-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

PL

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools

Language

pl_PL

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Neuroscience
Elektroporacja myszy w macicy: kontrolowana czasoprzestrzenna transfekcja genów
Elektroporacja myszy w macicy: kontrolowana czasoprzestrzenna transfekcja genów
JoVE Journal
Neuroscience
This content is Free Access.
JoVE Journal Neuroscience
Mouse in Utero Electroporation: Controlled Spatiotemporal Gene Transfection

Elektroporacja myszy w macicy: kontrolowana czasoprzestrzenna transfekcja genów

Full Text
43,681 Views
09:30 min
August 15, 2011

DOI: 10.3791/3024-v

Asuka Matsui1, Aya C. Yoshida1, Mayumi Kubota1, Masaharu Ogawa1, Tomomi Shimogori1

1Lab for Molecular Mechanisms of Thalamus Development,RIKEN Brain Science Institute

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Metoda transferu genów do rozwijającego się mózgu myszy jest opisana za pomocą unikalnej metody chirurgicznej i specjalnego kształtu elektrod. Ta unikalna technika umożliwia transfekcję plazmidowego DNA w czasie i przestrzeni, co pomoże wielu neurobiologom w badaniu rozwoju mózgu.

Ogólnym celem tej procedury jest uzyskanie skutecznej transfekcji genów w ośrodkowym układzie nerwowym myszy embrionalnej w pożądanym punkcie czasowym rozwoju i obszarze mózgu. Osiąga się to najpierw poprzez przygotowanie precyzyjnych naczyń włosowatych i elektrod igłowych, aby zapobiec uszkodzeniu macicy. Drugim krokiem procedury jest nauczenie się unikalnej metody przetrzymywania zarodków za pomocą światłowodu świetlnego do wizualizacji małych zarodków w celu celowego wstrzyknięcia DNA.

Trzecim etapem zabiegu jest wykonanie elektroporacji elektrodami typu patyczek na powierzchni macicy w celu transfekcji DNA do powierzchownych części mózgu, ostatnim etapem zabiegu jest wykonanie elektroporacji elektrodami igłowymi do głębszych struktur mózgu, takich jak wzgórze i podwzgórze. Ostatecznie można uzyskać wyniki, które wskazują na warstwę korową, specyficzną transfekcję lub skuteczną transfekcję we wzgórzu. Główną przewagą tej techniki nad istniejącymi bałaganami, takimi jak zwykłe, neutralne lacja, jest lepsza widoczność i kontrola miejsca lacji zarodków w macicy.

Używamy przypominającego światłowód, który umożliwia wizualizację zarodków z E 9,5 i hipocji igłowej w celu przekazania plazmidowego DNA do głębszych części mózgu, takich jak wzgórze i podwzgórze. Ta metoda może pomóc odpowiedzieć na kluczowe pytania dotyczące rozwijającego się mózgu, takie jak różnicowanie neuronów, wzorce mózgu, połączenia neuronalne. Ogólnie rzecz biorąc, osoby, które są nowe w tej metodzie, będą miały trudności, ponieważ trudno jest ukształtować igłę, drogę elektryczną i pozycję zbiorową.

Macica i zarodki Wizualna demonstracja tej metody ma kluczowe znaczenie, aby zobaczyć, jak wykonać precyzyjne elektrody igłowe i jak ustawić zarodki tak, aby były wolne od prądu. Ponieważ te dwa kroki są kluczem do pomyślnych wyników. Do przygotowania naczynek należy użyć ściągacza do mikropipet zgodnie z instrukcją producenta.

W tej procedurze używamy jednomilimetrowych szklanych kapilar bez wewnętrznego włókna. Ciągnięte igły powinny mierzyć od 800 mikrometrów do jednego milimetra od końcówki o średnicy zewnętrznej mniejszej niż 60 mikrometrów za pomocą mikroskopu preparacyjnego, a kleszcze ściskają końcówki igieł do średnicy od 20 do 30 mikrometrów. Zmierz każdą igłę za pomocą mikrometru.

Następnie przygotuj mikroelektrody przez zwijanie. Jeden koniec drutu wolframowego wokół pozłacanego kołka. Użyj drutu wolframowego do elektrod ujemnych i drutu platynowego do elektrod dodatnich.

Przymocuj drut do kołka za pomocą parametru. Następnie włóż drut do plastikowego trzpienia bawełnianego wacika i owiń oba końce kaprysem, równomiernie naostrz końcówkę drutu drobnym papierem ściernym, aż osiągnie 20 do 30 mikrometrów na końcu i 60 mikrometrów między 800 mikrometrami a jednym milimetrem od końcówki. Ponownie sprawdź ostateczne wymiary za pomocą mikrometru.

