Test utleniania substratu w hodowanych komórkach: Test in vitro do ilościowego określania utleniania substratu w komórkach poprzez pomiar sygnałów radioaktywnych z uwięzionego CO2

0 wyświetleń4:25 min • July 8th, 2025

W komórkach aktywnych metabolicznie substraty zawierające węgiel są utleniane w wyniku szeregu reakcji biochemicznych w celu wytworzenia energii i uwolnienia dwutlenku węgla jako produktu ubocznego.

Aby określić szybkość utleniania substratu, zacznij od przylegającej hodowli pożądanych niezróżnicowanych komórek. Uzupełnij komórki w pożywce odpowiednim substratem zawierającym radioaktywny węgiel czternaście w szkielecie i inkubuj.

Komórki zużywają substrat i utleniają go, aby uwolnić znakowany radioaktywnie dwutlenek węgla, który dyfunduje z komórek do otaczającego środowiska.

Przenieść to podłoże do zespołu wychwytującego gaz zawierającego kwas nadchlorowy w celu wygaszenia reakcji. Ta probówka zawiera bibułę filtracyjną nasączoną wodorotlenkiem sodu umieszczoną wewnątrz nasadki probówki. Zamknij nakrętkę i rozpocznij inkubację.

Podczas inkubacji dwutlenek węgla w postaci gazowej uwalnia się do wnętrza probówki. Wodorotlenek sodu absorbuje znakowany radioaktywnie dwutlenek węgla, zatrzymując go w bibule filtracyjnej. Przenieść tę bibułę filtracyjną do fiolki zawierającej koktajl scyntylacyjny i umieścić ją w liczniku scyntylacyjnym cieczy.

Wewnątrz licznika znakowany radioaktywnie węgiel ulega rozpadowi radioaktywnemu, emitując wysokoenergetyczne cząstki beta. Cząstki te są absorbowane przez składniki koktajlu scyntylacyjnego i emitują impulsy świetlne, które są obliczane przez licznik scyntylacyjny.

Ilość wykrytej radioaktywności koreluje z szybkością utleniania substratu w komórkach.

Umyj komórki w dodatkowych studzienkach, dwukrotnie za pomocą DPBS. Oddziel komórki za pomocą 0,25% trypsyny-EDTA. Ponownie zawiesić 20 mikrolitrów strawionych komórek w DPBS z 20 mikrolitrami pomarańczy akrydynowej i roztworu barwnika jodku propidyny. Określ liczbę aktywnych komórek za pomocą automatycznego licznika komórek i zapisz liczbę.

Umyć komórki w studzienkach testowych dwukrotnie za pomocą DPBS. Dodać 500 mikrolitrów gorącej pożywki do każdego dołka testowego w kapturze do hodowli tkankowych wyznaczonym przez RAM. Po uszczelnieniu płytki parafilmem inkubować komórki w inkubatorze wyznaczonym przez pamięć RAM w temperaturze 37 stopni Celsjusza przez cztery godziny.

Podczas inkubacji pokrój bibułę filtracyjną na okrągłe kawałki nieco większe niż obszar wewnątrz nasadki 1,5-mililitrowej probówki do mikrowirówki i włóż papier ciasno do nasadki. Dodać 200 mikrolitrów 1 molowego kwasu nadchlorowego do każdej probówki i 20 mikrolitrów wodorotlenku sodu do bibuły filtracyjnej umieszczonej wewnątrz nakrętki.

Po inkubacji komórek przenieś 400 mikrolitrów pożywki hodowlanej z każdej studzienki do przygotowanych probówek i natychmiast zamknij nakrętki. Pozostaw probówki w stojaku na probówki w temperaturze pokojowej na 1 godzinę.

Równolegle, podczas inkubacji, ustaw fiolkę scyntylacyjną dla każdej probówki i napełnij ją 4 mililitrami płynu scyntylacyjnego. Przenieś każdy kawałek bibuły filtracyjnej do fiolki scyntylacyjnej i inkubuj w temperaturze pokojowej przez 30 minut.

Wykonaj testy wycierania okapu do hodowli tkankowej, łaźni wodnej, lodówki, inkubatora, zlewu, ziemi i dowolnego innego obszaru roboczego pod kątem potencjalnego zanieczyszczenia pamięci RAM. Chusteczki papierowe należy włożyć do fiolek scyntylacyjnych zawierających płyn scyntylacyjny.

Zmierz radioaktywność węgla-14 w fiolkach scyntylacyjnych za pomocą licznika scyntylacji i zapisz wyniki odczytu. W razie potrzeby należy odkazić środowisko pracy zgodnie z wytycznymi dotyczącymi bezpieczeństwa radiacyjnego.

12:11

Oznaczanie utleniania i lipogenezy kwasów tłuszczowych w pierwotnych hepatocytach myszy

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

10:01

Pomiar produkcji dwutlenku węgla z substratów znakowanych radioaktywnie u Drosophila melanogaster

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

12:24

Metody oznaczania szybkości utleniania glukozy i kwasów tłuszczowych w izolowanym sercu szczura pracującego

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

03:20

Test XTT: test kolorymetryczny do oceny żywotności komórek i aktywności mitochondriów

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

03:28

Test obrazowania za pomocą sondy fluorescencyjnej: technika wizualizacji stresu oksydacyjnego w reaktywnych formach tlenu Hodowane komórki organoidów jelitowych poddane działaniu induktora

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

10:44

Spektrometria mas i podejścia oparte na luminogenice w celu scharakteryzowania kompetencji metabolicznych fazy I kultur komórkowych in vitro

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

06:10

Ocena utleniania komórkowego przy użyciu subkomórkowego białka zielonej fluorescencji wrażliwego na redoks specyficznego dla przedziału subkomórkowego

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

06:17

Pomiar strumienia substratu mitochondrialnego w rekombinowanych komórkach perfringolizyny O-permeabilizowanej

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

11:03

Pomiar β-oksydacji kwasów tłuszczowych w zawiesinie świeżo wyizolowanych hepatocytów myszy

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:43

Wykorzystanie analizatora strumienia metabolicznego komórek w czasie rzeczywistym do monitorowania bioenergetyki osteoblastów

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

Ostatnia aktualizacja: 29 sierpnia 2026