy użyciu pompy infuzyjnej. Po 15 minutach strzykawkę wymienia się na roztwór płuczący i kontynuuje infuzję przez 10 minut.</li>
	<li>Drut i cewnik są mocowane w prawej tętnicy wieńcowej w ten sam sposób, co w lewej tętnicy wieńcowej.</li>
	<li>Pozostałe 5 ml krwi zmieszanej z wirusem wstrzykuje się do prawej tętnicy wieńcowej przez 5 minut, a następnie przeprowadza płukanie przez 10 minut.</li>
</ol>
3. Przypadek reprezentatywny
Rycina 1 przedstawia lewokardiografię w 1. miesiącu po wywołaniu zawału mięśnia sercowego. Ruch ścian lewej komory jest znacznie upośledzony, a frakcja wyrzutowa (EF) wynosi 31%. Rycina 2 przedstawia przekroje poprzeczne lewej komory w 1. miesiącu. Widoczna jest rozległa blizna od podstawy do wierzchołka ściany przedniej. Średnia EF w 1. miesiącu po zawale mięśnia sercowego w tym modelu wynosi 36%, a średnia objętość końcowodorozkurczowa to 83 ml, podczas gdy średnie wartości u zwierząt o tej samej wielkości bez zawału mięśnia sercowego wynoszą odpowiednio 68% i 42 ml. Rycina 3 przedstawia ekspresję beta-gal w strefie przyzawałowej lewej komory 1 miesiąc po wstrzyknięciu wirusa towarzyszącego adenowirusom (2 x 1012 cząsteczek rAAV1 CMV Lac-Z opornych na DNAzę). W obszarze wstrzyknięcia wirusa stwierdzono zwiększoną ekspresję.
<img src="/files/ftp_upload/2778/2778fig1.jpg" alt="RTG cewnikowania serca; pomiar wielkości serca; obliczanie EF; analiza obrazowania medycznego." data-altupdatedat="1788235205000" data-alt="Rycina 1"> 
Rycina 1. Frakcja wyrzutowa zmierzona w badaniu lewokardioangiografii 1 miesiąc po wywołaniu zawału mięśnia sercowego. Lewa komora jest poszerzona do 92,5 ml, a ruch ściany przedniej jest znacznie upośledzony.
<img src="/files/ftp_upload/2778/2778fig2.jpg" alt="Badanie anatomii serca przedstawiające przekroje serca świni do analizy zastawkowej, skala jako punkt odniesienia dla wielkości." data-altupdatedat="1788235205000" data-alt="Rycina 2"> 
Rycina 2. Przekroje poprzeczne lewej komory 1 miesiąc po wywołaniu zawału mięśnia sercowego, barwione chlorkiem trifenylotetrazolium w celu wyznaczenia obszaru blizny. Widoczna jest rozległa blizna od podstawy do wierzchołka ściany przedniej.
<img src="/files/ftp_upload/2778/2778fig3.jpg" alt="Obraz mikroskopowy analizy barwienia tkanek, podkreślający różnice w strukturze komórkowej i kontroli." data-altupdatedat="1788235205000" data-alt="Rycina 3"> 
Rycina 3. Ekspresja Beta-gal indukowana przez wirusa towarzyszącego adenowirusom (2 x 1012 cząstek rAAV1 CMV Lac-Z odpornych na DNazę). Zwiększoną ekspresję stwierdzono w strefie granicznej między obszarem zawału a tkanką prawidłową, 1 miesiąc po dokoronarnej iniekcji wirusa. Zdjęcie w prawym dolnym rogu przedstawia kontrolę negatywną, w której do tętnic wieńcowych wstrzyknięto wyłącznie roztwór soli fizjologicznej zgodnie z tym samym protokołem.

