Barwienie czerwienią Kongo: technika wizualizacji osadów celulozy w sekcjach łodyg roślin

0 wyświetleń2:19 min • July 8th, 2025

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Celuloza jest nierozgałęzionym polimerem jednostek β-glukozy połączonych wiązaniem β-1→4 i ułożonych równolegle za pomocą międzycząsteczkowych wiązań wodorowych.

Celuloza służy jako główny składnik strukturalny ściany komórkowej rośliny, nadając komórkom kształt i sztywność oraz ułatwiając wzrost i rozwój roślin. Proporcja celulozy w ścianie komórkowej różni się znacznie w całej roślinie, w zależności od typu komórki i etapu wzrostu.

Aby uwidocznić osadzanie się celulozy w łodydze, weź cienkie przekroje odcinków łodygi osadzonych w agarozie.

Dodaj czerwony barwnik fluorescencyjny Kongo i inkubuj sekcje.

Cząsteczki czerwieni kongijskiej wnikają w ścianę komórkową i tworzą wiązania wodorowe z grupami hydroksylowymi celulozy, ulegając w ten sposób adsorbcji na polimerze. To nadaje czerwony kolor naskórkowi, korze i rdzeniowi.

Cząsteczki barwnika dyfundują również w złożonych ścianach komórkowych ksylemu i włókien międzypęczkowych, przekraczając sztywną barierę ligniny, nadając w ten sposób również tym tkankom czerwony kolor.

Teraz spłucz sekcje w wodzie, aby usunąć nadmiar plamy. Przenieś skrawki na szkiełko mikroskopowe i umieść szkiełko nakrywkowe.

Podczas wizualizacji pod mikroskopem fluorescencyjnym naskórek, kora, rdzeń centralny, ksylem i włókna międzypęczkowe wydają się czerwone, co odpowiada zawartości celulozy.

W przypadku barwienia czerwienią Kongo przenieś sekcje łodygi do probówki mikrowirówki i dodaj 1 mililitr 0,5% roztworu czerwieni Kongo. Delikatnie odpipetować 0,5% roztwór czerwieni kongijskiej w górę i w dół, nie naruszając sekcji, przed inkubacją i umyciem skrawków zgodnie z opisem w protokole tekstowym. Delikatnie odpipetuj skrawki do odciętej końcówki pipety i na szkiełko mikroskopowe, a następnie przykryj je szkiełkiem nakrywkowym. Obserwuj próbki na szkiełku mikroskopowym pod wpływem wzbudzenia światłem niebieskim za pomocą filtra emisyjnego 560 nm.

09:27

Kwantyfikacja w wysokiej rozdzielczości akumulacji krystalicznej celulozy w korzeniach rzodkiewnika w celu monitorowania specyficznych tkankowo modyfikacji ściany komórkowej

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

07:51

Połączenie obrazowania ramanowskiego i analizy wielowymiarowej w celu wizualizacji ligniny, celulozy i hemicelulozy w ścianie komórkowej rośliny

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

12:34

Oznaczanie zawartości celulozy krystalicznej w biomasie roślinnej metodą Updegraff

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

01:20

Barwienie czerwienią Kongo w celu uwidocznienia włókienek amyloidowych w ścianach naczyń mózgowych

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

03:03

Metoda podwójnego barwienia: technika wizualizacji interakcji roślina-grzyb przy użyciu czerwieni rutenowej i laktofenolu cotton blue

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

02:30

Barwienie Wiesnera do wizualizacji ligniny: technika barwienia złogów ligniny obecnych w łodygach Arabidopsis thaliana

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

02:44

Barwienie ligniny: technika charakteryzowania dystrybucji ligniny w skrawkach łodyg Arabidopsis thaliana

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

02:37

Barwienie Calcofluor White: prosta metoda wizualizacji fluorescencji indukowanej promieniowaniem UV osadów celulozy w ścianach komórkowych skrawków łodyg roślin dwuliściennych

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

10:39

Barwienie histochemiczne drugorzędowych elementów ściany komórkowej Arabidopsis thaliana

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:33

Perspektywa techniczna we współczesnych badaniach słojów drzew - jak pokonać wyzwania dendroekologiczne i anatomiczne drewna

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

Ostatnia aktualizacja: 15 sierpnia 2026