Kriokonserwowane utrwalanie i barwienie skrawków tkanek: procedura przetwarzania zamrożonych skrawków tkanki mózgowej do mikrodysekcji laserowej

0 wyświetleń2:41 min • April 30th, 2023

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Aby zróżnicować określone populacje komórek w heterogenicznej tkance guza mózgu myszy w celu ich późniejszej izolacji, zacznij od pobrania szklanego szkiełka z kriokonserwowanym odcinkiem tkanki guza mózgu, który jest przedmiotem zainteresowania.

Sekwencyjnie inkubować tkankę w malejących stężeniach etanolu. Etanol rozpuszcza podłoże osadzające, które wniknęło w tkankę i utrwala tkankę, zachowując integralność kwasu nukleinowego.

Dodatkowo etanol nawadnia tkankę, umożliwiając równomierne barwienie podczas kolejnych etapów.

Teraz potraktuj tkankę fioletem krezylowym. Fiolet krezylowy - barwnik zasadowy - barwi kwaśne składniki komórkowe, takie jak kwasy nukleinowe.

Następnie przeciwbarwić tkankę Eozyną Y. Eozyna Y - kwaśny barwnik - barwi podstawowe składniki komórkowe, takie jak białka cytoplazmatyczne.

Ten etap barwienia różnicowego pomaga odróżnić cytoplazmę od innych struktur komórkowych, umożliwiając identyfikację komórek będących przedmiotem zainteresowania.

Po barwieniu zanurz tkankę w rosnącym stężeniu etanolu, aby odwodnić tkankę i uniknąć nadmiernego zniekształcenia tkanki.

Następnie umyj chusteczkę ksylenem. Ksylen wypiera i usuwa etanol z wycinka tkankowego.

Na koniec dodaj odpowiedni roztwór montażowy do sekcji tkanki, aby zachować morfologię tkanki.

Przetworzony wycinek tkanki jest gotowy do wykorzystania do mikrodysekcji laserowej – procesu, który pozwala na precyzyjne wyizolowanie określonych komórek z tkanki.

Zanurz szkiełka w 30-sekundowym sekwencyjnym zanurzeniu w etanolu opadającym, a następnie barwieniu roztworem fioletu krystalicznego przez 20 sekund i 5 sekund w 0,5% roztworze eozyny Y.

Pod koniec inkubacji eozyny Y należy użyć bibuły filtracyjnej, aby osuszyć szkiełka i odwodnić szkiełka w sekwencyjnym rosnącym zanurzeniu w etanolu. Po 60-sekundowym zanurzeniu w etanolu płucz szkiełka w pojemniku z ksylenem przez 3 minuty.

Następnie wysuszyć szkiełka na powierzchni wolnej od RNaz w temperaturze pokojowej przez 10 sekund przed zamontowaniem próbek w podłożu montażowym przygotowanym z wodą wolną od RNaz. Po 10 do 20 sekundach przenieś szkiełka na platformę mikroskopową do mikroskopu.

07:30

Podstawa immunohistochemii na kriowyciętej tkance mózgowej szczura: przykładowe barwienie mikrogleju i neuronów

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

08:35

Organotypowy model hodowli warstwowej glejaka ludzkiego do badania migracji komórek nowotworowych i specyficznych dla pacjenta skutków leków przeciwinwazyjnych

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

07:58

Swobodne barwienie immunologiczne mózgów myszy

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

28:32

Szybkie mrożenie i kriosekcjonowanie mózgu myszy w stadium E12.5

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

10:25

Protokoły przygotowania próbek, obrazowania i analizy dla mikroskopii skanującej krawędzią noża

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

02:37

Sekcja zamrożonej tkanki mózgowej myszy: procedura uzyskiwania cienkich zamrożonych skrawków tkanki z zamrożonej tkanki mózgowej myszy

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

04:44

Przetwarzanie mózgu myszy do dalszej analizy

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

13:32

Laserowe wychwytywanie mikrodysekcji wzbogaconych populacji neuronów lub pojedynczych neuronów do analizy ekspresji genów po urazowym uszkodzeniu mózgu

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

05:51

Domózgowo-komorowe i wewnątrznaczyniowe wstrzykiwanie cząstek wirusowych i mikrogranulek fluorescencyjnych do mózgu noworodka

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:29

Stereotaktyczne przechwytywanie laserowe pod kontrolą atlasu Mikrodysekcja obszarów mózgu dotkniętych urazem urazowym

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

Ostatnia aktualizacja: 22 sierpnia 2026