<ol><li>Perez de Prado, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Closed-chest+experimental+porcine+model+of+acute+myocardial+infarction-reperfusion%5BTitle%5D)+AND+%22J+Pharmacol+Toxicol+Methods%22%5BJournal%5D)">Closed-chest experimental porcine model of acute myocardial infarction-reperfusion.</a> J Pharmacol Toxicol Methods. 60, 301-306 (2009).</li>
<li>Angeli, F. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Left+ventricular+remodeling+after+myocardial+infarction%3A+characterization+of+a+swine+model+on+beta-blocker+therapy%5BTitle%5D)+AND+%22Comp+Med%22%5BJournal%5D)">Left ventricular remodeling after myocardial infarction: characterization of a swine model on beta-blocker therapy.</a> Comp Med. 59, 272-279 (2009).</li>
<li>Urdaneta, F., Lobato, E. B., Kirby, D. S. &amp, Sidi, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Treating+myocardial+stunning+randomly%2C+with+either+propofol+or+isoflurane+following+transient+coronary+occlusion+and+reperfusion+in+pigs%5BTitle%5D)+AND+%22Ann+Card+Anaesth%22%5BJournal%5D)">Treating myocardial stunning randomly, with either propofol or isoflurane following transient coronary occlusion and reperfusion in pigs.</a> Ann Card Anaesth. 12, 113-121 (2009).</li>
<li>Jaski, B. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Calcium+upregulation+by+percutaneous+administration+of+gene+therapy+in+cardiac+disease+%28CUPID+Trial%29%2C+a+first-in-human+phase+1%2F2+clinical+trial%5BTitle%5D)+AND+%22J+Card+Fail%22%5BJournal%5D)">Calcium upregulation by percutaneous administration of gene therapy in cardiac disease (CUPID Trial), a first-in-human phase 1/2 clinical trial.</a> J Card Fail. 15, 171-181 (2009).</li>
</ol>

Wszyscy autorzy oświadczają, że nie pozostają w żadnych związkach handlowych, które mogłyby stanowić konflikt interesów w związku z niniejszym manuskryptem.

Wśród różnych przyczyn niewydolności serca, niedokrwienie jest zdecydowanie najczęstszym czynnikiem etiologicznym. W celu zwalczania tej poważnej choroby opracowywane są różnorodne podejścia terapeutyczne. Przed zastosowaniem tych obiecujących terapii w praktyce klinicznej niezbędna jest ich staranna ocena. Dlatego ustanowienie modelu niedokrwiennej niewydolności serca, który odzwierciedla stan kliniczny pacjentów, ma kluczowe znaczenie dla rozwoju metod leczenia niewydolności serca. Opracowany przez nas model zawału mię...

<table><tbody><tr><td>Telazol</td><td>Fort Dodge Animal Health</td><td>0856-9050-49</td><td></td></tr><tr><td>Propofol</td><td>APP Pharmaceuticals</td><td>63323-270-20</td><td></td></tr><tr><td>Heparyna</td><td>APP Pharmaceuticals</td><td>63323-540-11</td><td></td></tr><tr><td>Amiodaron</td><td>APP Pharmaceuticals</td><td>63323-616-03</td><td></td></tr><tr><td>Siarczan atropiny</td><td>Med-Pharmex</td><td>54925-063-10</td><td></td></tr><tr><td>Octan potasu</td><td>American Regent Inc.</td><td>2053-25</td><td></td></tr><tr><td>Nitrogliceryna</td><td>American Regent Inc.</td><td>4810-25</td><td></td></tr><tr><td>Salix (Furosemid)</td><td>Intervet Inc.</td><td>710461</td><td></td></tr><tr><td>Kaniula typu „hockey stick” 5 Fr</td><td>Cordis</td><td>556-278-0L</td><td></td></tr><tr><td>Kaniula typu „hockey stick” 7 Fr</td><td>Cordis</td><td>778-278-00</td><td></td></tr><tr><td>Drut koronarny</td><td>Abbott Laboratories</td><td>1044588</td><td></td></tr><tr><td>Balon koronarny</td><td>Abbott Laboratories</td><td>1009447-08</td><td></td></tr><tr><td>Osłonka 8Fr</td><td>Terumo Medical Corp.</td><td>RSS801</td><td></td></tr></tbody></table>

