JoVE Encyclopedia of Experiments
Techniki biologiczne
0 wyświetleń • 3:37 min • July 8th, 2025
Osteoblasty to komórki kościotwórcze, które wydzielają małe pęcherzyki do swojej macierzy zewnątrzkomórkowej, ECM. Pęcherzyki te, zwane pęcherzykami macierzowymi, są wyposażone w transportery błonowe i enzymy, które umożliwiają wejście jonów wapniowych i fosforanowych, tworząc w nich kryształy mineralne. Gdy kryształy się gromadzą, przebijają się przez błonę pęcherzyków, tworząc zmineralizowane guzki w ECM, składające się na gęstość mineralną kości.
Aby zobrazować mineralizację, zacznij od komórek osteoblastów na biokompatybilnym rusztowaniu w odpowiednim pożywce wzrostowej. Osteoblasty przyczepiają się do rusztowania i wykorzystują czynniki wzrostu z pożywki do wydzielania pęcherzyków macierzy, które następnie tworzą zmineralizowane guzki w ECM.
Odessać pożywkę hodowlaną i przepłukać komórki, aby usunąć wszelkie ślady pożywki. Potraktuj komórki roztworem formaliny, który indukuje sieciowanie, utrwalanie i zachowanie struktury tkanki ECM. Umyj komórki, aby usunąć pozostałą formalinę.
Następnie dodaj roztwór barwiący Alizarin Red i inkubuj kulturę. Cząsteczki barwnika wiążą się ze zmineralizowanym guzkiem i łączą się z wapniem, kluczowym minerałem kości, tworząc duże barwione kompleksy.
Odessać roztwór barwiący i dokładnie umyć, aby usunąć niezwiązany barwnik. Obserwowane pod mikroskopem bogate w wapń złoża mineralne pojawiają się jako jaskrawoczerwone guzki w ECM, co wskazuje na mineralizację przez osteoblasty.
Odessać pożywkę hodowlaną z pierwotnych osteoblastów, 14 dni po dodaniu pożywki do mineralizacji osteogennej. Spłucz dwukrotnie 0,5 mililitra 1X PBS. Następnie utrwal komórki, dodając 0,5 mililitra 10% buforowanego roztworu formaliny i inkubując w temperaturze pokojowej przez 10 minut. Po 10 minutach odessać 10% buforowaną formalinę za pomocą jednorazowej pipety i przemyć dwukrotnie 0,5 mililitra ultraczystej wody. Następnie dodaj 250 mikrolitrów 40-milimolowego roztworu barwiącego Alizarin Red S do utrwalonych osteoblastów i inkubuj płytkę w temperaturze pokojowej przez 10 minut na wytrząsarce z prędkością 100 wstrząsów na minutę.
Po inkubacji z roztworem barwiącym odessać roztwór barwiący jednorazową pipetą i spłukać 1 mililitrem ultraczystej wody. Powtórz ten krok od 5 do 10 razy, aż roztwór płuczący zejdzie klarowny, aby usunąć niespecyficzne przebarwienia. Po zaessaniu ostatniego prania dodaj 1 mililitr zimnego PBS i inkubuj płytkę w temperaturze pokojowej przez 10 minut na shakerze jak poprzednio. Następnie przenieś wybarwiony krążek fosforanu beta-trójwapniowego do nowej studzienki i zeskanuj płytki za pomocą skanera płaskiego, aby zarejestrować mineralizację.
Niniejszy artykuł omawia rolę osteoblastów w mineralizacji kości poprzez wydzielanie pęcherzyków macierzy. Szczegółowo opisano proces wizualizacji mineralizacji z wykorzystaniem barwienia Alizaryną Czerwoną.
Barwienie alizaryną czerwoną umożliwia ilościową ocenę mineralizacji pośredniczonej przez osteoblasty, która jest kluczowym punktem końcowym w przedklinicznych badaniach nad regeneracją kości oraz podczas screeningu biomateriałów. Technika ta wspiera walidację celu, zapewniając bezpośredni odczyt różnicowania osteogenicznego i dojrzewania macierzy pozakomórkowej. Pozwala ona na podejmowanie decyzji o kontynuowaniu lub przerwaniu badań (go/no-go) we wczesnej fazie odkrywania poprzez ograniczanie ryzyka związanego z hipotezami mechanistycznymi dotyczącymi szlaków kostwotwórczych.
Metoda ta wpisuje się w kontinuum odkryć – od walidacji celu, poprzez identyfikację związku wiodącego, aż po przedkliniczne badania skuteczności, w których mineralizacja służy jako funkcjonalny biomarker aktywności osteoblastów.
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Ostatnia aktualizacja: 22 sierpnia 2026