JoVE Encyclopedia of Experiments
Techniki biologiczne
0 wyświetleń • 2:44 min • July 8th, 2025
Lignina jest ważnym składnikiem strukturalnym ściany komórkowej roślin. Jest to polimer składający się głównie z alkoholi syringylowych lub jednostek ligniny S i alkoholi gwajakylowych lub jednostek G-ligniny oraz niewielkiej populacji alkoholi para-kumarylowych zwanych jednostkami ligniny H.
Zawartość S-ligniny różni się w różnych wtórnych tkankach roślinnych. Występuje głównie w naczyniach i włóknach ksylarowych oraz włóknach międzypęczkowych, gdzie zapewnia wsparcie strukturalne.
Aby wykryć obecność S-ligniny, weź przekroje poprzeczne łodyg dwuliściennych zatopionych w agarozie w probówce. Odcinki łodygi należy kolejno traktować roztworem barwiącym nadmanganianu potasu, następnie rozcieńczonym kwasem solnym, a na koniec wodorotlenkiem amonu - słabą zasadą.
Podczas tego zabiegu ugrupowanie S-ligniny obecne w ścianie komórkowej ulega szeregowi zmian, aby ostatecznie wytworzyć produkt, który wydaje się czerwony.
Intensywność czerwonego zabarwienia jest mniejsza w komórkach ksylemu ze względu na obecność mniejszej ilości S-ligniny w porównaniu z włóknami międzypęczkowymi, które wydają się głębsze czerwone. Przenieś skrawki na szkiełko i zwizualizuj je pod mikroskopem świetlnym.
Zmienność intensywności czerwieni pomaga zrozumieć względny stosunek S-ligniny w zdrewniałych tkankach roślinnych.
W przypadku barwienia Maule przenieś sekcje łodygi do probówki mikrowirówkowej. Dodaj 1 mililitr 0,5% roztworu nadmanganianu potasu do probówki zawierającej sekcje. Delikatnie odpipetować 0,5% roztwór nadmanganianu potasu w górę i w dół, najlepiej nie naruszając sekcji.
Po 2-minutowej inkubacji i powtórzeniu pipetowania odstawić probówkę do mikrowirówki, aż wszystkie sekcje się uspokoją. Za pomocą pipety o pojemności 1 mililitra wyciągnij 700 mikrolitrów 0,5% roztworu nadmanganianu potasu. Dodaj 700 mikrolitrów wody destylowanej, aby wypłukać nadmanganian potasu. Powtórz trzy do czterech razy lub do momentu, gdy roztwór wodny pozostanie klarowny.
Po wylaniu wody szybko dodaj 1 mililitr 3% kwasu solnego, aż z sekcji zostanie usunięty ciemnobrązowy kolor. Może się to zdarzyć w ciągu 3 do 5 minut lub może wymagać dwóch prań po 5 minut każde. Odpipetować cały 3% roztwór kwasu solnego i natychmiast dodać 1 mililitr stężonego roztworu wodorotlenku amonu przed obrazowaniem w jasnym świetle.
Niniejszy artykuł omawia znaczenie ligniny, a w szczególności ligniny typu S, w ścianach komórkowych roślin oraz jej rolę w zapewnianiu wsparcia strukturalnego. Szczegółowo opisano metodę barwienia umożliwiającą wizualizację ligniny typu S w tkankach roślinnych, zwracając uwagę na różnice w intensywności barwienia pomiędzy poszczególnymi typami komórek.
Ilościowa charakterystyka rozkładu ligniny w tkankach roślinnych ma kluczowe znaczenie dla zespołów biofarmaceutycznych projektujących cechy biomasy lub optymalizujących właściwości surowca. Technika barwienia Maule pozwala na precyzyjną wizualizację lokalizacji ligniny syringylowej (S-ligniny), wspierając odkrycia oparte na hipotezach oraz ograniczanie ryzyka mechanistycznego w procesach badawczo-rozwojowych opartych na roślinach. Możliwość ta umożliwia wczesną walidację celów oraz selekcję portfolio w programach ulepszania cech.
Protokół barwienia metodą Maule jest wykorzystywany w początkowych fazach odkrywania i przesiewania w ramach procesów inżynierii cech roślin, stanowiąc pomost między weryfikacją hipotez a ilościowym fenotypowaniem.
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Ostatnia aktualizacja: 29 sierpnia 2026