$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Krążące bezkomórkowe DNA lub cfDNA to krótkie fragmenty DNA uwalniane głównie przez komórki rakowe ulegające apoptozie. cfDNA są obiecującymi biomarkerami raka i mogą być izolowane z płynów ustrojowych, takich jak osocze.
Aby wyizolować cfDNA, najpierw pobierz próbkę osocza od pacjenta z rakiem. Następnie potraktuj osocze buforem do lizy zawierającym proteinazę K, sole chaotropowe i nośnikowy RNA. Sole chaotropowe denaturują białka, uwalniając związane cfDNA z białek. Proteinaza K inaktywuje nukleazy, minimalizując w ten sposób degradację cfDNA.
Następnie dodaj żądany bufor wiążący do próbki. Zamontuj kolumnę wirową zawierającą matrycę krzemionkową w fazie stałej na aparacie próżniowym. Załaduj próbkę do kolumny. Zastosuj próżnię, aby przepuścić próbkę przez membranę krzemionkową.
Nośnik RNA niespecyficznie wiąże się ze ściankami rurki. To niespecyficzne wiązanie wraz z obecnością soli w buforze ułatwia wiązanie cfDNA z błoną krzemionkową, zwiększając odzysk cfDNA. Białka i inne zanieczyszczenia nie zatrzymują się na błonie.
Teraz umieść kolumnę wirującą na probówce zbiorczej. Odwirować w celu usunięcia pozostałości lizatu. Dodać odpowiedni bufor płuczący i odwirówkę, aby usunąć sole i wszelkie pozostałe zanieczyszczenia z kolumny. Na koniec przenieść kolumnę do świeżej probówki zbiorczej i dodać odpowiedni bufor elucyjny. Wirować w celu elucji kwasów nukleinowych, w tym cfDNA, do probówki.
Aby wyizolować krążące wolne od komórek DNA z próbki osocza pacjenta, dodaj 100 mikrolitrów proteinazy K i 800 mikrolitrów buforu lizy uzupełnionego jednym mikrogramem nośnika RNA do 1 mililitra osocza pacjenta. Dokładnie pulsacyjnie wirować roztwór przez 30 sekund, a następnie inkubować przez 30 minut w temperaturze 60 stopni Celsjusza. Pod koniec inkubacji dodać 1,8 mililitra buforu wiążącego do probówki i dokładnie wymieszać z 15 do 30 sekundami wirowania pulsacyjnego.
Po 5-minutowej inkubacji na lodzie włóż kolumnę z membraną krzemionkową do aparatu próżniowego podłączonego do pompy próżniowej i mocno włóż 20-mililitrowy przedłużacz rurki do otwartej kolumny, aby zapobiec wyciekowi próbki. Pod koniec inkubacji ostrożnie wlej mieszaninę do przedłużacza rurki i włącz pompę próżniową. Gdy cały lizat całkowicie przepłynie przez kolumny, wyłącz pompę próżniową, zwolnij ciśnienie do zera milibarów i ostrożnie wyrzuć przedłużacz rurki, nie zanieczyszczając sąsiednich kolumn.
Przenieść kolumnę do probówki zbiorczej w celu odwirowania w celu usunięcia pozostałości lizatu. Po odrzuceniu przepływu, dodać 600 mikrolitrów buforu do płukania-1 do kolumny w celu ponownego odwirowania. Po odrzuceniu przepływu, ponownie odwirować kolumnę z 750 mikrolitrami buforu do płukania-2. Po odrzuceniu przepływu dodaj 750 mikrolitrów 96% do 100% etanolu do kolumny w celu dodatkowego odwirowania.
Przenieś kolumnę do nowej 2-mililitrowej probówki zbiorczej w celu ponownego odwirowania przed umieszczeniem zespołu kolumny membranowej w nowej 2-mililitrowej probówce zbiorczej w temperaturze 56 stopni Celsjusza na 10 minut. Pod koniec inkubacji przenieść kolumnę do nowej 1,5-mililitrowej probówki elucyjnej i dodać 50 mikrolitrów buforu elucyjnego do kolumny na 3-minutową inkubację w temperaturze pokojowej. Następnie odwiruj odzyskany roztwór przez 1 minutę przy 20 000 x g, aby wymyć kwasy nukleinowe.