$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
DFE lub DsRed-2F5-Epitope to rekombinowane białko fuzyjne składające się z DsRed, białka fluorescencyjnego i epitopu 2F5 - segmentu antygenu glikoproteinowego otoczki HIV-1. Ten epitop ma wysokie powinowactwo do swojego paratopu - regionu w regionie determinującym komplementarność przeciwciała monoklonalnego 2F5.
Aby oczyścić przeciwciała monoklonalne 2F5 z surowej próbki, należy pobrać kolumnę wypełnioną porowatymi kulkami żywicy zawierającymi na swojej powierzchni unieruchomione ligandy powinowactwa DFE. Przepłukać kolumnę odpowiednim buforem równoważącym, aby utrzymać pH i zapobiec niespecyficznym interakcjom między składnikami próbki a żywicą w kolejnych etapach.
Załadować do kolumny próbkę zawierającą docelowe przeciwciała monoklonalne 2F5. Stopniowo przeciwciała w próbce zaczynają przepływać przez kolumnę lub fazę stacjonarną.
Podczas przepływu przeciwciała oddziałują odwracalnie z ligandami powinowactwa DFE unieruchomionymi w fazie stacjonarnej. W tych interakcjach paratop przeciwciała 2F5 wiąże się specyficznie ze swoim komplementarnym epitopem na ligandzie DFE.
Przemyć kolumnę buforem równoważącym w celu usunięcia niepożądanej próbki związanej niespecyficznie z kolumną. Przepuścić bufor elucyjny przez kolumnę.
Wysoka siła jonowa buforu destabilizuje interakcje między ligandami DFE a przeciwciałami monoklonalnymi 2F5. W konsekwencji przeciwciała monoklonalne eluują się jako frakcje z kolumny.
Zbierz oczyszczone frakcje przeciwciał i przechowuj je do dalszych zastosowań.
Najpierw przygotuj 100 mililitrów oczyszczonego ekstraktu roślinnego zawierającego 2F5 lub supernatantu z preferowanego komórkowego systemu ekspresji, który również zawiera 2F5. Następnie należy przygotować bufor równowagowy i bufor elucyjny o wysokiej sile jonowej, zgodnie z opisem w protokole tekstowym. Przepłukać system chromatograficzny.
Zamontować kolumnę powinowactwa DFE w systemie chromatograficznym i zrównoważyć z 5 CV buforu równowagi przy natężeniu przepływu 1 mililitra na minutę. Monitoruj absorbancję UV przy 280 nanometrach. Następnie załadować 80 mililitrów oczyszczonego ekstraktu roślinnego lub supernatantu na kolumnę z natężeniem przepływu 0,5 mililitra na minutę, aby zagwarantować czas kontaktu wynoszący 2 minuty. Zbierz próbki przepływowe w frakcjach 2-mililitrowych w celu rekonstrukcji krzywej przełomowej.
Próbki przepływowe należy przechowywać w temperaturze 4 stopni Celsjusza, jeżeli natychmiastowa analiza próbki nie jest możliwa. Następnie przemyć kolumnę 6 CV buforu równoważącego. Zbierz próbkę na początku, w środku i na końcu prania. Eluować mAb 2F5 za pomocą 5 objętości buforu elucyjnego o wysokiej sile jonowej. Zbierz frakcję DFE, gdy sygnał UV o długości 280 nanometrów wzrośnie do 5 jednostek miliabsorbancji powyżej linii podstawowej.