$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Komórki mikrogleju uwalniają mediatory immunologiczne w postaci pęcherzyków zewnątrzkomórkowych lub EV, w tym większych ciał apoptotycznych i mniejszych mikropęcherzyków, do pożywek wzrostowych in vitro.
Aby wyizolować EV, zacznij od pobrania pożywek kondycjonowanych mikroglejem. Ta pożywka hodowlana zawiera komórki mikrogleju wraz z uwolnionymi EV. Odwirować pożywkę, aby granulować komórki.
Zbierz supernatant zawierający EV, szczątki i agregaty białkowe w świeżej probówce. Ponownie odwirować, aby usunąć resztki komórkowe i duże ciała apoptotyczne.
Przenieść supernatant do probówki ultrawirówkowej. Wirować z dużą prędkością.
Odrzucić supernatant zawierający zużyte pożywki i ponownie zawiesić EV i granulki agregatu białkowego w żądanym buforze.
Równocześnie należy pobrać kolumnę chromatograficzną z wyłączeniem wielkości z odpowiednim filtrem u podstawy.
Szczelnie upakować kolumnę matrycą do filtracji żelu składającą się z kulistych kulek żelowych, które tworzą porowate sito o określonej wielkości porów.
Załaduj zawiesinę EV i agregatu białkowego na fazę stacjonarną.
Gdy zawiesina przechodzi przez kolumnę, większe pojazdy elektryczne przemieszczają się przez przestrzenie międzycząsteczkowe między kulkami żelowymi, pokonując krótszą ścieżkę. W przeciwieństwie do tego, mniejsze agregaty białkowe przemieszczają się do porów, podążając dłuższą drogą.
W związku z tym EV są eliminowane jako pierwsze z kolumny.
Zbierz frakcje zawierające EV i wykorzystaj je do dalszej analizy.
Przenieść kondycjonowaną pożywkę hodowlaną z kultur mikrogleju lub makrofagów do stożkowej probówki i odwirować ją przy 1 200 x g przez 10 minut w celu osadzenia komórek. Przenieś supernatant do nowej stożkowej probówki i wiruj przez kolejne 20 minut, aby wyeliminować ciała apoptotyczne.
Następnie przenieś supernatant do 10,4-mililitrowej probówki z poliwęglanu. Umieść probówkę w wirniku 70.1 Ti i ultraodwiruj ją przy 100 000 x g przez 90 minut w temperaturze 4 stopni Celsjusza, aby granulować EV. Po odwirowaniu wyrzucić supernatant i ponownie zawiesić osad w 200 mikrolitrach przefiltrowanego PBS o wielkości 0,2 mikrometra.
Aby wyizolować EV, przygotuj domową kolumnę do chromatografii wykluczającej rozmiar, myjąc i sterylizując szklaną kolumnę chromatograficzną i umieszczając na dnie filtr o długości 60 mikrometrów. Ułóż kolumnę z usieciowaną matrycą filtracyjną z żelu agarozowego, aby utworzyć fazę stacjonarną o średnicy 0,6 centymetra i wysokości 20 centymetrów.
Następnie przepłucz fazę 50 mililitrami przefiltrowanego PBS o grubości 0,2 mikrometra. W razie potrzeby przechowuj kolumnę w temperaturze 4 stopni Celsjusza do późniejszego wykorzystania. Umieść zawieszone granulki EV na wierzchu fazy stacjonarnej i zbierz 20 sekwencyjnych frakcji po 250 mikrolitrów, kontynuując dodawanie PBS do górnej części fazy stacjonarnej. Frakcje można przechowywać w temperaturze minus 20 stopni Celsjusza.