JoVE Encyclopedia of Experiments
Techniki biologiczne
0 wyświetleń • 4:25 min • July 8th, 2025
W komórkach aktywnych metabolicznie substraty zawierające węgiel są utleniane w wyniku szeregu reakcji biochemicznych w celu wytworzenia energii i uwolnienia dwutlenku węgla jako produktu ubocznego.
Aby określić szybkość utleniania substratu, zacznij od przylegającej hodowli pożądanych niezróżnicowanych komórek. Uzupełnij komórki w pożywce odpowiednim substratem zawierającym radioaktywny węgiel czternaście w szkielecie i inkubuj.
Komórki zużywają substrat i utleniają go, aby uwolnić znakowany radioaktywnie dwutlenek węgla, który dyfunduje z komórek do otaczającego środowiska.
Przenieść to podłoże do zespołu wychwytującego gaz zawierającego kwas nadchlorowy w celu wygaszenia reakcji. Ta probówka zawiera bibułę filtracyjną nasączoną wodorotlenkiem sodu umieszczoną wewnątrz nasadki probówki. Zamknij nakrętkę i rozpocznij inkubację.
Podczas inkubacji dwutlenek węgla w postaci gazowej uwalnia się do wnętrza probówki. Wodorotlenek sodu absorbuje znakowany radioaktywnie dwutlenek węgla, zatrzymując go w bibule filtracyjnej. Przenieść tę bibułę filtracyjną do fiolki zawierającej koktajl scyntylacyjny i umieścić ją w liczniku scyntylacyjnym cieczy.
Wewnątrz licznika znakowany radioaktywnie węgiel ulega rozpadowi radioaktywnemu, emitując wysokoenergetyczne cząstki beta. Cząstki te są absorbowane przez składniki koktajlu scyntylacyjnego i emitują impulsy świetlne, które są obliczane przez licznik scyntylacyjny.
Ilość wykrytej radioaktywności koreluje z szybkością utleniania substratu w komórkach.
Umyj komórki w dodatkowych studzienkach, dwukrotnie za pomocą DPBS. Oddziel komórki za pomocą 0,25% trypsyny-EDTA. Ponownie zawiesić 20 mikrolitrów strawionych komórek w DPBS z 20 mikrolitrami pomarańczy akrydynowej i roztworu barwnika jodku propidyny. Określ liczbę aktywnych komórek za pomocą automatycznego licznika komórek i zapisz liczbę.
Umyć komórki w studzienkach testowych dwukrotnie za pomocą DPBS. Dodać 500 mikrolitrów gorącej pożywki do każdego dołka testowego w kapturze do hodowli tkankowych wyznaczonym przez RAM. Po uszczelnieniu płytki parafilmem inkubować komórki w inkubatorze wyznaczonym przez pamięć RAM w temperaturze 37 stopni Celsjusza przez cztery godziny.
Podczas inkubacji pokrój bibułę filtracyjną na okrągłe kawałki nieco większe niż obszar wewnątrz nasadki 1,5-mililitrowej probówki do mikrowirówki i włóż papier ciasno do nasadki. Dodać 200 mikrolitrów 1 molowego kwasu nadchlorowego do każdej probówki i 20 mikrolitrów wodorotlenku sodu do bibuły filtracyjnej umieszczonej wewnątrz nakrętki.
Po inkubacji komórek przenieś 400 mikrolitrów pożywki hodowlanej z każdej studzienki do przygotowanych probówek i natychmiast zamknij nakrętki. Pozostaw probówki w stojaku na probówki w temperaturze pokojowej na 1 godzinę.
Równolegle, podczas inkubacji, ustaw fiolkę scyntylacyjną dla każdej probówki i napełnij ją 4 mililitrami płynu scyntylacyjnego. Przenieś każdy kawałek bibuły filtracyjnej do fiolki scyntylacyjnej i inkubuj w temperaturze pokojowej przez 30 minut.
Wykonaj testy wycierania okapu do hodowli tkankowej, łaźni wodnej, lodówki, inkubatora, zlewu, ziemi i dowolnego innego obszaru roboczego pod kątem potencjalnego zanieczyszczenia pamięci RAM. Chusteczki papierowe należy włożyć do fiolek scyntylacyjnych zawierających płyn scyntylacyjny.
Zmierz radioaktywność węgla-14 w fiolkach scyntylacyjnych za pomocą licznika scyntylacji i zapisz wyniki odczytu. W razie potrzeby należy odkazić środowisko pracy zgodnie z wytycznymi dotyczącymi bezpieczeństwa radiacyjnego.
Niniejszy artykuł opisuje metodę pomiaru szybkości utleniania substratu w metabolicznie aktywnych komórkach z wykorzystaniem znakowanego radioaktywnie węgla-14. Proces ten polega na inkubacji komórek z radioaktywnym substratem i ilościowym oznaczeniu powstałego w wyniku tego procesu dwutlenku węgla.
Kwantyfikacja utleniania substratu zapewnia bezpośredni odczyt metabolicznego strumienia komórkowego, umożliwiając walidację celów w szlakach homeostazy energetycznej. Analiza ta wspomaga mechanistyczną redukcję ryzyka poprzez powiązanie wykorzystania substratu ze stanami patofizjologicznymi w systemach istotnych dla danej jednostki chorobowej. Metoda wychwytywania znakowanego radioaktywnie CO2 dostarcza ilościowych, powtarzalnych danych, co zwiększa pewność prognostyczną we wczesnej fazie odkrywania leków.
Ten test wpisuje się w kontinuum odkrywania leków, od weryfikacji hipotez dotyczących punktu uchwytu po optymalizację wiodących związków, dostarczając danych z fenotypowania metabolicznego, które pozwalają ocenić wpływ związków na komórkowe szlaki energetyczne.
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Ostatnia aktualizacja: 29 sierpnia 2026