Sterowana obrazem zrobotyzowana mikroiniekcja komórek: zautomatyzowana technika o wysokiej przepustowości do precyzyjnego dostarczania znakowanych fluorescencyjnie polisacharydów do pojedynczych komórek neuronalnych w organotypowych kulturach wycinków mózgu

0 wyświetleń5:08 min • July 8th, 2025

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Aby wykonać zrobotyzowaną mikroiniekcję komórek, zacznij od załadowania schłodzonego, znakowanego fluorescencyjnie biokompatybilnego roztworu polisacharydów do zoptymalizowanej igły do mikroiniekcji. Zamontuj załadowaną igłę na uchwycie programowalnego mikromanipulatora w celu precyzyjnego pozycjonowania igły podczas mikroiniekcji.

Przenieść szalkę hodowlaną zawierającą embrionalne organotypowe wycinki tkanki mózgowej myszy w pożywce na podgrzewanym stoliku mikroskopowym w celu utrzymania fizjologicznych warunków tkanek. Skoncentruj się na podstawowej powierzchni wycinka tkanki mózgowej, który składa się z neuronów piramidowych, i zanurz igłę w pożywce, aby umieścić ją blisko neuronów, które mają być mikrowstrzyknięte.

Dostosuj ciśnienie kompensacji, aby zapobiec cofaniu się podłoża do igły poprzez działanie kapilarne.

Za pomocą oprogramowania zdefiniuj trajektorię i kąt igły. Ustawić igłę w punkcie początkowym zmapowanej trajektorii i rozpocząć automatyczny przebieg mikroiniekcji.

Igła pokonuje określoną odległość w kierunku komórki docelowej. Przyłożona siła powoduje, że igła naciska na błonę komórkową, co powoduje narastanie miejscowego napięcia i rozrywanie dwuwarstwy fosfolipidowej, umożliwiając penetrację. Po uzyskaniu dostępu do komory cytoplazmatycznej igła - zgodnie z ustawionym ciśnieniem iniekcji - dozuje kontrolowaną objętość załadowanego roztworu. Po wstrzyknięciu igła cofa się.

Perforacja błony komórkowej wywołuje wewnętrzną odpowiedź naprawy komórkowej w celu przywrócenia homeostazy błony. Błona komórkowa ponownie uszczelnia się przy minimalnym uszkodzeniu neuronów, zatrzymując znakowany fluorescencyjnie roztwór polisacharydowy. Przebieg mikroiniekcji trwa do momentu wstrzyknięcia wszystkich komórek w obrębie trajektorii. Pomyślnie wstrzyknięte neurony w wycinki tkanki mózgowej wykazują fluorescencję.

Włącz komputer, mikroskop, kamerę mikroskopową, manipulatory, zestaw ciśnieniowy i czujnik ciśnienia. Załaduj aplikację, klikając plik "launchapp.py" w głównym folderze pobranym z GitHub i określ ustawienia urządzenia na wyskakującym ekranie.

Aby zapobiec niepożądanemu zatkaniu, przed zanurzeniem pipety w roztworze należy wytworzyć ciśnienie na zewnątrz. Przesuń pasek "Ciśnienie kompensacji" do 24% do 45% i kliknij "Ustaw wartości". Następnie dostosuj ciśnienie, przekręcając pokrętło mechanicznego zaworu ciśnienia na 1 do 2 PSI, zgodnie ze wskazaniami czujnika ciśnienia. Przenieś plastry na środek 3,5-centymetrowej szalki Petriego zawierającej 2 mililitry wstępnie podgrzanego CIMM.

Następnie umieść szalkę Petriego na stoliku do mikroiniekcji, który został wstępnie podgrzany do 37 stopni Celsjusza. Załadować pipetę do mikroiniekcji 1,4 do 1,6 mikrolitra roztworu do mikroiniekcji za pomocą plastikowej pipety z długą końcówką i włożyć pipetę do mikroiniekcji do uchwytu na pipetę.

Używając najmniejszego powiększenia mikroskopu, ustaw ostrość wycinka i skieruj mikropipetę do tego pola view, tak aby była skupiona na tej samej płaszczyźnie co tarcza plasterka. Przełącz wyjście mikroskopu na kamerę, aby zobaczyć pole widzenia i aplikację.

Kliknij przycisk powiększenia w lewym górnym rogu interfejsu, aby rozpocząć kalibrację urządzenia. Gdy w oknie pojawi się monit o wybranie powiększenia, wybierz "10x" i naciśnij "OK". Oprogramowanie zakłada, że wewnętrzna soczewka obiektywu ma powiększenie 10x. Ponownie ustaw ostrość końcówki pipety za pomocą pokrętła mikrometrycznego mikroskopu i kliknij końcówkę pipety kursorem.

Następnie naciśnij przycisk "krok 1.1" i naciśnij "OK" w wyskakującym okienku. Pipeta przesunie się w kierunku Y. Kliknij końcówkę pipety i naciśnij przycisk "krok 1.2". Na koniec wpisz "45" w polu "Kąt pipety" i naciśnij "Ustaw kąt". Wprowadź żądane parametry do panelu "Automatyczne sterowanie mikroiniekcją" i ustaw prędkość na "100%". Po zakończeniu kliknij "Ustaw wartości".

Kliknij przycisk "Rysuj krawędź" i przeciągnij kursor wzdłuż żądanej trajektorii w wyskakującym okienku, aby zdefiniować trajektorię wstrzykiwania. W przypadku neuronów mikroiniekcyjnych należy celować w podstawową stronę kresomózgowia. Przesuń pipetę na początek linii i kliknij jej końcówkę. Następnie kliknij "Uruchom trajektorię", aby rozpocząć mikrowstrzykiwanie. Powtórzyć ten krok dla każdej docelowej płaszczyzny wstrzyknięcia.

10:05

Mikroiniekcja mózgu gryzoni w celu zbadania molekularnych substratów umotywowanego zachowania

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

07:40

Urządzenia mikrostrukturalne do zoptymalizowanej mikroiniekcji i obrazowania larw danio pręgowanego

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

06:32

Mikroiniekcja DNA do zawiązków ocznych w zarodkach Xenopus laevis i obrazowanie GFP wyrażającego altanki aksonalne wzrokowe w nienaruszonych, żywych kijankach Xenopus

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

10:41

Organotypowy test warstwowy do obrazowania poklatkowego migracji neuronów w mózgu po urodzeniu w wysokiej rozdzielczości

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

04:35

Szybkie podejście do obrazowania fluorescencyjnego w wysokiej rozdzielczości w półgrubych wycinkach mózgu

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

05:43

Elektroporacja pojedynczych komórek w organotypowych kulturach wycinków mózgu: technika in vitro dostarczania plazmidów do docelowych neuronów w wycinkach hipokampa mózgu

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

11:24

Celowane znakowanie neuronów w specyficznej funkcjonalnej mikrodomenie kory nowej poprzez połączenie sygnału wewnętrznego i obrazowania dwufotonowego

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

13:33

Poklatkowe obrazowanie konfokalne migrujących neuronów w organotypowej kulturze warstwowej embrionalnego mózgu myszy przy użyciu elektroporacji in utero

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:52

Zmodyfikowana metoda rurki rolkowej do precyzyjnie zlokalizowanego i powtarzalnego obrazowania przerywanego podczas długotrwałej hodowli wycinków mózgu w systemie zamkniętym

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:50

Ex Utero Elektroporacja i organotypowe kultury warstwowe embrionalnych mózgów myszy do obrazowania na żywo migrujących interneuronów GABA-ergicznych

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

Ostatnia aktualizacja: 1 sierpnia 2026