$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Mikroskopia wielofotonowa umożliwia uchwycenie trójwymiarowych obrazów znakowanych fluorescencyjnie naczyń krwionośnych w żywej tkance. Zacznij od znieczulonej myszy w pozycji leżącej.
Ostrożnie wstrzyknąć zawiesinę fluoroforowego sprzężonego dekstranu do żyły ogonowej. Wstrzyknięte cząsteczki przepływają przez krążenie i docierają do narządów, takich jak wątroba. Barwnik fluorescencyjny znakuje surowicę naczyniową, wspomagając wizualizację naczyń krwionośnych, a dołączony dekstran o dużej masie cząsteczkowej zapobiega ich wyciekaniu z układu krwionośnego.
Przygotuj obszar brzucha myszy. Przenieś go na podstawę ramy do obrazowania narządu wyposażonej w pierścień ssący zawierający soczewkę obrazowania, podłączony do pompy próżniowej. Naciąć wzdłuż dolnej granicy mostka, aby odsłonić wątrobę.
Prowadząc pierścień ssący do wątroby, zastosuj podciśnienie lub podciśnienie, które ułatwia adsorpcję wątroby do soczewki w pierścieniu ssącym. Ten krok redukuje artefakty ruchu podczas obrazowania. Przenieś ramkę obrazowania zawierającą mysz na stolik wielofotonowego laserowego mikroskopu skaningowego.
Przykryj obiektyw solą fizjologiczną, która działa jak medium zanurzeniowe do obrazowania w wysokiej rozdzielczości. Podczas obrazowania skupione fotony o niskiej energii o dużej długości fali umożliwiają głębszą penetrację tkanek i pobudzają fluorofory w naczyniach krwionośnych w punkcie ogniskowym, powodując emisję i wykrywanie sygnałów fluorescencyjnych.
Seria skanów z wybranych odcinków optycznych na różnych głębokościach odtwarza kompletny trójwymiarowy obraz naczyń krwionośnych w tkance.
Po potwierdzeniu braku odruchu prostowania u znieczulonego 8-tygodniowego samca myszy C57BL/6, należy przetrzeć ogon myszy 75% alkoholem i za pomocą strzykawki o pojemności 1 mikrolitra wyposażonej w igłę o rozmiarze 30 wstrzyknąć 10 miligramów na mililitr świeżo przygotowanego izotiocyjanianu rodaminy B w 100 mikrolitrach izotiocyjanianu rodaminy B do żyły ogonowej ogona.
Po dostarczeniu całego roztworu użyj bawełnianego wacika, aby wywrzeć nacisk na miejsce nakłucia i użyj gazy zwilżonej sterylną wodą, aby namoczyć sierść na brzuchu. Użyj brzytwy, aby ogolić brzuch, wykonując ruchy w kierunku futra, i umieść mysz na poduszce grzewczej dezynfekowanej alkoholem o temperaturze 37 stopni Celsjusza.
Aby zamocować wątrobę myszy za pomocą ramki do obrazowania narządów ciała, najpierw umieść czystą przyssawkę o średnicy 5 milimetrów w ustalonej pozycji i przetrzyj poduszkę grzewczą i przyssawkę 75% alkoholem. Podłącz przyssawkę do węża pompy próżniowej i włącz pompę.
Na stole wysterylizowanym w 75% alkoholem użyj nożyczek chirurgicznych, aby odciąć 2 centymetry skóry od dolnej granicy mostka myszy i odsłonić wątrobę. Umieść mysz i poduszkę grzewczą na podstawie uchwytu ramy korpusu i wyreguluj uchwyt do obrazowania narządów tak, aby przyssawka mogła utrzymać wątrobę. Następnie użyj podciśnienia od 30 do 35 kilopaskali do ssania, aby wątroba przyczepiła się do kubka.
Aby skonfigurować wielofotonowy laserowy mikroskop skaningowy, włącz mikroskop i wybierz obiektyw 60x. Zamocuj ramkę i mysz pod obiektywem i dodaj kroplę soli fizjologicznej do kubka wystarczająco dużego, aby zakryć soczewkę. Ustaw obiektyw tak, aby soczewka dotykała normalnej soli fizjologicznej i włącz oprogramowanie lasera.