transfer genów w przedklinicznym modelu niedokrwiennej niewydolności serca

Gene Transfer for Ischemic Heart Failure in a Preclinical Model

Opracowywanych jest wiele nowych technologii przeznaczonych dla pacjentów z niewydolnością serca. Niezbędne są rzetelne oceny przedkliniczne w celu określenia ich skuteczności i bezpieczeństwa.
Terapia genowa z wykorzystaniem wektorów wirusowych jest jednym z najbardziej obiecujących podejść w leczeniu chorób serca. Wirusowa dostawa różnych genów poprzez zmianę genu przenoszonego wykazuje ogromny potencjał terapeutyczny.
W tym filmie przedstawiono pełen proces tworzenia zwierzęcego modelu niewydolności serca, a następnie transferu genów z wykorzystaniem modelu świńskiego. W pierwszej kolejności wywołuje się zawał mięśnia sercowego poprzez zamknięcie proksymalnego odcinka lewej przedniej zstępującej tętnicy wieńcowej. Przebudowa serca prowadzi do przewlekłej niewydolności serca. Charakterystyczną cechą naszego modelu jest stosunkowo obszerna blizna, która wiernie odzwierciedla stan pacjentów z ciężką niewydolnością serca wymagających agresywnej terapii w celu uzyskania pozytywnych rezultatów. Po wywołaniu zawału mięśnia sercowego i wytworzeniu się tkanki bliznowatej zaprezentowano dokoronarną iniekcję wirusa przy jednoczesnej infuzji nitrogliceryny. Nasza metoda iniekcji zapewnia prosty i wydajny transfer genów z wzmocnioną ekspresją genową. To połączenie świńskiego modelu zawału mięśnia sercowego z dokoronarnym dostarczaniem wirusa okazało się spójną i powtarzalną metodologią, która pomaga nie tylko testować efekt pojedynczego genu, ale także porównywać skuteczność wielu genów jako kandydatów terapeutycznych.

Opisano metodę transferu genów w leczeniu niedokrwiennej niewydolności serca z wykorzystaniem modelu zawału mięśnia sercowego u świń. Nasza prosta i powtarzalna metoda pozwala na łatwą ocenę skuteczności różnych transferów genów w sposób bardzo prosty i odtwarzalny.

Transfer genów w przedklinicznym modelu niedokrwiennej niewydolności serca

Opracowywanych jest wiele nowych technologii przeznaczonych dla pacjentów z niewydolnością serca. Niezbędne są rzetelne oceny przedkliniczne, aby określić...

