Wstrzyknięcie periviteliny opartej na wektorze lentiwirusowym: metoda transdukcji interesującego genu do zapłodnionych jednokomórkowych oocytów myszy

0 wyświetleń4:16 min • July 8th, 2025

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Aby wykonać transfekcję, weź specjalistyczną komorę zawierającą świeżo zapłodnione jaja myszy zawieszone w kropli odpowiedniego podłoża. Na tym etapie komórka jajowa zawiera duży centralny oocyt zawierający zarówno przedjądrze ojcowskie, jak i matczyne.

Oocyt jest pokryty bogatą w glikoproteiny osłoną przejrzystą, otoczoną ściśle ułożonymi skupiskami komórek wzgórka osadzonych w bogatej w kwas hialuronowy macierzy zewnątrzkomórkowej. Teraz potraktuj jaja enzymem hialuronidazą, który trawi kwas hialuronowy. To dysocjuje komórki wzgórka, ostatecznie odsłaniając osłonkę przejrzystą otaczającą oocyt.

Umieść pojedynczy leczony oocyt w pobliżu końcówki pipety trzymającej i zastosuj nacisk ssania, aby ograniczyć jego położenie. Weźmy igłę do mikroiniekcji o wąskim otworze zawierającą zmodyfikowaną zawiesinę wektora lentiwirusowego przenoszącą transgen zamknięty w otoczce wirusa. Te retrowirusy mają wrodzoną zdolność do integracji z genomem gospodarza.

Następnie przebij igłę przez osłonkę przejrzystą, aby dotrzeć do przestrzeni perivitelinowej - przestrzeni między najbardziej zewnętrzną osłoną przejrzystą a najbardziej wewnętrzną błoną plazmatyczną. Wprowadzić zawiesinę wektora lentiwirusowego do przestrzeni periviteliny i inkubować, aby ułatwić transdukcję - proces transferu genetycznego za pośrednictwem wirusa.

Wektor wirusowy łączy się z błoną oocytów, umożliwiając uwolnienie transgenicznego RNA do cytoplazmy oocytów, które z kolei ulega odwrotnej transkrypcji na dwuniciowe DNA. Ostatecznie DNA integruje się w określonych loci w genomie gospodarza, co prowadzi do ekspresji transgenu.

W ramach przygotowań odwirować przygotowaną zawiesinę wektora lentiwirusowego o masie 160 g przez 2 minuty w celu osadzenia szczątków często obecnych w zamrożonym bulionie lentiwirusowym. W komorze bezpieczeństwa klasy II przenieść supernatant do nowej probówki o pojemności 0,5 mililitra. Następnie załaduj 1 mikrolitr supernatantu do pipety iniekcyjnej, a następnie przymocuj pipetę iniekcyjną do mikromanipulatora po prawej stronie, a pipetę przytrzymującą do mikromanipulatora po lewej stronie.

Teraz dozuj 8 mikrolitrów pożywki M2 na środku szkiełka depresyjnego i przykryj lekkim olejem parafinowym, aby uniknąć parowania. Następnie umieść 20 jaj w płytkich miejscach w kropli, nie tworząc bąbelków. Następnie upewnij się, że końcówka pipety iniekcyjnej jest otwarta. Jeśli nie, postukaj w pipetę iniekcyjną pipetą przytrzymującą, aby ją otworzyć, a następnie ustaw wtryskiwacz na 20-sekundowe wstrzyknięcia.

Teraz, używając pipety podtrzymującej i ręcznego nacisku, odessaj zapłodnioną komórkę jajową, która zawiera dwa przedjądrza i dwa ciała polarne. Następnie, za pomocą pipety do wstrzykiwań, wstrzyknąć przestrzeń okołojajową komórki jajowej.

Nie dotykaj błony plazmatycznej. Dostosuj ciśnienie tak, aby przestrzeń okołowitelinowa była wypełniona roztworem. Ciśnienie nie powinno przekraczać 600 hektarów. Natychmiast po wstrzyknięciu 20 jaj należy przenieść partię do kąpieli z podgrzanym podłożem M16 i inkubować je przez co najmniej 30 minut przed implantacją.

12:40

Wysokoprzepustowe mikroiniekcje zygot jeżowców

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

06:03

Wspomagane laserowo dostarczanie genów lentiwirusowych do zapłodnionych jaj myszy

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:07

Wytwarzanie transgenicznych szczurów przy użyciu podejścia wektora lentiwirusowego

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

22:02

Transfer genów do rozwijającego się ucha wewnętrznego myszy za pomocą elektroporacji in vivo

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

03:31

Wspomagane laserowo dostarczanie genów lentiwirusowych: technika przenikania zapłodnionych jaj myszy w celu ułatwienia dostarczania genów lentiwirusowych

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:06

Stereotaktyczne wstrzyknięcie lentiwirusów eksprymujących mikroRNA do regionu CA1 hipokampa myszy i ocena wyniku behawioralnego

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

12:04

Inżynieria genomu myszy przy użyciu nukleaz projektanta

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

08:43

Podejście oparte na utracie i wzmocnieniu funkcji w celu zbadania determinantów wczesnego losu komórek w preimplantacyjnych zarodkach myszy

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

10:19

Generowanie genetycznie zmodyfikowanych myszy poprzez mikroiniekcję oocytów

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

10:21

Produkcja transgenicznych myszy za pośrednictwem lentiwirusa: prosta i wysoce skuteczna metoda bezpośredniego badania założycieli

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

Ostatnia aktualizacja: 15 sierpnia 2026