$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Septyny to białka cytoszkieletu zawierające domenę wiążącą GTP otoczoną końcowymi domenami aminowymi i karboksylowymi, z nieodłączną zdolnością do samoorganizacji w włókna i struktury wyższego rzędu na wewnętrznej błonie komórkowej dla różnych funkcji komórkowych.
Aby zbadać interakcje septyna-błona in vitro przy użyciu naśladownictwa błony biologicznej, należy uzyskać wyciętą probówkę do mikrowirówki. Nałóż klej ultrafioletowy na nieprzyciętą, płaską krawędź i umieść go na plazmowym, hydrofilizowanym szkiełku nakrywkowym. Po wystawieniu na działanie światła ultrafioletowego klej utwardza się, tworząc otwartą komorę reakcyjną.
Przenieść do komory monorozproszone obojczojonowe jednolamelarne pęcherzyki lipidowe o pożądanym składzie lipidowym, uzupełnione mono- i dwuwartościowym buforem zawierającym kationy. Kationy ułatwiają adsorpcję pęcherzyków lipidowych i gromadzenie się na szkiełku nakrywkowym. Delikatnie potrząśnij komorą, inicjując pęknięcie pęcherzyków i inkubuj.
Pęknięte pęcherzyki rozwijają się i łączą ze szkiełkiem nakrywkowym poprzez swoje hydrofilowe grupy głów, tworząc płaskie dwuwarstwowe plamy lipidowe. Krawędzie plastrów powodują pękanie pozostałych pęcherzyków, tworząc ciągłą dwuwarstwę lipidową podpartą planarnie, SLB. Usunąć nadmiar niezaadoptowanych pęcherzyków za pomocą odpowiedniego buforu.
Następnie dodać znakowaną fluorescencyjnie zawiesinę septyny z buforem zawierającym środek stłoczający i inkubować. Środki tłumiące umożliwiają osadzanie się septin na szkiełku nakrywkowym pokrytym SLB. W optymalnych warunkach septyny mogą łączyć się z lipidami w SLB, łącząc się w zorganizowane struktury.
Selektywnie oświetlić szkiełko nakrywkowe za pomocą mikroskopii fluorescencyjnej z całkowitym wewnętrznym odbiciem, aby wzbudzić przylegające fluorescencyjnie znakowane septyny na SLB w celu obserwacji składania septyny.
Aby rozpocząć czyszczenie plazmowe szkiełek, należy przepłukać oczyszczalnię plazmową przez 5 minut tlenem, aby usunąć powietrze z przewodów i komory. Ułóż suche szkiełka nakrywkowe w ceramicznej kołysce. Podczas przedmuchiwania rozpylaj gaz obojętny na szkiełka z mikro pokrywy, aby usunąć kurz i cząstki stałe.
Umieść kołyskę z tyłu komory plazmowej tak, aby szkiełka nakrywkowe były równoległe do dłuższej krawędzi komory. Uruchom myjkę plazmową na 15 minut z tlenem o maksymalnej mocy.
W celu przygotowania komory odetnij nakrętkę tuż pod oszronioną częścią 0,2-mililitrowej probówki do PCR. Pomaluj krawędź probówki PCR klejem aktywowanym promieniami UV, omijając wnętrze probówki. Delikatnie umieść przyklejoną probówkę do PCR na środku oczyszczonego plazmowo szkiełka nakrywkowego, a następnie umieść komorę pod światłem UV o dużej długości fali na 5 do 7 minut, aby utwardzić klej.
Aby utworzyć dwuwarstwę, dodaj odczynniki do studzienki. Delikatnie potrząśnij komorami z boku na bok, aby zakłócić działanie SUV-ów, a następnie inkubuj w temperaturze 37 stopni Celsjusza przez 20 minut.
Po inkubacji przepłukać dwuwarstwę 6 razy 150 mikrolitrami SLBB, pipetując w celu zmycia nadmiaru lipidów. Następnie przemyj dwuwarstwę 6 razy 150 mikrolitrami buforu reakcyjnego, przed inkubacją z septynami.
Na ostatnim etapie płukania usuń bufor reakcyjny, pozostawiając w studzience 75 mikrolitrów. Dodać 25 mikrolitrów septyn rozcieńczonych w SSB i zobrazować za pomocą mikroskopii TIRF.