Terapia genowa. Wykorzystanie wektorów wirusowych jest jednym z najbardziej obiecujących podejść w leczeniu chorób serca. W niniejszym filmie przedstawiono procedury tworzenia modelu niedokrwiennej niewydolności serca oraz dostarczania genów za pomocą wektora wirusowego.Pierwszym krokiem jest wywołanie zawału mięśnia sercowego w modelu świńskim. W tym celu do tętnicy wieńcowej wprowadza się prowadnicę koronarną, a następnie balon do okluzji. Przy użyciu dostępu endowaskularnego balon zostaje napompowany, aby całkowicie zamknąć tętnicę wieńcową.W rezultacie w obszarze przednim powstaje rozległy zawał, a u świń rozwija się przewlekła niewydolność serca. Kolejnym krokiem jest iniekcja wirusa. Wektory wirusowe są powoli wstrzykiwane do tętnicy wieńcowej.Zostanie on zniesiony przez krwiobieg i rozprowadzony w mięśniu sercowym. Wirus dostanie się do kardiomiocytów, a następnie do jądra komórkowego, gdzie wyśle sygnały do syntezy białek. Ekspresowane białka wzmocnią wydajność serca i zwiększą jego ogólną sprawność.W tym filmie przedstawiamy procedury terapii genowej w niewydolności serca z powodu niedokrwienia z wykorzystaniem modelu świńskiego. Najpierw pokażemy, jak wywołać zawał mięśnia sercowego, a następnie zademonstrujemy przedmiotu podania wektora wirusowego do tętnic wieńcowych. Procedurę tę stosujemy w celu przetestowania skuteczności i bezpieczeństwa różnych transferów genów.Zacznijmy zatem. Aby rozpocząć procedurę, u świni indukuje się znieczulenie za pomocą telazolu. Następnie zakłada się linię dożylną w żyle ucha, a potem przeprowadza intubację świni.Ułóż świnię w pozycji grzbietnej. W trakcie eksperymentu zastosuj propofol do znieczulenia ogólnego. Aby monitorować ciśnienie krwi, oczyść okolicę pachwiny alkoholem, a następnie jodyną.Przykryj pole zabiegu sterylnym prześcieradłem i przygotuj wszystkie sterylne przybory. Wykonaj nakłucie tętnicy udowej igłą 18 G metodą Seldingera. Po zaobserwowaniu pulsującego cofania się krwi wprowadź prowadnik, a następnie umieść osłonkę; po wprowadzeniu osłonki wstrzyknij heparynę, aby zapobiec tworzeniu się zakrzepów podczas eksperymentu.Następnie należy przygotować worek z solą fizjologiczną zawierający 75 mg amiodaronu, 20 mEq potasu oraz 20 mg atropiny, ustawiając prędkość podaży na 150 ml/h. W tym czasie podaje się domięśniowy zastrzyk z 75 mg amiodaronu. Następnie wprowadzamy cewnik prowadzący do ujścia lewej tętnicy wieńcowej i wykonujemy angiogram w celu oceny anatomii tętnic wieńcowych.Ostrożnie wprowadź prowadnicę do lewej przedniej zstępującej tętnicy wieńcowej. Następnie przesuń balon po prowadnicy do wnętrza tętnicy wieńcowej. Wykonaj angiogram, aby upewnić się co do położenia balonu.Należy wykonać kolejny angiogram pod innym kątem, aby sprawdzić położenie balonu. Następnie stopniowo napompować balon do ciśnienia 3 ATM. Wykonać kolejny angiogram w celu potwierdzenia zamknięcia tętnicy.Monitoruj świnię, mierząc ciśnienie tętnicze oraz wykonując elektrokardiografię. Sporadycznie u świni może wystąpić migotanie komór. W takim przypadku jak najszybciej przeprowadź defibrylację za pomocą prądu stałego.Jeśli próba nie powiedzie się, należy uciskać klatkę piersiową do czasu naładowania kardiowertera i podać kolejny wstrząs. Obserwować pacjenta przez 90 minut, a następnie spuścić powietrze z balonu. Po ustabilizowaniu ciśnienia krwi i arytmii należy usunąć osłonkę i poddać świni rekonwalescencji.Wykonaj domięśniowy zastrzyk z nitrogliceryną i furosemidem oraz podaj dożylnie płyny z amiodaronem w ciągu nocy. Przygotuj się, zakładając czepek, maskę, gogle, fartuch i rękawiczki. Świnia jest przygotowana w ten sam sposób, co przy wywoływaniu zawału mięśnia sercowego.Wprowadź po jednym drucie koronarnym do lewej tętnicy wieńcowej zstępującej oraz do lewej tętnicy okalającej. Umieść cewnik w ujściu. Pobierz 20 ml krwi tętniczej, wykorzystując 10 ml do iniekcji wirusa, a pozostałą część do przepłukania.Wymieszać wirusa z 10 mililitrami krwi i rozcieńczyć solą fizjologiczną do objętości 20 mililitrów. Następnie pozostałą krew rozcieńczyć solą fizjologiczną do 20 mililitrów i podzielić na dwie strzykawki. Strzykawkę zawierającą krew zmieszaną z wirusem podłączyć do cewnika i przygotować do infuzji.Rozpoczyna się dożylne podawanie nitrogliceryny w dawce 20 µg/min przez żyłę uszną, wykonując angiografię w celu sprawdzenia położenia cewnika. Następnie, po wstrzyknięciu 15 mL do lewej tętnicy wieńcowej, rozpoczyna się wstrzykiwanie wirusa z prędkością 1 mL/min. Należy wymienić strzykawkę na płukanie, zachowując tę samą prędkość wstrzykiwania. Po iniekcji do lewej tętnicy wieńcowej tę samą procedurę przeprowadza się w odniesieniu do prawej tętnicy wieńcowej, wykorzystując pozostałe 5 mL krwi zawierającej wirusa.Miesiąc po wywołaniu zawału mięśnia sercowego u zwierzęcia rozwinie się niewydolność serca z upośledzoną kurczliwością ścian oraz dylatacją serca. Średnia frakcja wyrzutowa miesiąc po zawale mięśnia sercowego w tym modelu wynosi 36% i jest znacząco niższa niż u świń o tej samej wielkości bez zawału mięśnia sercowego. Średnia objętość końcowodorozkurczowa wynosi 83 milliliters, podczas gdy średnia w grupie kontrolnej wynosi 42 milliliters.Wartość DP DT była również znacząco niższa u świń z zawałem mięśnia sercowego. Są to przekroje poprzeczne lewej komory. Miesiąc po zawale mięśnia sercowego stwierdzono obecność rozległej blizny od podstawy do wierzchołka ściany wewnętrznej.Na tym zdjęciu przedstawiono ekspresję gale. Miesiąc po transferze genu z wykorzystaniem wirusa związanego z zębami stwierdzono znaczącą ekspresję w obszarze wstrzyknięcia wirusa. Przedstawiliśmy właśnie sposób wywołania efektu w mięśniu sercowym u świni, a także sposób wstrzykiwania koronawirusa.Ta kombinacja modelu niewydolności i dostarczania genów jest prostą i powtarzalną metodą testowania różnych rodzajów terapii genowych w chorobach trajektorii. Dziękujemy za oglądanie i życzymy powodzenia w przyszłych eksperymentach.

