$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
W warunkach patologicznych aktywowany mikroglej - wyspecjalizowane makrofagi mózgowe - pomagają eliminować patogeny i resztki komórek. Te mikroglej wyrażają unikalne receptory, które odróżniają je od innych makrofagów.
Aby wyizolować mikroglej, zacznij od hodowli komórek mózgowych pochodzących od transgenicznego danio pręgowanego, wyrażającego określone cząsteczki fluorescencyjne w różnych typach komórek.
Kultura zawiera mieszaninę neuronów - wyrażających czerwoną fluorescencję, makrofagów - wyrażających zieloną fluorescencję i niefluorescencyjny mikroglej.
Teraz dodaj odczynnik blokujący i inkubuj kulturę z przerywanym mieszaniem. Odczynnik blokujący wiąże się z niespecyficznymi miejscami na komórkach i redukuje sygnał tła.
Następnie dodaj przeciwciała pierwszorzędowe i inkubuj. Przeciwciała te wiążą się ze specyficznymi receptorami ulegającymi ekspresji na powierzchni mikrogleju.
Odwirować kulturę i usunąć supernatant zawierający niezwiązane przeciwciała. Zawiesić osad komórkowy w nowym podłożu.
Następnie dodać przeciwciała drugorzędowe sprzężone z barwnikiem fluorescencyjnym i inkubować. Przeciwciała te wiążą się z przeciwciałami pierwszorzędowymi i nadają czerwony kolor kompleksowi mikrogleju-przeciwciała.
Odwirować kulturę i usunąć niezwiązane przeciwciała. Zawiesić osad na świeżym podłożu.
Przefiltruj komórki, aby usunąć wszelkie zanieczyszczenia.
Za pomocą aktywowanego fluorescencyjnie sortera komórek lub FACS posortuj populację komórek mikrogleju na podstawie ich wielkości i fluorescencji.
Wyizolowany mikroglej może być używany do dalszych zastosowań.
Aby immunowybarwić mikroglej, użyj 0,3 mililitra pożywki A plus 2% NGS do ponownego zawieszenia osadu komórkowego. Następnie podziel komórki na trzy 1,5-mililitrowe probówki: jedną dla niebarwionych komórek do pomiaru autofluorescencji, drugą do pomiaru niespecyficznego wiązania wtórnego przeciwciała z mikroglejem, a trzecią jako test.
Do wszystkich probówek dodaj 1% Low Endotoxin, Azide-Free (LEAF), aby zablokować interakcje CD16 / CD32 z domeną Fc immunoglobulin. Następnie inkubuj komórki przez 10 minut z delikatnym mieszaniem co 5 minut.
Następnie do trzeciej probówki dodać przeciwciało 4C4 i inkubować je przez 30 minut z delikatnym mieszaniem co 10 minut. Następnie wiruj rurki w temperaturze 300 x g i 4 stopnie Celsjusza przez 10 minut.
Po odrzuceniu supernatantu przemyj osad raz 0,5 mililitra pożywki A plus 2% NGS przed ponownym odwirowaniem probówek. Ponownie zawiesić osad komórkowy z 0,5 mililitra pożywki A plus 2% NGS, następnie dodać 1% LEAF i inkubować komórki przez 10 minut z delikatnym mieszaniem co 5 minut.
Do probówek 2 i 3 dodać przeciwciała wtórne i umieścić probówki w ciemności. Po odwirowaniu probówek i wyrzuceniu supernatantu, użyj 0,5 mililitra Pożywki A plus 2% NGS do dwukrotnego przepłukania próbek, a następnie ponownie zawieś granulki komórek za pomocą 1 mililitra Pożywki A plus 2% NGS.
Przepuść zawiesinę komórek przez 35-mikronową nasadkę sitka komórkowego i przenieś ją do zimnych 5-milimetrowych probówek FACS na lodzie chronionym przed światłem. Na koniec przeprowadź sortowanie FACS i ekstrakcję RNA zgodnie z protokołem tekstowym.