JoVE Encyclopedia of Experiments
Techniki biologiczne
0 wyświetleń • 4:14 min • July 8th, 2025
Aktywowane stresem fibroblasty serca odkładają nadmierną ilość kolagenu w uszkodzonych obszarach, stan zwany zwłóknieniem, który upośledza czynność serca.
Aby zobrazować zakres zwłóknienia, najpierw należy przeciąć bloki serca zatopione w parafinie. Umieść sekcje na slajdzie. Podgrzej szkiełko, aby stopić parafinę, pozwalając na przyleganie sekcji.
Zanurz szkiełko w ksylolu w celu odparafinowania tkanki. Potraktuj skrawki malejącą mocą alkoholu, aby ponownie nawodnić skrawki i pomóc w późniejszym wiązaniu wodnych składników plamy.
Inkubuj skrawki w kwaśnym utrwalaczu, który sieciuje białka, stabilizując strukturę tkanki. Spłucz wodą, aby usunąć resztki utrwalacza.
Zanurz szkiełko w roztworze hematoksyliny. Barwnik kationowy wiąże ujemnie naładowane DNA, barwiąc jądro na niebiesko. Spłucz wodą, aby usunąć nadmiar plamy.
Inkubuj szkiełko w kwasie Fuchsin-Ponceau, drobnocząsteczkowym barwniku anionowym, który oddziałuje z dodatnio naładowanymi białkami cytoplazmatycznymi i kolagenem, barwiąc je na czerwono. Potraktuj rozcieńczonym kwasem octowym, aby usunąć nadmiar plam.
Zanurzyć szkiełko w roztworze kwasu fosfomolibdenowego – pomarańczy G. Pomarańczowy G, drobnocząsteczkowy barwnik, barwi erytrocyty na pomarańczowo-czerwono. Kwas fosfomolibdynowy, kwas wielkocząsteczkowy, wydala drobnocząsteczkowe barwniki z kolagenu, czyniąc go bezbarwnym.
Inkubuj skrawki w jasnozielonym barwniku, którego cząsteczki wiążą włókna kolagenowe, barwiąc je na zielono. Pod mikroskopem zwłókniałe obszary wydają się zielone, co wskazuje na nadmierne odkładanie się kolagenu.
W tej procedurze należy przygotować skrawki tkanek o grubości pięciu mikronów z bloków parafinowych za pomocą ręcznego mikrotomu. Następnie wybarwić po jednym szkiełku z każdej sekcji serca dla każdego szczura barwieniem trichromowym Massona-Goldnera. W przypadku skrawków parafiny rozpuść chusteczki w temperaturze 60 stopni Celsjusza w piekarniku. Pod wyciągiem odparafinować je w ksylolu dwukrotnie, po 10 minut każdy.
Następnie nawodnij je w 100% etanolu, 95% etanolu, 70% etanolu, a następnie w wodzie destylowanej przez trzy minuty każde. W przypadku sekcji odparafinizowanych i kriosekcji utrwal je na noc w roztworze Bouina. Następnego ranka opłucz je pod bieżącą wodą z kranu przez 10 do 15 minut. Następnie ponownie spłucz wodą destylowaną.
Utrwalenie w Bouin jest najważniejszym krokiem do zapewnienia doskonałego barwienia Goldnera.
Inkubuj je w hematoksynie Mayera przez trzy minuty. Po 3 minutach wyjmij szkiełka i pozostaw je w wodzie destylowanej na pięć minut. Następnie inkubuj je w Fuchsinie z kwasem Ponceau przez pięć minut, a następnie spłukuj 1% kwasem octowym przez minutę.
Następnie inkubuj skrawki w kwasie fosfomolibdenowym Orange G przez jedną minutę, a następnie płucz je w 1% kwasie octowym przez jedną minutę. Inkubować w jasnozielonym barwniku przez 10 minut, a następnie płukać w 1% kwasie octowym przez minutę. Na koniec odwodnij sekcje w 70% etanolu przez 30 sekund, 95% etanolu przez 30 sekund i 100% etanolu przez pięć minut sekwencyjnie. Nałóż jedną kroplę żywicznego podłoża mocującego na skrawki tkanki, przykryj je szkiełkami nakrywkowymi i umieść do wyschnięcia.
Niniejszy artykuł omawia metodę wizualizacji włóknienia w tkance serca, koncentrując się w szczególności na nadmiernym odkładaniu kolagenu przez aktywowane stresem fibroblasty serca. Procedura obejmuje kilka technik barwienia, które pozwalają na uwidocznienie obszarów włóknienia pod mikroskopem.
Wizualizacja odkładania kolagenu w tkance serca umożliwia mechanistyczną weryfikację hipotez terapeutycznych związanych z włóknieniem. To podejście histologiczne wspomaga walidację celu poprzez dostarczanie ilościowych i powtarzalnych wyników przebudowy macierzy zewnątrzkomórkowej. Pozwala ono na właściwy dobór modeli przedklinicznych oraz selekcję projektów w procesie odkrywania leków w kardiologii.
Metoda ta wpisuje się w kontinuum od etapu odkryć do badań przedklinicznych, zapewniając histopatologiczne potwierdzenie modulacji celu w modelach chorób układu sercowo-naczyniowego.
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Ostatnia aktualizacja: 29 sierpnia 2026