gene-transfer-for-ischemic-heart-failure-in-a-preclinical-model

Research

JoVE Journal

Medicine

Medycyna

Terapia genowa dla niedokrwiennej niewydolności serca w modelu przedklinicznym

Nowatorskie strategie terapeutyczne w medycynie regeneracyjnej serca wymagają obszernych i szczegółowych badań na dużych przedklinicznych modelach zwierzęcych, zanim będą mogły być rozważane do zastosowania u ludzi. W tym miejscu demonstrujemy technikę przezskórnego wstrzykiwania domięśniowego do mięśnia sercowego pod kontrolą echokardiografii kontrastowej u królików, która jest cenna dla hipotezy testującej skuteczność takich nowatorskich terapii.

Przezskórna iniekcja domięśniowa pod kontrolą echokardiografii z kontrastem i dostarczanie komórek w dużym modelu przedklinicznym

Tutaj prezentujemy protokół manipulacji genami specyficznymi dla serca u myszy. W znieczuleniu serca myszy zostały uzewnętrznione przez czwartą przestrzeń międzyżebrową. Następnie adenowirusy kodujące określone geny wstrzyknięto za pomocą strzykawki do mięśnia sercowego, a następnie dokonano pomiaru ekspresji białka za pomocą obrazowania in vivo i analizy Western blot.

Prosta i skuteczna metoda manipulacji genami in vivo specyficznymi dla serca poprzez wstrzyknięcie do mięśnia sercowego u myszy

Tutaj prezentujemy protokół indukcji kriouszkodzenia lewej komory, po którym następuje wszczepienie łaty mięśnia sercowego, pochodzącej z ludzkich kardiomiocytów komórek iPS w modelu świnki morskiej.

