JoVE Encyclopedia of Experiments
Badania nad rakiem
0 wyświetleń • 5:06 min • July 8th, 2025
Mezenchymalne komórki macierzyste lub MSC mogą być genetycznie modyfikowane w celu ekspresji liganda indukującego apoptozę związanego z czynnikiem martwicy nowotworu lub TRAIL, który wiąże się ze specyficznymi receptorami na komórkach nowotworowych, wywołując apoptozę.
Aby dostarczyć te MSCs do mysiego modelu zawierającego nowotwór, najpierw należy przygotować rusztowanie biopolimerowe z wysiewem MSC z ekspresją TRAIL. Następnie zabezpiecz znieczuloną mysz z fluorescencyjnie znakowanym guzem mózgu na ramie stereotaktycznej. Mysz ma z góry ustalone okno czaszkowe, w którym można uzyskać dostęp do mózgu.
Utrzymuj temperaturę ciała myszy za pomocą poduszki grzewczej. Wysterylizuj miejsce operacji i wykonaj nacięcie w linii środkowej na skórze głowy. Usuń tłuszcz podskórny, aby odsłonić okno czaszki. Oderwij oponę twardą od okna, odsłaniając leżącą pod spodem tkankę miąższową i guz.
Teraz, pod stereoskopowym mikroskopem fluorescencyjnym, zwizualizuj fluorescencyjny guz. Odessać fluorescencyjną tkankę nowotworową z mózgu. Umyć solą fizjologiczną, aby przywrócić fizjologiczne pH. Wszczepić rusztowanie nasione MSC do jamy resekcyjnej. Zastosuj odpowiedni środek hemostatyczny, aby zabezpieczyć rusztowanie na miejscu. Zamknij nacięcie i pozwól myszy dojść do siebie.
Po implantacji komórki nowotworowe w obrębie resztkowych ognisk nowotworowych wydzielają rozpuszczalne czynniki, które ułatwiają migrację MSCs z rusztowania w kierunku komórek nowotworowych. Białka TRAIL wydzielane przez MSCs wiążą się ze specyficznymi receptorami na komórkach nowotworowych, indukując apoptozę śmierci komórki.
Zacznij od umieszczenia ramki stereotaktycznej na stoliku fluorescencyjnego mikroskopu preparacyjnego. Następnie przymocuj znieczuloną mysz do ramy stereotaktycznej za pomocą ciągłego dopływu znieczulenia wziewnego za pomocą adaptera stożka nosowego z izofluranem. Utrzymuj temperaturę ciała za pomocą poduszki grzewczej. Nałóż maść okulistyczną na oczy, aby zapobiec wysuszeniu rogówki. Następnie wysterylizuj miejsce nacięcia skóry głowy serią trzech chusteczek nasączonych alkoholem i trzema chusteczkami betadyny.
Wykonaj test odruchu szczypania palców u nóg na każdej kończynie i potwierdź negatywną odpowiedź, aby zapewnić prawidłowe znieczulenie. Za pomocą kleszczy uszczypnij i delikatnie unieś skórę głowy. Po wykonaniu liniowego nacięcia rostralno-ogonowego w linii środkowej nożyczkami chirurgicznymi, przepłukać miejsce nacięcia PBS i usunąć tłuszcz podskórny za pomocą aplikatora z bawełnianą końcówką okrężnym ruchem szczotkowania.
Ułóż skórę tak, aby wcześniej ustalone okno czaszki było w pełni widoczne. Użyj igły o rozmiarze 18, aby delikatnie nakłuć oponę twardą tuż wewnątrz do granic okna czaszki. Powtarzaj, aż nacięcie w pełni obejmie wnętrze okna. Usuń oponę twardą, odrywając ją za pomocą cienkich kleszczy, odsłaniając leżący pod spodem miąższ i guz.
Następnie przyciemnij światła w pomieszczeniu i włącz tryb fluorescencji stereomikroskopu. Zlokalizuj guz wyrażający lucyferazy U87 mCherry i świetlika. Załaduj końcówkę pipety o pojemności 200 mikrolitrów do końca rurki pompy próżniowej. Następnie włącz pompę próżniową. Wyciąć guz, delikatnie odsysając tkankę fluorescencyjną, aż nie pozostanie żaden sygnał. Aby zatamować krwawienie, przetrzyj zimnym PBS i wywieraj stały nacisk za pomocą aplikatora z bawełnianą końcówką.
Użyj kombinacji soli fizjologicznej, stałego ciśnienia z aplikatorem z bawełnianą końcówką i/lub środka hemostatycznego, takiego jak SURGICEL, aby zatrzymać krwawienie przed wszczepieniem rusztowania. Jeśli nie jest odpowiednio kontrolowany, może powstać potencjalnie niebezpieczny krwiak. Po wycięciu należy wyłączyć pompę próżniową i wyrzucić końcówkę pipety. Wyłącz fluorescencję, a pomieszczenie ponownie się rozświetli. Bezpośrednio przed implantacją należy powoli zanurzyć rusztowanie PLA z nasionami MSC w PBS, aby usunąć niechciane podłoże i powiązane komponenty. Wszczepić rusztowanie do jamy resekcyjnej.
W razie potrzeby dodaj 1 mikrolitr fibrynogenu, a następnie 1 mikrolitr trombiny, aby zabezpieczyć rusztowanie na miejscu. Po usunięciu opony twardej i wyrzuceniu płata kostnego z okienka czaszki, uszczelnij ranę, zamykając skórę i nakładając klej chirurgiczny. Wyjmij zwierzę ze znieczulenia wziewnego i pozwól mu dojść do siebie na rozgrzanej powierzchni.
Niniejsze badanie analizuje zastosowanie genetycznie zmodyfikowanych mezenchymalnych komórek macierzystych (MSC) wykazujących ekspresję TRAIL w celu indukowania apoptozy w komórkach nowotworowych. Metodologia obejmuje implantację rusztowań zasiedlonych komórkami MSC w modelu mysim z nowotworem, co umożliwia celowaną terapię guzów mózgu.
Niniejsza procedura chirurgiczna umożliwia ukierunkowane dostarczenie terapeutycznych mezenchymalnych komórek macierzystych (MSCs) do jam po resekcji guzów mózgu, co wspiera przedkliniczną ocenę terapii opartych na komórkach macierzystych. Dzięki połączeniu resekcji guza z prowadnictwem fluorescencyjnym z implantacją rusztowania zasianego komórkami MSC, metoda ta zapewnia powtarzalny model do oceny migracji, przeżywalności oraz aktywności przeciwnowotworowej MSC in vivo. Rozwiązuje ona kluczowy problem w opracowywaniu leków onkologicznych: osiągnięcie zlokalizowanego, długotrwałego dostarczania leków biologicznych do niedostępnych miejsc występowania guza przy jednoczesnej minimalizacji ekspozycji systemowej.
Metoda ta wpisuje się w kontinuum od etapu odkrycia do badań przedklinicznych, umożliwiając ocenę terapeutyków opartych na komórkach macierzystych po wstępnej walidacji celu, lecz przed określeniem profilu skuteczności i bezpieczeństwa w większych modelach.
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Ostatnia aktualizacja: 29 sierpnia 2026