Następnie zanurz zaostrzony drut w kropli lakieru do paznokci, aby nałożyć cienką warstwę na cały drut w celu izolacji. Po wyschnięciu lakieru do paznokci użyj wacika z acetonem, aby usunąć go z ostatnich 200 mikrometrów patyczka z końcówką. Elektrody platynowe są kupowane w stanie gotowym i nie wymagają przygotowania.

W tej procedurze używamy CUY sześć 10 P cztery kreski i jedną elektrodę genu nepo Oczyść DNA osocza za pomocą metody maxi prep lub równoważnej, wymownie 100 mikrogramów DNA do nowej probówki i dodaj 10 mikrolitrów 1% szybkiego zielonego barwnika. Użyj TE, aby zwiększyć objętość do 100 mikrolitrów, aby uzyskać końcowe stężenie DNA w osoczu wynoszące jeden mikrogram na mikrolitr. Delikatnie wymieszaj roztwór, pipetując główkę, a następnie wiruj roztwór DNA przez pięć minut w temperaturze pokojowej 14 000 obr./min, aby usunąć zanieczyszczenia i sole.

Przenieś SNAT do nowej tuby. Roztwór DNA może być przechowywany w probówce w temperaturze pokojowej przez cały czas trwania zabiegu. Następnie podłącz wyciągniętą igłę do mikromanipulatora zgodnie z instrukcjami producenta, zanurz końcówkę igły w roztworze DNA, aby wypełnić igłę.

Ostrożnie odłóż mikromanipulator na bok i przygotuj się do operacji przed operacją. Zważ ciężarną mysz w dniach embrionalnych. 9,5 do 15,5 w celu określenia masy ciała.

Następnie dootrzewnowe. Wstrzykiwać pentobarbital sodu klasy farmaceutycznej w dawce 50 mikrogramów na gram masy ciała i masy ciała przez pięć minut. Alternatywą dla pentobarbitalu sodu może być ketamina, ksylazyna, wyrzutnik lub środki znieczulające gazowe.

Po znieczuleniu użyj żyletki i 50% etanolu, aby zgolić włosy z brzucha. Przygotuj skórę za pomocą naprzemiennych peelingów z Betadine i 70% alkoholu. Wykonaj nacięcie na linii środkowej brzucha cienkimi nożyczkami.

Ostrożnie wyciągnij wszystkie rogi macicy na sól fizjologiczną buforowaną fosforanem A lub wilgotną i bawełnianą gazę PBS umieszczoną wokół rany. Utrzymuj macicę wilgotną za pomocą PBS przez cały czas. Za pomocą elastycznego światłowodowego.

Umieść pod rogiem macicy. Umieść macicę między światłowodem a kciukiem i delikatnie ściśnij, aby popchnąć zarodek bliżej ściany macicy. Gdy zarodek zostanie umieszczony z głową po lewej stronie i skierowaną do góry, ostrożnie włóż szklaną kapilarnę do docelowej komory i wstrzyknij około jednego mikrolitra roztworu DNA do elektroporacji warstwy korowej cztery W dniu embrionalnym 13,5.

Umieść platynowe elektrody w sztyfcie na zewnątrz macicy i zastosuj impulsy prądu prostokątnego pięć razy przy użyciu 38 woltów przez 50 milisekund. W przypadku stosowania mikroelektroporacji w celu dotarcia do wzgórza lub podwzgórza w 10,5 dniu embrionalnym, należy wprowadzić cienką elektrodę ujemną wolframu do komory, do której wstrzyknięto DNA, a platynową elektrodę dodatnią do macicy. Umieść obszar docelowy między końcami obu elektrod i zastosuj sugerowane impulsy prądu prostokątnego trzy razy przy napięciu siedmiu woltów przez 100 milisekund.

Po zakończeniu elektroporacji przywróć róg macicy do pierwotnego położenia i dodaj 500 mikrolitrów PBS. Zszyj wewnętrzną warstwę nacięcia szwem chirurgicznym. Następnie zamknij zewnętrzną warstwę dziewięciomilimetrowym automatycznym klipsem.

Umieść mysz na poduszce grzewczej na dwie godziny, aby umożliwić powrót do zdrowia po operacji i patyczku anestezjologicznym. Platynowa elektroporacja obszaru korowego jest tutaj stosowana w dniach embrionalnych, 13,5, 14,5 i 15,5. Mózgi pobierano w okresie poporodowym.

Dzień szósty. Warstwa komórek korowych poddanych elektroporacji jest wyraźnie inna w każdym eksperymencie. Sugeruje to, że elektroporacja zależna od czasu umożliwia warstwom korowym specyficzne wzmocnienie funkcji i utratę funkcji.

Jak pokazano tutaj, elektroporacja do głębokich tkanek, takich jak wzgórze i podwzgórze. Używanie elektrod platynowych w sztyfcie często daje niską wydajność przy użyciu mikroelektrod do pracy elektrycznej. Te głębokie tkanki zapewniają lepszą wydajność i żywotność.

