Test aktywności fosfolipazy: Test dyfuzji żelu w celu określenia aktywności fosfolipazy w surowym ekstrakcie jadu z Anthopleura dowii

0 wyświetleń3:16 min • July 8th, 2025

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Fosfolipidy to złożone lipidy zawierające grupy fosforanowe. Cząsteczki te są hydrolizowane przez enzym zwany fosfolipazą.

Aby wykonać test aktywności fosfolipazy, weź emulsję z żółtka jaja bogatą w fosfolipidy, które działają jako substrat dla enzymu. Żółtko dodajemy do ciepłego roztworu agarozy zawierającego chlorek sodu, który zwiększa stabilność białek żółtka podczas kolejnych etapów.

Uzupełnij mieszaninę chlorkiem wapnia i barwnikiem fluorescencyjnym - rodaminą. Wlej mieszaninę na szalkę Petriego. Po zestaleniu fosfolipidy żółtka pozostają jednorodnie rozmieszczone w matrycy żelu agarozowego.

Za pomocą rurki utwórz w żelu odpowiednio oddalone studzienki. Dodać do studzienek surowe ekstrakty białkowe zawierające fosfolipazę o różnych stężeniach. Inkubować płytkę w temperaturze fizjologicznej.

Fosfolipaza z ekstraktu dyfunduje promieniście do żelu. Jony wapnia w żelu wiążą się z fosfolipazą, aktywując enzymy. Enzym ten rozszczepia fosfolipidy, wytwarzając wolne kwasy tłuszczowe. Cząsteczki rodaminy w żelu tworzą kompleks z uwolnionymi kwasami tłuszczowymi.

Po oświetleniu światłem ultrafioletowym obserwuj pojawienie się fluorescencyjnych halo wokół studni. Halo potwierdza obecność aktywności enzymu. Przy wyższych stężeniach fosfolipazy cząsteczki enzymu dyfundują dalej, zwiększając średnicę halo.

Umyj jedno jajo kurze z 1% SDS w wodzie destylowanej i oddziel żółtko od białka jaja w sterylnych warunkach.

Przygotuj roztwory A, B, C i D. Dodaj 500 mikrolitrów roztworów A i C do roztworu B i 100 mikrolitrów roztworu D. Wymieszaj je i wlej 25 mililitrów do każdej szalki Petriego. Poczekaj, aż roztwór zestali się w sterylnych warunkach i zrób dołki o średnicy około 2 do 3 milimetrów za pomocą cienkiej rurki.

Dodać w sumie 20 mikrolitrów buforu fosforanowego jako kontrolę ujemną w jednym studzience i 20 mikrolitrów oznaczonej fosfolipazy jako kontrolę pozytywną w innym studzience.

Umieść różne ilości surowego białka ekstraktu - 5, 15, 25, 35 i 45 mikrogramów w pozostałych studzienkach, każdy w końcowej objętości 20 mikrolitrów. Inkubować w temperaturze 37 stopni Celsjusza przez 20 godzin.

14:25

Metoda skutecznego ponownego fałdowania i oczyszczania domeny wiążącej ligand chemoreceptora

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:47

Oznaczanie swoistości proteazy w ekstraktach tkanek myszy za pomocą spektrometrii mas MALDI-TOF: manipulowanie PH w celu wywołania zmian swoistości

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

08:02

Laboratoryjna chromatografia powinowactwa do immobilizowanych metali, rekonstytucja i oznaczanie metaloenzymu znakowanego polihistydyną dla laboratorium licencjackiego

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

10:46

Analiza funkcjonalna receptorów sprzężonych z białkiem G u komarów (Aedes aegypti) i kleszczy (Rhipicephalus microplus) z wykorzystaniem testu bioluminescencji wapniowej

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

10:25

Ekstrakcja jadu i mikrodysekcji gruczołów jadowych od pająków do analiz proteomicznych i transkryptomicznych

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:33

In vitro Test do pomiaru aktywności metylotransferazy fosfatydyloetanoloaminy

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

08:59

Definiowanie specyficzności substratowej dla kandydatów na lipazę i fosfolipazę

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:52

Test fluorescencyjny aktywności scramblazy fosfolipidowej

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

08:30

Wykrywanie aktywności fosfolipazy C w homogenacie mózgu pszczoły miodnej

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

12:12

Identyfikacja aktywności hemolitycznej i fosfolipazy w surowych ekstraktach z ukwiałów morskich za pomocą prostych testów biologicznych

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

Ostatnia aktualizacja: 22 sierpnia 2026