Implantacja plastrów sercowo-mięśniowych pochodzących z hiPSC po urazie mięśnia sercowego w modelu świnki morskiej

Tutaj opisujemy przedkliniczny model ortotopowego przeszczepu serca na dużych zwierzętach (świniach), który został mocno ugruntowany i wykorzystany do zbadania nowych strategii kardioprotekcyjnych.

Przedkliniczny model ortotopowego przeszczepiania serca od świń

Staraliśmy się stworzyć świński model niewydolności serca wywołanej zablokowaniem lewej tętnicy obwodowej i szybką stymulacją, aby przetestować efekt i bezpieczeństwo domięśniowego podawania komórek macierzystych w terapiach komórkowych.

Opracowanie świńskiego modelu niewydolności serca po zawale mięśnia sercowego do leczenia komórkami macierzystymi

Ten protokół przedstawia prosty i spójny sposób na przejściowe zwiększenie wartości interesującego genu za pomocą modRNA po zawale mięśnia sercowego u myszy.

Dostarczanie zmodyfikowanego mRNA w mysim modelu zawału mięśnia sercowego

Prezentujemy model choroby niedokrwiennej serca za pomocą kardiomiocytów pochodzących z ludzkich indukowanych pluripotencjalnych komórek macierzystych, wraz z metodą ilościowej oceny uszkodzeń tkanek spowodowanych niedokrwieniem. Model ten może stanowić użyteczną platformę do badań przesiewowych leków i dalszych badań nad chorobą niedokrwienną serca.

Model choroby niedokrwiennej serca i porównanie wideo skurczu kardiomiocytów przy użyciu kardiomiocytów pochodzących z hiPSC

Ten protokół ma na celu przeszczepienie biodrukowanej łatki 3D na nasierdzie myszy z zawałem, modelując niewydolność serca. Zawiera szczegóły dotyczące znieczulenia, chirurgicznego otwarcia klatki piersiowej, trwałego podwiązania lewej przedniej zstępującej tętnicy wieńcowej (LAD) i nałożenia biodrukowanego plastra na obszar serca po zawale.

Przeszczep biodrukowanego plastra 3D w mysim modelu zawału mięśnia sercowego

Terapia genowa mięśnia sercowego w chorobie niedokrwiennej serca jest bardzo obiecująca dla przyszłych terapii. W tym miejscu przedstawiamy duży model zwierzęcy do oceny skuteczności terapii genowej w niedokrwiennym sercu.

Duży model zwierzęcy do oceny skuteczności terapii genowej w chorobie niedokrwiennej serca

Przedstawiamy protokół wykorzystania normotermicznego systemu perfuzji krwi ex vivo do dostarczania środków terapeutycznych do całego alloprzeszczepu serca w heterotopowym modelu przeszczepu serca u świń.

Protokół heterotopowego przeszczepu serca u świń w celu dostarczenia leków do alloprzeszczepu serca

Obecny protokół opisuje metody ekspresji transgenu w sercach szczurów i myszy poprzez bezpośrednie wstrzyknięcie wirusa do mięśnia sercowego pod kierunkiem echokardiografii. Wyjaśniono również metody oceny podatności serca na komorowe zaburzenia rytmu serca poprzez programowaną stymulację elektryczną izolowanych serc z perfuzją Langendorffa.

Ekspresja transgenu wirusa w sercach gryzoni i ocena ryzyka arytmii serca

Poznaj metodę transferu genów w terapii niewydolności serca przy użyciu modelu świni z zawałem mięśnia sercowego. Procedura umożliwia ocenę skuteczności terapii genowej wektorami wirusowymi.

Transfer genów w przedklinicznym modelu niedokrwiennej niewydolności serca

Przeglądaj więcej filmów