Wstrzyknęliśmy roztwór DNA osocza do trzeciej komory zarodków myszy. W 11,5 dniu embrionalnym zastosowaliśmy elektroporację igłową ograniczoną do wzgórza, większość eksonów wzgórza wydostaje się do kory mózgowej w szóstym dniu po urodzeniu. Tutaj pokazujemy mikroelektroporację P-C-A-G-E-Y-F-P do rozwijającego się głowowu.

Obszar wzgórza jest pokazany przez RORC, który oznacza wszystkie neurony postmitotyczne wzgórza. Projekcje aksonów pokazane białymi strzałkami w czwartej warstwie kory mózgowej mogą być również wizualizowane przez EYFP, który wypełnia cały neuron. Pozycja warstwy czwartej w korze jest również oznaczona przez przeciwciało RORC.

Po rozpoczęciu MA tę technikę można wykonać w 15 minut na litr, jeśli jest wykonywana prawidłowo. Próbując wykonać tę procedurę, należy pamiętać, aby obchodzić się z testem bardzo ostrożnie, aby zapobiec uszkodzeniom Postępując zgodnie z tą procedurą. Inne metody, takie jak włączenie określonego chromu do MDNA, można przeprowadzić, aby zrozumieć molekularny mechanizm specyfikacji komórki po jej rozwoju.

Technika ta jest wykorzystywana przez naukowców zajmujących się rozwojem ośrodkowego układu nerwowego w celu zbadania mechanizmów molekularnych w zakresie wzorcowania, wzrostu aksonów i tworzenia obwodów.

View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos

Sign In Start Free Trial

Explore More Videos

Mysz elektroporacja in utero transfekcja genów rozwijający się mózg transfer genów nokaut knock-in specyficzna linia CRE metoda transfekcji geny kandydujące zwierzęta transgeniczne obszary mózgu śmiertelność embrionalna elektrody światłowodowy wstrzyknięcie roztworu DNA komory elektrody igłowe wzorzec obszaru mózgu

Related Videos

Iniekcja dokomorowa in utero i elektroporacja zarodków myszy E15

26:17

Iniekcja dokomorowa in utero i elektroporacja zarodków myszy E15

Related Videos

28.5K Views

Elektroporacja in utero i ex vivo do ekspresji genów w komórkach zwojowych siatkówki myszy

25:06

Elektroporacja in utero i ex vivo do ekspresji genów w komórkach zwojowych siatkówki myszy

Related Videos

19.2K Views

Skuteczne dostarczanie genów do wielu terytoriów OUN za pomocą elektroporacji in utero

13:12

Skuteczne dostarczanie genów do wielu terytoriów OUN za pomocą elektroporacji in utero

Related Videos

20.3K Views

Transdukcja wirusa w macicy u myszy

03:13

Transdukcja wirusa w macicy u myszy

Related Videos

163 Views

Dostarczanie genów oparte na elektroporacji in utero: technika wstrzykiwania plazmidowego DNA do embrionalnych komórek móżdżku mysich zarodków

05:19

Dostarczanie genów oparte na elektroporacji in utero: technika wstrzykiwania plazmidowego DNA do embrionalnych komórek móżdżku mysich zarodków

Related Videos

2.7K Views

Manipulacja genetyczna myszy rozwijającej podwzgórze poprzez elektroporację in utero

11:48

Manipulacja genetyczna myszy rozwijającej podwzgórze poprzez elektroporację in utero

Related Videos

16.3K Views

Kora mózgowa, hipokamp, wzgórze, podwzgórze, jądro przegrody bocznej i jądro prążkowia specyficzne dla macicy elektroporacja u myszy C57BL/6

06:00

Kora mózgowa, hipokamp, wzgórze, podwzgórze, jądro przegrody bocznej i jądro prążkowia specyficzne dla macicy elektroporacja u myszy C57BL/6

Related Videos

28.8K Views

Nowa metoda dostarczania plazmidowego DNA do nabłonka moczowego myszy za pomocą elektroporacji

06:38

Nowa metoda dostarczania plazmidowego DNA do nabłonka moczowego myszy za pomocą elektroporacji

Related Videos

8.8K Views

Podwójna elektroporacja in utero w celu ukierunkowania na czasowo i przestrzennie oddzielone populacje komórek

10:45

Podwójna elektroporacja in utero w celu ukierunkowania na czasowo i przestrzennie oddzielone populacje komórek

Related Videos

7.8K Views

Celowanie w mysią płytkę nerwową za pomocą nanoiniekcji in utero (NEPTUNE) w 7. dniu embrionalnym

10:49

Celowanie w mysią płytkę nerwową za pomocą nanoiniekcji in utero (NEPTUNE) w 7. dniu embrionalnym

Related Videos

4.2K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code