Barwienie czerwienią nilową: technika wykrywania i ilościowego oznaczania wewnątrzkomórkowych obojętnych lipidów w algach

0 wyświetleń3:32 min • July 8th, 2025

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Glony to wodne organizmy fotosyntetyzujące, które wytwarzają różnorodne lipidy, z których neutralne lipidy są niezbędne do produkcji biodiesla.

Aby wykryć i określić ilościowo obojętne lipidy, wymieszaj optymalną objętość zawiesiny glonów i etanolu w czarnej płytce do mikromiareczkowania. Ściana komórkowa i błona glonów, które zapobiegają wnikaniu większości plam, stają się przepuszczalne pod wpływem etanolu. Następnie połącz etanol z rozpuszczalnym w tłuszczach barwnikiem fluorescencyjnym - czerwienią nilową. Dodaj tę mieszaninę do studni zawierającej glony.

Umieścić płytkę do mikromiareczkowania w spektrofotometrze. Ustaw program, który zapewnia inkubację z przerywanym wytrząsaniem, aby ułatwić interakcję między barwnikiem a algami.

Ponieważ czerwień nilowa jest hydrofobowa, nie może łatwo przejść przez cytoplazmę. Rozpuszczalniki, takie jak etanol, w połączeniu z czerwienią nilową mobilizują barwnik i pomagają mu dotrzeć do ciał lipidowych rozproszonych w cytoplazmie. Czerwień nilowa następnie wnika do ciał lipidowych i tam się rozpuszcza, barwiąc w ten sposób lipidy.

Komórki z niedoborem lipidów pojawiają się jako fluorescencyjne pierścienie z ciemnymi ciałami, podczas gdy komórki bogate w lipidy wykazują jasną pomarańczowo-czerwoną poświatę, w której gromadzą się ciała lipidowe.

Po zabarwieniu komórek wystaw je na działanie długości fali, która maksymalnie pobudza neutralne lipidy. Zapisać uzyskaną fluorescencję i skorelować ją z krzywą kalibracyjną w celu ilościowego określenia obojętnych lipidów w badanych próbkach.

Do ilościowego oznaczania fluorometrycznego należy przygotować wszystkie próbki glonów o tym samym stężeniu biomasy i w taki sam sposób, jak wzorce użyte w pomiarze. W tym celu należy zawiesić wstępnie wysuszone próbki w odpowiedniej ilości buforu fosforanowego. W razie potrzeby należy użyć homogenizatora, aby ułatwić ponowne zawieszenie wysuszonych komórek glonów.

Dla każdej próbki wymieszać 80 mikrolitrów przygotowanego 30% roztworu etanolu, 10 mikrolitrów przygotowanego roztworu czerwieni nilowej i 10 mikrolitrów zawiesiny glonów w jednym dołku na 96-dołkowej płytce. Aby właściwie uwzględnić zmienność pomiaru fluorescencji, należy wykonać pięć powtórzeń każdej próbki. Następnie należy przeprowadzić dwupunktową krzywą kalibracyjną z wcześniej przygotowanymi wzorcami, aby uwzględnić codzienne zmiany w przyrządzie i przygotowaniu.

Aby wykonać pomiary fluorescencji w spektrofotometrze z wielodołkowym czytnikiem płytek, ustaw parametry tak, aby wstrząsały z prędkością 1200 obr./min i orbitowały na 3 milimetry przez 30 sekund, a następnie inkubowały w temperaturze 40 stopni Celsjusza przez 10 minut. Kolejne wstrząsy z prędkością 1200 obr./min i orbita 3 milimetrów przez 30 sekund oraz rejestracja fluorescencji, ze wzbudzeniem na 530 nanometrach i emisją na 604 nanometrach. Następnie rozpocznij bieg. Ostatnim krokiem jest przeliczenie pomiarów fluorescencji na zawartość oleju, korzystając z wyników z wzorców wewnętrznych.

09:10

Protokół eksperymentalny produkcji biodiesla z izolacją alkenonów jako produktów ubocznych z komercyjnej biomasy glonów Isochrysis

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

10:22

Oznaczanie indeksu lipidowego metodą odzyskiwania ciekłej fluorescencji w patogenie grzybowym Ustilago maydis

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

11:08

Hodowla zielonych mikroalg w fotobioreaktorach z kolumnami bąbelkowymi i test na obecność obojętnych lipidów

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

03:34

Barwienie czerwienią nilową C. elegans: metoda wizualizacji kropelek lipidów u zwierząt utrwalonych

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

02:44

Barwienie czerwienią olejową O: technika barwienia obojętnych lipidów w hepatocytach w celu wykrycia stłuszczenia wątroby in vitro

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

16:07

Biochemiczna i wysokoprzepustowa ocena mikroskopowa masy tłuszczowej w Caenorhabditis elegans

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

07:44

Analiza zawartości i składu kwasów tłuszczowych w mikroalgach

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

10:56

Prosty i szybki protokół pomiaru neutralnych lipidów w komórkach glonów za pomocą fluorescencji

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

07:46

Kwantyfikacja obfitości lipidów i ocena rozmieszczenia lipidów w Caenorhabditis elegans za pomocą barwienia czerwienią nilową i czerwienią olejową O

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

05:54

Obrazowanie autofluorescencyjne w celu oceny fizjologii czerwonych alg

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

Ostatnia aktualizacja: 15 sierpnia 2026