Mysi model inwazji okołonerwowej: generowanie modelu in vivo do symulacji inwazji okołonerwowej w nerwie kulszowym myszy

0 wyświetleń5:11 min • July 8th, 2025

Inwazja okołonerwowa jest rzadkim zjawiskiem przerzutowym, w którym komórki rakowe dają przerzuty z miejsca pochodzenia, aby zaatakować przestrzeń okołonerwową w nerwach. Mikrośrodowisko nerwowe zapewnia odpowiednie środowisko do wzrostu i proliferacji raka.

Aby zasymulować inwazję okołonerwową in vivo, przygotuj znieczuloną mysz w pozycji leżącej. Wykonaj małe, równoległe nacięcie poniżej kości udowej - kości udowej. Oddziel mięśnie ud, aby odsłonić leżący pod spodem nerw kulszowy - największy i najłatwiej dostępny nerw w ciele.

Nerw kulszowy pochodzi z dolnej części kręgosłupa i biegnie przez mięśnie miednicy do każdej nogi. Przekazuje sygnały do skoordynowanego ruchu kończyn dolnych. Następnie należy usunąć otaczające mięśnie z nerwu i wyciągnąć go na zewnątrz za pomocą wysterylizowanej szpatułki w celu wsparcia wstrzyknięcia.

Teraz weź strzykawkę wypełnioną zawiesiną komórek rakowych i wstrzyknij ją równolegle do nerwu. Widoczne wybrzuszenie w nerwie potwierdza udane wstrzyknięcie, podczas gdy każdy wyciek wokół miejsca wstrzyknięcia wskazuje na nieudaną próbę. Krótko mówiąc, pozwól komórkom ustabilizować się w nerwie.

Następnie delikatnie cofnij igłę i zmień położenie mięśni. Następnie zszyj nacięcie. Pozwól myszy na odzyskanie sprawności. W końcu komórki rakowe zaczynają migrować z miejsca wstrzyknięcia w kierunku rdzenia kręgowego, potwierdzając inwazję okołonerwową.

W dniu poprzedzającym zabieg należy usunąć sierść wzdłuż kości udowej po stronie grzbietowej 8-tygodniowego samca lub samicy myszy C57BL/6J za pomocą maszynki do strzyżenia chirurgicznego lub chemicznego środka do usuwania włosów. W dniu zabiegu należy zdezynfekować scenę, znieczulić myszy za pomocą 2% izofluranu w komorze indukcyjnej i nałożyć maść weterynaryjną na oczy, aby zapobiec wysuszeniu w znieczuleniu.

Wstrzyknąć podskórnie odpowiednią ilość środka przeciwbólowego i przenieść mysz do stożka nosowego w obszarze operacyjnym. Wsparcie cieplne jest zapewnione przez cały czas trwania zabiegu chirurgicznego. Umieść znieczuloną mysz na brzusznej stronie i delikatnie zabezpiecz każdą kończynę hipoalergiczną taśmą, aby wytworzyć łagodne napięcie w kończynie, która ma zostać wstrzyknięta.

Oczyścić miejsce wstrzyknięcia wacikiem z betadyny, a następnie ponownie 70% alkoholem. Powtórz ten proces jeszcze dwa razy i upewnij się, że na polu operacyjnym nie pozostały żadne luźne włosy. Ostatnim krokiem jest nałożenie roztworu betadyny na obszar operacyjny. Po założeniu sterylnych rękawiczek i umieszczeniu sterylnego serwety, użyj dedykowanego sterylnego narzędzia, aby uszczypnąć palec u nogi przed wykonaniem nacięcia pod serwetą.

Następnie użyj sterylnych małych nożyczek, aby wykonać 1-centymetrowe nacięcie około 2 milimetry poniżej i równolegle do kości udowej. Cofnij skórę kleszczami na boki, aby odsłonić mięśnie pod spodem. Oddziel mięśnie pośladkowe wielkie i dwugłowe uda wzdłuż płaszczyzny powięziowej i odsłoń nerw kulszowy pod spodem. Uwolnij nerw z otaczających mięśni za pomocą rozwarstwienia.

Pobrać 3 mikrolitry komórek rakowych z granulki do sterylnej strzykawki o pojemności 10 mikrolitrów. Umieść małą metalową szpatułkę pod nerwem w miejscu wstrzyknięcia, aby uzyskać wsparcie. Podczas wizualizacji za pomocą mikroskopu preparacyjnego trzymaj igłę równolegle do nerwu i włóż ją do nerwu. Uważaj, aby nie przebić tylnej części nerwu.

Powoli wstrzyknij komórki do nerwu przez 5 sekund. Utworzenie się bańki w obszarze wstrzyknięcia wskazuje na dobry wtrysk. Pozostaw igłę na miejscu przez 3 sekundy, aby zminimalizować przepływ wsteczny, zanim delikatnie wyjmiesz igłę. Prawidłowe wstrzyknięcie komórek rakowych do nerwu kulszowego ma kluczowe znaczenie. Jeśli komórki zostaną wstrzyknięte na zewnątrz nerwu, ucierpi na tym konsystencja inwazji. Jednak z praktyką i doświadczeniem zdarza się to bardzo rzadko.

Po wstrzyknięciu należy przywrócić nerw do jego pierwotnego położenia i zakryć nerw leżącymi nad nim mięśniami. Potraktuj myszy odpowiednią przeciwbólem, a następnie zamknij skórę nylonowymi szwami 5-0. Umieść mysz samą w czystej klatce do obserwacji i zapewnij wsparcie cieplne podczas rekonwalescencji, dopóki nie odzyska wystarczającej świadomości, aby utrzymać leżący mostek.

08:23

In vitro Modelowanie nowotworowej inwazji neuronalnej: model zwoju korzenia grzbietowego

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

08:59

Model inwazji okołonerwowej w raku płaskonabłonkowym głowy i szyi

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:16

Błona naczyniówkowo-omocznaniowa piskląt w modelu in vivo do oceny inwazji okołonerwowej w raku głowy i szyi

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

08:49

Powtarzalny model zmiażdżenia nerwu kulszowego myszy i późniejsza ocena regeneracji poprzez analizę całego preparatu mięśnia

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

04:55

Ustanowienie trójwymiarowego modelu kohodowli mysich zwojów korzenia grzbietowego i komórek rakowych: model in vitro do badania inwazji okołonerwowych komórek rakowych

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

03:51

Mysi model inwazji nerwu kulszowego lub PNI: ekstrakcja i przetwarzanie nerwu kulszowego w celu zrozumienia inwazji komórek rakowych

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

07:09

Model kajdanki nerwu kulszowego bólu neuropatycznego u myszy

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:55

Mysi model nerwu kulszowego in vivo inwazji okołonerwowej

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

04:34

Zmodyfikowany model chirurgii oszczędzonego uszkodzenia nerwu bólu neuropatycznego u myszy

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

08:57

Identyfikacja, diagnozowanie i ocena złośliwych guzów osłonki nerwów obwodowych w genetycznie modyfikowanych modelach myszy

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

Ostatnia aktualizacja: 29 sierpnia 2026