$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Komórki rakowe mogą przemieszczać się z miejsca pochodzenia i atakować otaczające nerwy w procesie zwanym inwazją okołonerwową lub PNI. PNI obserwuje się w modelu zwierzęcym poprzez wstrzyknięcie komórek rakowych do głównego nerwu, takiego jak nerw kulszowy, który jest następnie ekstrahowany w celu zbadania zakresu inwazji.
Na początek przygotuj uśpioną mysz, której wcześniej wstrzyknięto komórki rakowe w pozycji leżącej. Usuń szwy z kończyny tylnej - miejsca wstrzyknięcia komórek nowotworowych w celu odsłonięcia nerwu kulszowego, który unerwia mięśnie kończyn tylnych.
Użyj nożyczek, aby oddzielić mięśnie i odsłonić leżący pod spodem nerw kulszowy. Wypreparuj końce nerwów, aby odizolować je od ciała. Teraz użyj suwmiarki, aby zmierzyć i zarejestrować makroskopowy zakres inwazji komórek rakowych.
Następnie umieść wypreparowany nerw w pożywce do zatapiania, aby umożliwić przygotowanie próbki w niskich temperaturach. Za pomocą mikrotomu kriostatu wytnij cienkie odcinki osadzonego nerwu i umieść je na szkiełku. Wybarwić szkiełko barwnikiem histologicznym hematoksyliny-eozyny.
Hematoksylina - barwnik zasadowy - barwi składniki kwasowe, takie jak jądra, podczas gdy eozyna - barwnik kwaśny - barwi podstawowe składniki, takie jak cytoplazma. Obserwuj szkiełko pod mikroskopem, aby zmierzyć długość i obszar inwazji neuronalnej.
W 7 dniu po operacji umieść uśpioną mysz na jej brzusznej stronie i ustabilizuj dystalne kończyny za pomocą szpilek. Po usunięciu skóry po grzbietowej stronie wstrzykniętej kończyny i tułowia należy zastosować rozwarstwienie, aby odsłonić nerw kulszowy głęboko w mięśniach.
Aby uzyskać dostęp do nerwu w okolicy rdzenia kręgowego, oddziel kość biodrową i kość krzyżową, wkładając zamknięte nożyczki w wąski obszar, w którym znajduje się nerw kulszowy, a następnie otwórz nożyczki, trzymając mysz. Ostrożnie wypreparuj nerw kulszowy dystalnie do końca kości udowej i proksymalnie do rdzenia kręgowego.
Ostrożne obchodzenie się z nimi jest niezbędne, ponieważ zaatakowane nerwy są niezwykle delikatne i podatne na pękanie pod wpływem napięcia lub siłowego obchodzenia się. Bądź delikatny i utrzymuj integralność nerwu kulszowego podczas sekcji.
Zbierz nerw, najpierw przecinając jego dystalny koniec. Ostrożnie unieś nerw, uwalniając go od sąsiedniej tkanki. Przetnij nerw na bliższym końcu jak najbliżej jego wyjścia z kręgosłupa. Użyj suwmiarki z noniuszem, aby oszacować całkowitą długość inwazji. Rozpocznij przetwarzanie od osadzenia wypreparowanego nerwu w związku OCT. Ułóż nerwy wzdłuż i tak płasko na dnie formy, jak to możliwe.
Wskaż na kasecie bliższą i dalszą stronę nerwu, zaznaczając litery P i D. Następnie umieść osadzone nerwy na suchym lodzie. Próbki należy wyciąć za pomocą mikrotomu Cryostat o grubości 5 mikronów i umieścić skrawki na szkiełkach podstawowych. Jeśli to możliwe, dopasuj dwie sekcje nerwowe na szkiełko. Wskaż bliższą stronę nerwu. Po wybarwieniu szkiełek za pomocą H&E i uzyskaniu obrazów za pomocą skanera slajdów, użyj oprogramowania do obrazowania, aby określić ilościowo długość inwazji.